基于超顺磁性纳米探针的NMR快速检测沙门氏菌
发布时间:2021-03-30 14:25
对食品进行沙门氏菌快速、准确的检测,是预防和控制沙门氏菌感染的有效手段。食品的快速检测技术对微生物源的食品安全问题提供了关键性的技术支撑。沙门氏菌不仅对人体健康构成重大威胁,同时也会对全球食品行业生产造成巨大的损失。而传统培养法、免疫学法和分子生物学法已经无法满足人们对食品中致病菌快速检测的需求,因此,建立高效、灵敏的沙门氏菌快速检测方法对于食源性疾病控制和人体健康保护具有重要意义。本试验建立了一种高特异性,高灵敏度,快速,通用的检测食品中沙门氏菌的新方法。为了提高核磁共振传感器的灵敏度,引入了链霉亲和素-生物素体系信号放大方法,以增强对目标物的结合量和结合力。利用超小粒径的纳米颗粒探针与目标物在尺寸上的悬殊,利用目标物的尺寸远远大于超小粒径纳米探针的前提,通过膜过滤技术攻克了与微生物结合的目标信号探针和游离的探针难以分离的难题。并结合低场核磁共振技术可对食品样本中的目标菌进行快速、灵敏和特异性的检测。各节研究内容如下:第一章:对沙门氏菌及沙门氏菌的快速检测研究进展进行了概述。并对核磁共振造影剂、磁性纳米颗粒、磁共振快速检测技术、国内外研究现状及发展动态进行了简要的介绍。第二章:NMR...
【文章来源】:南昌大学江西省 211工程院校
【文章页数】:80 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2.2?SMN?4?SMN-SA的zeta电位表征??Figure?2.2?Zeta?potentials?of?SMN?and?SMN-SA??
?第2章NMR纳米传感器探针制备???130-1???,20;-^??_1?p??C?^??U??H?100-?八??^?__?SMN-SA?A??■n?f-'?—?—?I??-?^?t??r-i??on?_?_?_??^???〇”?n?1?i?1?i?'?i?1?i?1?r"?1?1???1??4000?3500?3000?2500?2000?1500?1000?500??Wavenumber?(cm?')??图2.4?SMN与SMN-SA的红外表征??Figure?2.4?FTIR?images?of?SMN?and?SMN-SA??2.4.3微孔滤膜材质的选择??如图2.5所示,PES膜的最小AT2值为28?ms,说明PES膜基本可以保证所??有SMN-SA探针都可以被过滤。??18??
第3章基于SMN-SA-Bt-PcAb纳米探针磁学信号的NMR快速检测沙门氏菌??3.4.2?NMR纳米传感器的特异性??350?-1??3°°:?■??250?I??1?2〇°:?I??“:?I??'?_???_??Q.?_?_?_?■幽?i?i?_?,??c〇1,tr〇l?V^cC?^CC?^c〇?^〇C??图3.6?NMR纳米传感器的特异性??Figure?3.6?Specificity?of?NMR?biosensor??为了验证核磁共振生物传感器的可行性,在最优条件下,我们将沙门氏菌??与其他非目标菌株如单核增生李斯特菌(■^’■^^■以,ATCC?19115)、??大肠杆菌0l57:H7?(?Eco"?0757.//7,?CMCC?44102?)、金黄色葡萄球菌??(57叩/7>>/〇〇?<:<:似?awreiw,CMCC?2603?)、普通变形杆菌(/Vo,ew5'6ac///i?'?vw/gar/s,??CMCC?49027)、铜绿假单胞菌(Psewtfomo肌yam/g7_,?cwa,CMCC?11997)和宋??内志贺氏菌(五.co/f?0757:7/7,?JX-CDC)。在106CFU/mL浓度下进行特异性检测。??如图3.6所示,与其他非靶菌组相比,含靶菌溶液的AT2值远远高于无显著??变化的对照组。实验证明,NMR信号的输出来源于对NMR纳米探针的特异性??识别,表明该传感器对沙门氏菌的识别具有良好的特异性。??33??
【参考文献】:
期刊论文
[1]环介导等温扩增技术在肠杆菌科致病菌检测中的研究进展[J]. 何晓华,顿玉慧,卢力,李可,刘斌. 食品科学. 2014(19)
[2]ATP生物发光法在微生物检验中的应用[J]. 唐倩倩,叶尊忠,王剑平,盖铃,应义斌,李雁斌. 食品科学. 2008(06)
本文编号:3109662
【文章来源】:南昌大学江西省 211工程院校
【文章页数】:80 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2.2?SMN?4?SMN-SA的zeta电位表征??Figure?2.2?Zeta?potentials?of?SMN?and?SMN-SA??
?第2章NMR纳米传感器探针制备???130-1???,20;-^??_1?p??C?^??U??H?100-?八??^?__?SMN-SA?A??■n?f-'?—?—?I??-?^?t??r-i??on?_?_?_??^???〇”?n?1?i?1?i?'?i?1?i?1?r"?1?1???1??4000?3500?3000?2500?2000?1500?1000?500??Wavenumber?(cm?')??图2.4?SMN与SMN-SA的红外表征??Figure?2.4?FTIR?images?of?SMN?and?SMN-SA??2.4.3微孔滤膜材质的选择??如图2.5所示,PES膜的最小AT2值为28?ms,说明PES膜基本可以保证所??有SMN-SA探针都可以被过滤。??18??
第3章基于SMN-SA-Bt-PcAb纳米探针磁学信号的NMR快速检测沙门氏菌??3.4.2?NMR纳米传感器的特异性??350?-1??3°°:?■??250?I??1?2〇°:?I??“:?I??'?_???_??Q.?_?_?_?■幽?i?i?_?,??c〇1,tr〇l?V^cC?^CC?^c〇?^〇C??图3.6?NMR纳米传感器的特异性??Figure?3.6?Specificity?of?NMR?biosensor??为了验证核磁共振生物传感器的可行性,在最优条件下,我们将沙门氏菌??与其他非目标菌株如单核增生李斯特菌(■^’■^^■以,ATCC?19115)、??大肠杆菌0l57:H7?(?Eco"?0757.//7,?CMCC?44102?)、金黄色葡萄球菌??(57叩/7>>/〇〇?<:<:似?awreiw,CMCC?2603?)、普通变形杆菌(/Vo,ew5'6ac///i?'?vw/gar/s,??CMCC?49027)、铜绿假单胞菌(Psewtfomo肌yam/g7_,?cwa,CMCC?11997)和宋??内志贺氏菌(五.co/f?0757:7/7,?JX-CDC)。在106CFU/mL浓度下进行特异性检测。??如图3.6所示,与其他非靶菌组相比,含靶菌溶液的AT2值远远高于无显著??变化的对照组。实验证明,NMR信号的输出来源于对NMR纳米探针的特异性??识别,表明该传感器对沙门氏菌的识别具有良好的特异性。??33??
【参考文献】:
期刊论文
[1]环介导等温扩增技术在肠杆菌科致病菌检测中的研究进展[J]. 何晓华,顿玉慧,卢力,李可,刘斌. 食品科学. 2014(19)
[2]ATP生物发光法在微生物检验中的应用[J]. 唐倩倩,叶尊忠,王剑平,盖铃,应义斌,李雁斌. 食品科学. 2008(06)
本文编号:3109662
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