当前位置:主页 > 医学论文 > 泌尿论文 >

mTORC1在慢性肾脏病胰岛素抵抗中的作用

发布时间:2018-04-11 06:12

  本文选题:慢性肾脏病 + 胰岛素抵抗 ; 参考:《中国人民解放军医学院》2017年硕士论文


【摘要】:目的:代谢综合征(MetS)在慢性肾脏病(CKD)患者中普遍存在,与CKD预后密切相关。胰岛素抵抗(IR)作为MetS的基础,是非糖尿病CKD患者疾病进展的独立危险因素。而哺乳动物雷帕霉素靶蛋白复合物1 (mTORC1)信号通路可感受多种环境变化调节机体的生长代谢稳态,参与肿瘤、肥胖、2型糖尿病等多种疾病发生发展过程。过量的氨基酸、葡萄糖等引起mTORC1信号通路的过度激活,通过负反馈作用,抑制胰岛素信号通路,被认为是2型糖尿病IR的重要机制之一。但在CKD疾病状态下,mTORC1表达与IR的关系尚不十分清楚。因此,本实验旨在研究慢性肾脏病动物模型即5/6肾切除大鼠,发生IR状态下,mTORC1信号通路在脂肪、肌肉、肝脏组织中的变化,及其血清刺激肌肉细胞、脂肪细胞所产生的IR及与mTORC1的关系。初步探讨CKD疾病状态下mTORC1与IR的关系。方法:1、建立慢性肾脏疾病大鼠模型,即进行5/6肾切除手术(CKD组),即先进行左肾的2/3切除,一周以后摘除右肾,对照组同期行肾脏被膜剥离手术,以二次手术后时间为起始点,饲养20周;2、禁食水12小时后行腹腔注射糖耐量试验(IPGTT),即按2g/Kg葡萄糖行腹腔葡萄糖注射,分别测0分、30分、60分、90分、120分血糖值,并通过曲线下面积统计手术组与对照组差异;继续饲养2天后,麻醉下下腔静脉取血处死,取腓肠肌组织、附睾脂肪组织、肝脏组织液氮冰冻,-80℃保存;3、检测血清生化及24h尿变化,ELISA法检测空腹胰岛素,稳态模式评估法(HOMA-IR)检测胰岛素敏感性,Western blotting方法检测手术组与对照组脂肪、肌肉、肝脏组织中胰岛素信号通路蛋白p-y-IRS1、p-AKT及mTORC1信号通路关键因子p-mTOR、p-p70s6k表达差异;4、采用C2C12细胞模型及3T3L1细胞模型,分别诱导为成熟的肌肉细胞及脂肪细胞,通过CKD模型鼠血清刺激,观察胰岛素及mTORC1信号通路变化,并采用mTORC1激活剂磷脂酸(PA)刺激,上调mTORC1,观察胰岛素信号通路变化。结果:1、CKD 组血肌酐(93.63±8.05)、尿素氮(15.81 ±2.07)、尿酸(90.33±3.26)、胆固醇(2.73±0.29),尿蛋白(45.32±11.68)明显高于对照组血肌酐(35.10±4.07)、尿素氮(5.55±0.35)、尿酸(77.27±4.34)、胆固醇(1.56±0.07),尿蛋白(11.17±4.06),p0.05;白蛋白(31.69±1.19)低于对照组白蛋白(36.57±0.55),p0.05; 2、IPGTT显示CKD组糖耐量明显低于对照组,p0.05; HOMA-IR显示CKD组HOMA-IR(4.45±0.73)明显高于对照组(1.87±0.54), p0.05,即CKD组胰岛素敏感性明显低于对照组;3、CKD组脂肪组织、肌肉组织胰岛素信号通路蛋白p-y-IRS1、p-AKT及mTORC1信号通路蛋白p-mTOR、p-p70s6k明显低于对照组,p0.05;肝脏p-AKT及p-mTOR未见明显差异;4、CKD组大鼠血清体外刺激肌细胞及脂肪细胞导致胰岛素信号通路蛋白表达下降,伴随mTORC1信号通路蛋白表达下降,通过上调mTORC1信号通路,体外肌细胞细胞胰岛素抵抗有所改善,对脂肪细胞影响不大。结论:1、CKD大鼠IR状态下肌肉、脂肪组织发生胰岛素抵抗伴mTORC1下调。2、体外CKD大鼠血清刺激肌细胞、脂肪细胞可产生IR。3、体外激活mTORC1可改善CKD大鼠血清刺激肌细胞产生的IR,但没有对脂肪细胞产生明显影响。
[Abstract]:Objective: metabolic syndrome (MetS) in patients with chronic kidney disease (CKD) are common in patients is closely related with the prognosis of CKD. Insulin resistance (IR) as the basis of MetS are independent risk factors for disease progression in CKD patients with diabetes. And mTOR complex 1 (mTORC1) growth and metabolic homeostasis, signal pathway can experience a variety of environmental changes to regulate the body involved in tumor development process, obesity, type 2 diabetes and other diseases. Excess amino acids, glucose caused by excessive activation of the mTORC1 signaling pathway, through the negative feedback function, inhibition of insulin signaling, is considered to be one of the important mechanisms of IR of type 2 diabetes. But in CKD disease under the condition of relationship between the expression of mTORC1 and IR is not clear. Therefore, the purpose of this experiment was to study the chronic kidney disease animal model of 5/6 nephrectomy rats, IR state, mTORC1 signaling pathway in fat Fat, muscle, changes in liver tissue, and serum stimulated muscle cells produced by fat cells and the relationship between mTORC1 and IR. To investigate the relationship between mTORC1 and IR CKD disease. Methods: 1 to establish a rat model of chronic kidney disease, namely 5/6 nephrectomy (group CKD), i.e. the first 2/3 of left kidney resection, a week after the removal of the right kidney, the control group underwent renal capsule stripping operation in time after the two operation as a starting point for 20 weeks; 2, fasting 12 hours after intraperitoneal glucose tolerance test (IPGTT), which is based on 2g/Kg intraperitoneal glucose glucose injection, measured 0 points, 30 points, 60 points, 90 points, 120 points of blood glucose, and the area under the curve of statistical operation group compared with control group; after 2 days, blood from the inferior vena cava were sacrificed under anesthesia, gastrocnemius muscle tissue, adipose tissue, liver tissue frozen in liquid nitrogen, -80 C 3, detection of blood preservation; Clear and 24h urine biochemical changes, fasting insulin ELISA, homeostasis model assessment of insulin sensitivity (HOMA-IR) detection method for the detection of blotting, Western group and the control group of fat, muscle, insulin signaling protein p-y-IRS1 in liver tissue, p-AKT and mTORC1 signal pathway key factor p-mTOR, the difference of p-p70s6k expression; 4, by C2C12 cells model and 3T3L1 cell model were induced into mature muscle cells and fat cells in CKD rats by serum stimulation, insulin and mTORC1 signaling pathway changes, and the use of mTORC1 activator phosphatidic acid (PA) stimulation, upregulation of mTORC1, observe the changes of insulin signaling pathway. Results: 1 CKD group, serum creatinine (93.63. 8.05), urea nitrogen (15.81 + 2.07), uric acid (90.33 + 3.26), cholesterol (2.73 + 0.29), urine protein (45.32 + 11.68) was significantly higher than the control group (35.10 + 4.07) serum creatinine, urea nitrogen (5.55 + 0.35), Uric acid (77.27 + 4.34), cholesterol (1.56 + 0.07), urine protein (11.17 + 4.06), P0.05 (31.69 + 1.19); albumin albumin was lower than that of control group (36.57 + 0.55), P0.05; 2, IPGTT showed significantly lower than the control group, CKD group of glucose tolerance P0.05; group CKD (HOMA-IR HOMA-IR 4.45 + 0.73) was significantly higher than the control group (1.87 + 0.54), P0.05 CKD group, the insulin sensitivity was significantly lower than the control group; 3, fat tissue in group CKD, p-y-IRS1 protein in insulin signaling pathway in muscle tissue, p-AKT and mTORC1 signaling pathway protein p-mTOR, p-p70s6k was significantly lower than the control group, P0.05; p-AKT and p-mTOR had no significant difference in the liver; 4, muscle cells and fat cells led to the expression of insulin signaling proteins decreased stimulation in serum of rats in the CKD group, with the protein expression of mTORC1 signaling pathway decreased by upregulation of mTORC1 signaling pathway, insulin resistance body muscle cells improved to fat cells. Not influence. Conclusion: 1. CKD rats under the condition of IR muscle, adipose tissue insulin resistance associated with down-regulation of mTORC1.2 insulin, CKD in vitro rat serum stimulation of muscle cells, fat cells can produce IR.3 activation in vitro, mTORC1 can improve the serum CKD of rats stimulated muscle cells to produce IR, but had no obvious effect on fat cells.

【学位授予单位】:中国人民解放军医学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R692

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 张惠,张建,苏昕,王廷涛,陈厚芹;胰岛素抵抗与妊娠高血压综合征的关系[J];华北煤炭医学院学报;2000年04期

2 傅诚强;胰岛素抵抗和择期性手术[J];国外医学.外科学分册;2001年03期

3 贾伟平;中国人群胰岛素抵抗的状况[J];国外医学.内分泌学分册;2002年04期

4 宁光;李长贵;洪洁;汤正义;李果;龚艳春;彭怡文;郭冀珍;沈卫峰;商淑华;罗邦尧;陈家伦;;胰岛素抵抗基础和临床研究[J];医学研究通讯;2002年11期

5 姚小皓,沈凯,李学军;胰岛素对中枢神经系统疾病的影响[J];生理科学进展;2003年01期

6 柯红林;;2型糖尿病中胰岛素抵抗发生机制的研究进展[J];国外医学(老年医学分册);2003年03期

7 常桂娟;胰岛素抵抗的环境因素[J];现代诊断与治疗;2004年02期

8 米杰 ,张力;胰岛素抵抗[J];中华预防医学杂志;2004年04期

9 王继旺,张素华,任伟,杜娟,陈静,包柄楠,汪志红,苗青;吸烟与胰岛素抵抗的相关性调查与分析[J];中国公共卫生;2004年08期

10 阳柳雪;刘红;;可溶性肿瘤坏死因子受体2与胰岛素抵抗[J];中国医学文摘.内科学;2004年01期

相关会议论文 前10条

1 陈艳秋;宗敏;华莉;李臻;肖菲;孙建琴;;2型糖尿病患者肝脏脂肪与胰岛素抵抗的关系[A];中国营养学会老年营养分会第七次全国营养学术交流会“营养与成功老龄化”暨国家级继续教育项目“神经系统疾病医学营养治疗”资料汇编[C];2010年

2 陈艳秋;陈敏;宗敏;华莉;李臻;张鑫毅;孙建琴;;2型糖尿病患者肝脏脂肪分布与胰岛素抵抗[A];老年营养研究进展与老年营养供餐规范研讨会暨糖尿病肾病医学营养治疗进展学习班资料汇编[C];2011年

3 宋晓敏;耿秀琴;郭长磊;;胰岛素抵抗几个相关因素在公安人群中的状态与分析[A];中华医学会第六次全国内分泌学术会议论文汇编[C];2001年

4 游捷;陈瑶;黄培基;林哲章;;血清可溶性肿瘤坏死因子受体与胰岛素抵抗的关系[A];中华医学会第六次全国内分泌学术会议论文汇编[C];2001年

5 谢彬;陈上云;郭坚;刘薇;劳干诚;;监测真胰岛素观察胰岛素抵抗与胰岛素敏感性[A];中华医学会第六次全国内分泌学术会议论文汇编[C];2001年

6 尹义辉;王经武;;消胰抗治疗胰岛素抵抗的临床研究[A];第七次全国中医糖尿病学术大会论文汇编[C];2003年

7 吕圭源;刘赛月;;中药抗胰岛素抵抗研究进展[A];浙江省2005年中药学术年会论文集[C];2005年

8 王晓静;刘正齐;;一种简便实用且较准确评估胰岛素抵抗的新方法[A];全国中西医结合内分泌代谢病学术会议论文汇编[C];2006年

9 白秀平;李宏亮;杨文英;肖建中;王冰;杜瑞琴;楼大钧;;脂肪分存顺序与肝脏及肌肉胰岛素抵抗的关系[A];2006年中华医学会糖尿病分会第十次全国糖尿病学术会议论文集[C];2006年

10 孙勤;李伶;杨刚毅;欧阳凌云;陈渝;刘华;唐毅;Gunther Boden;;小鼠扩展胰岛素钳夹术的建立[A];2006年中华医学会糖尿病分会第十次全国糖尿病学术会议论文集[C];2006年

相关重要报纸文章 前10条

1 ;胰岛素小常识[N];保健时报;2004年

2 ;胰岛素抵抗,,怎么办?[N];解放日报;2004年

3 中南大学湘雅二医院老年病科副教授 陈化;什么是“胰岛素抵抗”[N];健康报;2001年

4 张家庆 (教授);适度锻炼身体改善胰岛素抵抗[N];上海中医药报;2003年

5 本报记者 韩晓英;注射胰岛素会成瘾吗[N];中国中医药报;2002年

6 张怡梅 刘 斌;恶性肿瘤与胰岛素抵抗[N];中国中医药报;2003年

7 健康时报特约记者 陈锦屏;胖人易发“胰岛素抵抗”[N];健康时报;2007年

8 殳雪怡;胰岛素抵抗 有办法“抵抗”吗[N];家庭医生报;2007年

9 刘文山;胰岛素抵抗[N];家庭医生报;2007年

10 孟怀东;“致命四重奏”与胰岛素抵抗[N];中国医药报;2007年

相关博士学位论文 前10条

1 殷青青;胰岛素抵抗大鼠脑组织损伤机制以及番茄红素的保护作用研究[D];山东大学;2015年

2 施琳颖;二氢杨梅素通过诱导细胞自噬改善骨骼肌胰岛素抵抗的作用及其机制研究[D];第三军医大学;2015年

3 隆敏;下丘脑室旁核神经肽Y长期过表达诱导外周胰岛素抵抗作用机制研究[D];第三军医大学;2015年

4 黄文辉;高胰岛素抑制肾脏尿酸排泄的基础与临床研究以及氯沙坦的干预机制[D];兰州大学;2015年

5 付锋;缺血后心肌胰岛素抵抗促发缺血性心力衰竭及其机制[D];第四军医大学;2015年

6 王宗保;NO-1886对糖脂代谢的影响及机制研究[D];南华大学;2014年

7 张真稳;小檗碱协同甘丙肽降低2型糖尿病鼠脂肪组织胰岛素抵抗的实验研究[D];扬州大学;2015年

8 何奕多;TNF-α对脂联素多聚化修饰及分泌调控的研究[D];华中农业大学;2015年

9 陈璇;白虎二地汤调控胰岛素信号通路改善2型糖尿病胰岛素抵抗的研究[D];南京中医药大学;2015年

10 许凤;海藻中新型PTP1B抑制剂对db/db糖尿病模型的改善与作用机制的研究[D];青岛大学;2016年

相关硕士学位论文 前10条

1 李娇;mTORC1在慢性肾脏病胰岛素抵抗中的作用[D];中国人民解放军医学院;2017年

2 李晨;辛伐他汀、胰岛素联合用药对糖尿病大鼠下颌骨骨折愈合的影响[D];河北联合大学;2014年

3 贾晓娇;血清Vaspin、u樗亍⒅卦谌焉锾悄虿』颊咧兴郊坝胍鹊核氐挚沟墓叵礫D];河北医科大学;2015年

4 黄声;胰岛素抵抗与认知功能障碍的关系研究[D];福建医科大学;2015年

5 牛尚梅;骨骼肌PGC-1α在高脂导致的胰岛素抵抗中的作用机制[D];河北医科大学;2015年

6 安雨;血清视黄醇结合蛋白-4与2型糖尿病及肥胖的相关性研究[D];河北医科大学;2015年

7 陈旭;高胰岛素水平导致肥胖相关机制研究[D];郑州大学;2015年

8 刘晨曦;津力达改善棕榈酸诱导的肌细胞胰岛素抵抗的机制[D];河北医科大学;2015年

9 段力园;津力达颗粒对高脂诱导的HepG2细胞胰岛素抵抗影响的研究[D];河北医科大学;2015年

10 张东蛟;津力达对高脂诱导的胰岛素抵抗ApoE基因敲除小鼠脂肪组织中脂代谢的影响[D];河北医科大学;2015年



本文编号:1734756

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/mjlw/1734756.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户68c9a***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com