KLF9在机体糖异生中的作用及PGC1α诱导Cidec表达的研究
发布时间:2023-06-02 23:30
第一部分 KLF9对PGC1a表达的调控以及在糖异生中的作用 肝脏糖异生对于长时间饥饿情况下生物体的生存十分必要,但是在糖尿病情况下被非正常开启。已知转录共激活因子过氧化物酶体增殖受体Y共激活因子1(PGC1a)在此过程中发挥重要的生理功能。PGC1a是糖异生酶基因的上游调控因子,对于这些酶表达的激活发挥重要的调控功能。PGC1a被cAMP通路和转录因子CREB的激活所调控。KLF9是Kruppel-like factors锌指蛋白家族的成员,又称为基础转录序列结合蛋白1(BTEB1),是结合高GC结构序列的转录因子。KLF9能够调节孕酮受体(PR)的表达,其缺失会降低子宫PR目标基因对于孕酮的敏感性,导致生育能力低下。在肝脏中,KLF9结合促进HNF4a,调节甲状腺激素在肝脏中的作用。KLF9能够结合PPARγ启动子,调控脂肪组织的发育。通过体内和体外实验,我们证明了KLF9能够结合到PGC1a启动子并调节的PGC1a的表达,进而,对肝脏糖异生酶的表达量进行调控。在糖尿病模型小鼠上,降低KLF9的表达量,能够有效提高机体对胰岛素的敏感性,并且对糖尿病造成的高血糖具有改善效果。本实验首...
【文章页数】:71 页
【学位级别】:硕士
【文章目录】:
第一部分 KLF9对PGC1A表达的调控以及在糖异生中的作用
摘要
ABSTRACT
前言
材料和方法
1 实验材料
1.1 动物
1.2 菌株
1.3 质粒载体
1.4 细胞株
1.5 实验用工具酶以及DNA,蛋白marker
1.6 试剂盒
1.7 主要化学试剂(按试剂公司分类)
1.8 主要仪器及设备
1.9 分析软件
1.10 实验所用引物
2 实验方法
2.1 质粒载体的构建
2.1.1 PCR法扩增目的片段
2.1.2 PCR点突变KLF-9在PGC1α启动子上的结合位点
2.1.3 DNA琼脂糖凝胶电泳
2.1.4 DNA及载体的酶切
2.1.5 片段与载体的连接
2.1.6 连接产物的转化
2.1.7 阳性克隆的筛选
2.1.8 质粒DNA的大量制备
2.2 细胞培养实验
2.2.1 细胞的培养条件
2.2.2 细胞的复苏,传代培养与冻存
2.2.3 细胞计数与存活测试
2.2.4 肝原代细胞的分离以及培养
2.2.5 3T3-L1细胞的培养及诱导分化
2.2.6 转染实验
2.3 重组腺病毒的构建与包装
2.4 腺病毒感染细胞
2.5 染色体免疫共沉淀实验
2.6 DNA、RNA提取及cDNA的合成
2.6.1 总RNA的提取
2.6.2 总DNA和蛋白质的分离提取
2.6.3 总RNA逆转录合成cDNA
2.7 WESTERN BLOT
2.7.1 SDS-PAGE电泳
2.7.2 SDS-PAGE电泳步骤
2.7.3 转膜
2.7.4 Western印迹杂交
2.8. Real-Time PCR实验
2.9 dual luciferase reporter assay system实验
2.10 小鼠血糖测定
2.11 GTT,ITT实验
3 实验流程
实验结果
1. KLF9和PGC1A基因表达被饥饿诱导
2. KLF9调控PGC1A转录是通过结合在PGC1A启动子上实现
3. KLF9和PGC1A在体内的相互作用
4. 干扰KLF9表达对糖异生调控基因表达的影响
5. 干扰KLF9表达降低肝原代细胞的葡萄糖输出
讨论
小结
第二部分 PGC1A与PPARF共激活CIDEC的表达
摘要
ABSTRACT
前言
材料与方法见第一部分
实验结果
1. PPARΓ与PGC1A直接结合于CIDEC的启动子而调控转录
2. PPARΓ特异激动剂PIOGLITAZONE可促进CIDEC MRNA的转录
3. CIDEC过表达的3T3-L1细胞中对脂肪合成以及能量代谢相关基因的影响
4. 在肝脏细胞中过表达CIDEC基因明显增加细胞质脂滴的体积
讨论
小结
参考文献
附录
综述
参考文献
致谢
作者简历
本文编号:3828230
【文章页数】:71 页
【学位级别】:硕士
【文章目录】:
第一部分 KLF9对PGC1A表达的调控以及在糖异生中的作用
摘要
ABSTRACT
前言
材料和方法
1 实验材料
1.1 动物
1.2 菌株
1.3 质粒载体
1.4 细胞株
1.5 实验用工具酶以及DNA,蛋白marker
1.6 试剂盒
1.7 主要化学试剂(按试剂公司分类)
1.8 主要仪器及设备
1.9 分析软件
1.10 实验所用引物
2 实验方法
2.1 质粒载体的构建
2.1.1 PCR法扩增目的片段
2.1.2 PCR点突变KLF-9在PGC1α启动子上的结合位点
2.1.3 DNA琼脂糖凝胶电泳
2.1.4 DNA及载体的酶切
2.1.5 片段与载体的连接
2.1.6 连接产物的转化
2.1.7 阳性克隆的筛选
2.1.8 质粒DNA的大量制备
2.2 细胞培养实验
2.2.1 细胞的培养条件
2.2.2 细胞的复苏,传代培养与冻存
2.2.3 细胞计数与存活测试
2.2.4 肝原代细胞的分离以及培养
2.2.5 3T3-L1细胞的培养及诱导分化
2.2.6 转染实验
2.3 重组腺病毒的构建与包装
2.4 腺病毒感染细胞
2.5 染色体免疫共沉淀实验
2.6 DNA、RNA提取及cDNA的合成
2.6.1 总RNA的提取
2.6.2 总DNA和蛋白质的分离提取
2.6.3 总RNA逆转录合成cDNA
2.7 WESTERN BLOT
2.7.1 SDS-PAGE电泳
2.7.2 SDS-PAGE电泳步骤
2.7.3 转膜
2.7.4 Western印迹杂交
2.8. Real-Time PCR实验
2.9 dual luciferase reporter assay system实验
2.10 小鼠血糖测定
2.11 GTT,ITT实验
3 实验流程
实验结果
1. KLF9和PGC1A基因表达被饥饿诱导
2. KLF9调控PGC1A转录是通过结合在PGC1A启动子上实现
3. KLF9和PGC1A在体内的相互作用
4. 干扰KLF9表达对糖异生调控基因表达的影响
5. 干扰KLF9表达降低肝原代细胞的葡萄糖输出
讨论
小结
第二部分 PGC1A与PPARF共激活CIDEC的表达
摘要
ABSTRACT
前言
材料与方法见第一部分
实验结果
1. PPARΓ与PGC1A直接结合于CIDEC的启动子而调控转录
2. PPARΓ特异激动剂PIOGLITAZONE可促进CIDEC MRNA的转录
3. CIDEC过表达的3T3-L1细胞中对脂肪合成以及能量代谢相关基因的影响
4. 在肝脏细胞中过表达CIDEC基因明显增加细胞质脂滴的体积
讨论
小结
参考文献
附录
综述
参考文献
致谢
作者简历
本文编号:3828230
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