锌掺杂四氧化三铁纳米颗粒与胃蛋白酶相互作用的研究
发布时间:2021-06-19 20:57
近几十年来,纳米材料技术的发展十分迅速,纳米材料的应用范围越来越广泛,涉及工业、商业和生物医学等多个领域。纳米材料的巨大应用前景以及工业中的大量生产使得人们在日常生活中接触到它们的概率大大提高。在这种情况下,纳米材料的生物效应成为了关注焦点,引发了科研人员极大的兴趣。众所周知,纳米颗粒暴露于生物体后会立即与生物体液中的蛋白质分子发生作用,其表面会形成一层蛋白冠。从纳米颗粒角度来说,蛋白冠的形成会改变纳米颗粒在生物体中细胞摄取和从生物体的清除等代谢途径,影响纳米颗粒在生物体中的分布和其功能的发挥。从蛋白质分子角度来说,蛋白冠的形成会改变蛋白质的结构、活性及其功能,从而影响纳米材料的生物效应。因此,研究纳米颗粒和蛋白质的相互作用,对纳米材料在生物技术领域和生命科学领域的应用具有重要意义。磁性纳米颗粒因为具有较高的磁化率和很好的生物相容性被广泛应用于生物医学领域,目前超顺磁四氧化三铁纳米颗粒是唯一被美国FDA批准用于临床的纳米磁共振成像造影剂。锌掺杂四氧化三铁纳米颗粒(ZnxFe3-xO4 NPs)具有比四氧化三铁纳米颗粒(F...
【文章来源】:中国科学技术大学安徽省 211工程院校 985工程院校
【文章页数】:67 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2.1通过TEM和XRD对Zna4FeZn〇.4Fe2604?NPs?的?TEM?图片;(B)?Zn〇图谱:标准?6304(冗?08?75-0033)(3)和
20?30?40?50?60?70?80??2Theta??图2.1通过TEM和XRD对Zna4Fe2.604?NPs进行粒径和物相的表征。(A)??Zn〇.4Fe2604?NPs?的?TEM?图片;(B)?Zn〇4:Fe2.604?NPs?的粒径分布图.;(C)?XRD??图谱:标准?6304(冗?08?75-0033)(3)和211〇.4?62.604]^3(13)??2.3.2体内蛋白质冠分析??使用SDS-PAGE分离吸附在Zn〇.4Fe2.604?NPs表面上的蛋白质。如图2.2(A)??所示,凝胶中出现了多个条带,意味着多种蛋白质被结合到颗粒上。我们切下了??三条主要条带(1、2和3),通过LC-MS方法来探宄蛋白冠的组成。在将结果??与NCBI数据库中的数据对比后,表2.3列出了各条带中鉴别出来的蛋白质种类。??在这3条条带中共鉴别出32种不同的蛋白质,其中有部分来自胃组织,如胃蛋??白酶原、三叶因子和内因子等;也有部分由胰腺分泌,如羧肽酶、胰腺淀粉酶和??弹性蛋白酶等。此外,唾液淀粉酶以及少量细胞内的蛋白质也出现在蛋白冠中。??吸附的蛋白质的分子量处于10到78?KD之间。我们将这些蛋白质按照等电点(pi)??和MW进行了分类,如图2.2(B)所示。蛋白冠中的蛋白质分子量多处于20-60?KD??之间(?75%)
?2.3.3.1吸附动力学??图2.3是Zna+Fe2.604?NPs吸附蛋白质随时间的变化规律。从图中可以看出,??在pH?1.5和pH?3.0值条件下,ZnG.4Fe2.604?NPs对胃蛋白酶的吸附是一个快速的??过程。具有类似粒径的磁性纳米颗粒在对BSA吸附的过程中出现了同样的结果??[71,72^这种快速吸附可能是因为Zna4Fe2.604NPS的小粒径和较大的比表面面积。??需要注意的是,在实验的过程中,Zno.4Fe2.604NPs和胃蛋白酶在混合5min后测??得的吸附值与60?min后的吸附值几乎完全一样,说明这种纳米颗粒对蛋白质的??吸附非常迅速。这种对蛋白质的快速吸附对于Zna4Fe2.6〇4?NPs在蛋白质的分离??方面的应用具有潜在优势。??250-??■??…一…?級_..…_魯???????????200-??35150-?/??I1??衽100-?I??I?a?■——■?■?_?■??50-?/?/??\?pH1.5???一?PH?3??0?10?20?30?40?50?60??Time(min)??图2.3不同pH下Zna4Fe2.604?NPs对胃蛋白酶上的吸附随时间的变化??2.3.3.2pH对吸附的影响??从2如.正62.6〇4仰5对胃蛋白酶的吸附动力学(?111.5和3.0下),我们可??以推断在其它酸度下吸附平衡也可以很快达到。在这种前提下,我们探宄了作用??介质的pH对吸附容量的影响,结果如图2.4所示。显然,pH值对胃蛋白酶在??Zna4Fe2.eA?NPs上的吸附容量影响很大。在pH?1-2.8范围内
【参考文献】:
硕士论文
[1]茶叶生物碱对胃蛋白酶部分理化性质的影响[D]. 谢光.四川大学 2006
本文编号:3238528
【文章来源】:中国科学技术大学安徽省 211工程院校 985工程院校
【文章页数】:67 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2.1通过TEM和XRD对Zna4FeZn〇.4Fe2604?NPs?的?TEM?图片;(B)?Zn〇图谱:标准?6304(冗?08?75-0033)(3)和
20?30?40?50?60?70?80??2Theta??图2.1通过TEM和XRD对Zna4Fe2.604?NPs进行粒径和物相的表征。(A)??Zn〇.4Fe2604?NPs?的?TEM?图片;(B)?Zn〇4:Fe2.604?NPs?的粒径分布图.;(C)?XRD??图谱:标准?6304(冗?08?75-0033)(3)和211〇.4?62.604]^3(13)??2.3.2体内蛋白质冠分析??使用SDS-PAGE分离吸附在Zn〇.4Fe2.604?NPs表面上的蛋白质。如图2.2(A)??所示,凝胶中出现了多个条带,意味着多种蛋白质被结合到颗粒上。我们切下了??三条主要条带(1、2和3),通过LC-MS方法来探宄蛋白冠的组成。在将结果??与NCBI数据库中的数据对比后,表2.3列出了各条带中鉴别出来的蛋白质种类。??在这3条条带中共鉴别出32种不同的蛋白质,其中有部分来自胃组织,如胃蛋??白酶原、三叶因子和内因子等;也有部分由胰腺分泌,如羧肽酶、胰腺淀粉酶和??弹性蛋白酶等。此外,唾液淀粉酶以及少量细胞内的蛋白质也出现在蛋白冠中。??吸附的蛋白质的分子量处于10到78?KD之间。我们将这些蛋白质按照等电点(pi)??和MW进行了分类,如图2.2(B)所示。蛋白冠中的蛋白质分子量多处于20-60?KD??之间(?75%)
?2.3.3.1吸附动力学??图2.3是Zna+Fe2.604?NPs吸附蛋白质随时间的变化规律。从图中可以看出,??在pH?1.5和pH?3.0值条件下,ZnG.4Fe2.604?NPs对胃蛋白酶的吸附是一个快速的??过程。具有类似粒径的磁性纳米颗粒在对BSA吸附的过程中出现了同样的结果??[71,72^这种快速吸附可能是因为Zna4Fe2.604NPS的小粒径和较大的比表面面积。??需要注意的是,在实验的过程中,Zno.4Fe2.604NPs和胃蛋白酶在混合5min后测??得的吸附值与60?min后的吸附值几乎完全一样,说明这种纳米颗粒对蛋白质的??吸附非常迅速。这种对蛋白质的快速吸附对于Zna4Fe2.6〇4?NPs在蛋白质的分离??方面的应用具有潜在优势。??250-??■??…一…?級_..…_魯???????????200-??35150-?/??I1??衽100-?I??I?a?■——■?■?_?■??50-?/?/??\?pH1.5???一?PH?3??0?10?20?30?40?50?60??Time(min)??图2.3不同pH下Zna4Fe2.604?NPs对胃蛋白酶上的吸附随时间的变化??2.3.3.2pH对吸附的影响??从2如.正62.6〇4仰5对胃蛋白酶的吸附动力学(?111.5和3.0下),我们可??以推断在其它酸度下吸附平衡也可以很快达到。在这种前提下,我们探宄了作用??介质的pH对吸附容量的影响,结果如图2.4所示。显然,pH值对胃蛋白酶在??Zna4Fe2.eA?NPs上的吸附容量影响很大。在pH?1-2.8范围内
【参考文献】:
硕士论文
[1]茶叶生物碱对胃蛋白酶部分理化性质的影响[D]. 谢光.四川大学 2006
本文编号:3238528
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/cailiaohuaxuelunwen/3238528.html