KGF基因修饰的骨髓间充质干细胞移植治疗内毒素致小鼠急性肺损伤及相关机制的实验研究
[Abstract]:Background and purpose:
Acute lung injury (acute lung injury, ALI) and acute respiratory distress syndrome (acute respiratorydistress syndrome, ARDS) are acute progressive respiratory failure caused by various pathogenic factors. The most common pathogenic factor is pulmonary infection. The domestic and foreign scholars have made a great deal of research on the treatment of ARDS and have made certain progress, but they have made some progress. It can not fundamentally improve the poor prognosis, the mortality rate is still as high as 40%.
Mesenchymal stem cells (MSCs), as a kind of pluripotent stem cells, is a kind of pluripotent stem cells, which is convenient, easy to be separated and amplified, and can be immune tolerance and can be transfected and long expressed exogenous genes. It is an ideal source of tissue repair and a stable carrier of gene transfection. Therefore, it has important application value in the treatment of ARDS/ALI.
Keratinocyte growth factor (KGF) is the seventh member of the fibroblast growth factor (fibroblast growth factor, FGF) family, which has the role of promoting mitosis in epithelial cells, regulating cell differentiation, anti apoptosis and promoting the synthesis of surfactant junction protein (surfactant-associatedprotein, SP). The therapeutic research of ALI has a broad application prospect.
The purpose of this study is to observe the biological effects of KGF gene modified mesenchymal stem cells on the model of lung injury induced by lipopolysaccharide (LPS) and explore its related mechanisms, providing a new and breakthrough experimental clue for the treatment of ALI.
Methods and results
The total bone marrow adherent method was used to isolate MSCs and be cultured and amplified to fourth generations. By flow cytometry and differentiation, the high purity MSCs. was obtained and KGF recombinant plasmid was constructed to infect 293T cells. After concentration and purification, the virus particles were collected and then infected with MSCs in mice respectively. The infection efficiency of the two groups was 90%, and PCR was quantified by real-time PCR. The expression of KGF gene was well expressed by method and Western-blot method. After the successful construction of ALI model by intratracheal infusion of LPS10mg/kg in mice, 160 ALI mice were randomly divided into normal saline control group (NS group), pure MSCs control group (MSCs group), MSCs empty control group (MSCs-vec group) and KGF MSCs experimental group (Group). The results showed that the control group was compared with the control group. Compared with the group, MSCs could be colonized in the lung tissue. In the time point of 24h and 3D, the expression of RNA and protein in KGF was significantly increased in the MSCs-KGF experimental group (P0.05), and the total protein content in BALF, the amount of neutrophils in BALF and the activity of myeloperoxidase (MPO) in lung tissue were statistically significant (P0.05), and significantly decreased. The degree of pathological section of lung tissue in the.MSCs-KGF experimental group of BALF was higher than that of the control group, and the pathological score of the lung tissue was less than that of the control group, and the pathological score was statistically significant (P0.05). The other 40 mice were randomly divided into 4 groups, and the results showed that they had some advantages (P0.05) for the improvement of survival rate (P0.05). At the same time, MSCs-KGF was true. The levels of SPB and SPC mRNA in the test group were significantly higher than those in the control group (P 0.05). The number of PCNA positive cells in the MSCs-KGF test group was higher than that in the control group by immunohistochemistry.
Conclusion:
1. MSCs can be successfully isolated from mouse bone marrow by whole bone marrow adherent method and can be amplified in vitro.
2. KGF lentiviral vector can infect MSCs with high efficiency. It can stably express KGF in MSCs for a long time. MSCs is a good carrier for gene therapy.
3. KGF gene modified MSCs can homing to damaged lung tissue and express KGF in lung.
4. KGF and MSCs play a synergistic effect, which can improve pulmonary vascular permeability, inhibit the inflammatory response of lung tissue, reduce the severity of acute lung injury induced by endotoxin, and have a tendency to increase the survival rate of ALI animals, thus providing experimental basis for the gene therapy of ALI.
5. the underlying mechanism of KGF may be related to KGF stimulating SP secretion and promoting mitosis.
【学位授予单位】:中国人民解放军军医进修学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2012
【分类号】:R563.8
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 廖秀玉,林建东,刘宁,陈小莉,王先奉,林松元;钠氢交换体及其抑制物在急性肺损伤中的作用[J];中国急救医学;2000年11期
2 余衍亮,孙秀明,雷亿群,戴健,李翠莉;一氧化氮与成人肺疾病[J];南京军医学院学报;2000年03期
3 王晓晖,曹慧玲,丁信军,杨宁江;地塞米松对急性肺损伤小鼠体液免疫的影响[J];中国危重病急救医学;2001年02期
4 王和枚,丁日高,阮金秀;急性肺损伤的中性粒细胞作用机制研究进展[J];中国工业医学杂志;2002年06期
5 ;西维来司钠—急性肺损伤治疗药[J];中国医药技术与市场;2003年04期
6 吴国明,徐智,钱桂生,王兴胜,陈维中,李淑平,薛桥,王士雯;老年鼠急性肺损伤模型的建立[J];西部医学;2004年03期
7 张芳,钱桂生,汪晓莉,吴学玲,雷撼;脂多糖致大鼠急性肺损伤肺组织中糖皮质激素受体的表达及活性变化[J];解放军医学杂志;2005年04期
8 李建强,高晓玲,刘卓拉,徐永健,张珍祥;胆红素对抗脂多糖诱导致大鼠急性肺损伤的实验研究[J];中国病理生理杂志;2005年04期
9 安梅,李主一,翁龙江,李光权,王根春;高原肢体缺血再灌注致急性肺损伤的实验研究[J];解放军医学杂志;1994年02期
10 朱运奎,张绍仪,张世范,高伟,贾树斌,刘庭忠;山莨菪碱对高原内毒素急性肺损伤防治作用的实验研究[J];西北国防医学杂志;1994年03期
相关会议论文 前10条
1 田巍;王聪;关岚;李天水;陈志芳;金红芳;赵斌;杜军保;;七叶皂苷钠对大鼠急性肺损伤干预治疗的研究[A];中华医学会急诊医学分会第十三次全国急诊医学学术年会大会论文集[C];2010年
2 钱桂生;;SIGIRR对小鼠内毒素性急性肺损伤的保护作用研究[A];中华医学会呼吸病学年会——2011(第十二次全国呼吸病学学术会议)论文汇编[C];2011年
3 武庆平;金胜威;刘东;桂平;尚游;冯丹;姚尚龙;;急性肺损伤研究新思路抗炎和促炎症消退相结合[A];2010中华医学会全国麻醉学术年会论文汇编[C];2010年
4 胥武剑;董宇超;朱莹;洪伟峻;宁允叶;蔡在龙;李强;;Nogo-B在小鼠急性肺损伤中的保护性作用及其可能机制[A];中华医学会呼吸病学年会——2011(第十二次全国呼吸病学学术会议)论文汇编[C];2011年
5 谢衬梨;萧正伦;黎毅敏;莫红缨;赵一菊;;生长素释放肽对急性肺损伤小鼠核因子-κB和纤溶系统的干预作用[A];第三届重症医学大会论文汇编[C];2009年
6 皋源;王云霞;李玟;邓羽霄;王祥瑞;;羟乙基淀粉130/0.4对急性肺损伤大鼠肺组织TLR4表达的影响[A];第三届重症医学大会论文汇编[C];2009年
7 祁媛媛;钱莉玲;孙波;;吸入NO促进骨髓EPC动员在幼猪急性肺损伤修复中的作用及其机制[A];中国生理学会第23届全国会员代表大会暨生理学学术大会论文摘要文集[C];2010年
8 黄秋霞;;法乐氏四联症根治术后急性肺损伤的护理[A];外科重症监护专科知识培训暨学术交流会论文集[C];2008年
9 克拉拉·阿巴斯买;买提祖农·买苏尔;张建龙;;实验性急性肺损伤大鼠多器官Gq/11蛋白的动态表达变化[A];中国病理生理学会第九届全国代表大会及学术会议论文摘要[C];2010年
10 赵X;赵荣;马超;李继科;贺清;张鑫浩;郑云;;肺开放通气对体外循环术后急性肺损伤婴幼儿呼吸力学和血流动力学的影响[A];全国第十二届心脏学会第十五届心功能学会和《心脏杂志》编委会联合学术会议论文集[C];2011年
相关重要报纸文章 前10条
1 郭姜宁 常亮 王晓静;急性肺损伤防治难题攻克[N];医药导报(中药报);2003年
2 ;Calfactant在儿科急性肺损伤中的疗效[N];医药经济报;2005年
3 ;血液制品输注可引起致死性急性肺损伤[N];大众卫生报;2005年
4 熊学莉邋通讯员 曾理;急性肺损伤早诊早治降低病死率[N];健康报;2008年
5 郭姜宁 常亮 王晓静;高海拔地区急性肺损伤防治难题攻克[N];科技日报;2003年
6 武警总医院急救医学中心主任 王立祥邋孙鲲 整理;控制ARDS要五早[N];健康报;2008年
7 白毅;我国防化研究获进展[N];中国医药报;2002年
8 记者 韩建清;SARS病毒受体找到了[N];人民日报;2006年
9 记者 张景华 吴春燕;中国科学家首次证实人体存在SARS病毒受体[N];光明日报;2006年
10 通讯员 邹莹 张淼 记者 于莘明;我科学家首次证实人体存在SARS病毒受体[N];科技日报;2006年
相关博士学位论文 前10条
1 秦鑫;汽化吸入全氟化碳对行机械通气肺损伤小猪肺外脏器的保护作用[D];中国人民解放军军医进修学院;2006年
2 戢新平;体位改变对兔油酸型急性肺损伤的影响[D];中国医科大学;2004年
3 黄泽清;骨形态生发蛋白-4在酸吸入致大鼠急性肺损伤中的作用及作用机制探讨[D];中国医科大学;2006年
4 李洪霞;内毒素致急性肺损伤中炎症介质/抗炎介质失衡机制及白介素10、地塞米送的保护作用[D];军医进修学院;2001年
5 陆健;肺失肃降的病理生理研究及其临床指导意义探讨[D];广州中医药大学;2007年
6 王泓;机械通气对心功能影响的机制研究[D];第四军医大学;2005年
7 樊毫军;腹腔或静脉注射全氟化碳对大鼠急性肺损伤预防作用的实验研究[D];中国人民解放军军医进修学院;2006年
8 朱峰;丙酮酸乙酯对急性坏死性胰腺炎大鼠急性肺损伤保护作用的实验研究[D];中国医科大学;2007年
9 刘同祥;中药蛋白酶抑制剂的筛选及防治急性肺损伤作用研究[D];北京中医药大学;2007年
10 肖贞良;GRKs参与大鼠急性肺损伤发生机制的实验研究[D];第三军医大学;2003年
相关硕士学位论文 前10条
1 高晓玲;胆红素对抗内毒素诱导致大鼠急性肺损伤的实验研究[D];山西医科大学;2002年
2 吴红涛;实验性胸腹撞击伤并急性肺损伤的病理生理特点研究[D];第三军医大学;2004年
3 赵晓巍;不同肺保护性通气策略对减轻急性肺损伤模型通气机相关肺损伤的实验研究[D];中国人民解放军军医进修学院;2004年
4 张秀敏;不同诱因急性肺损伤模型大鼠肺内外炎症动态变化[D];河北医科大学;2011年
5 陈小莉;雷米普利对急性肺损伤时核因子-κB活性的影响[D];福建医科大学;2005年
6 陈洁;KGF基因修饰的骨髓间充质干细胞移植治疗内毒素致小鼠急性肺损伤及相关机制的实验研究[D];中国人民解放军军医进修学院;2012年
7 简文;山莨菪碱治疗创伤性急性肺损伤分子生物学机制的实验研究[D];第四军医大学;2002年
8 何勇;急性肺损伤大鼠肺表面活性物质及表面活性物质蛋白变化的研究[D];重庆医科大学;2003年
9 朱晓勤;芪术合剂对急性肺损伤大鼠的实验研究[D];天津中医学院;2005年
10 于东云;内毒素诱导急性肺损伤中热休克蛋白的表达及大黄对HSP70表达的调控[D];中国医科大学;2010年
本文编号:2156813
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/huxijib/2156813.html