双层猪小肠粘膜下层脱细胞胶原/PLGA静电纺丝复合膜载荷PFTα提高成骨作用的实验研究
发布时间:2021-11-02 20:15
第一部分PFTα诱导MC3T3-E1细胞成骨分化的机制研究目的探索PFTα诱导成骨分化的作用机制方法本研究采用CCK-8检测PFTα对MC3T3-E1细胞毒性,筛选PFTα诱导MC3T3-E1细胞成骨分化的最佳浓度。细胞经PFTα处理后,real-time PCR、westernblot、免疫荧光法检测细胞内NOX4水平,流式细胞仪检测ROS水平。制备并筛选siNOX4i并将siNOX4转染细胞,观察干扰NOX4后PFTα对MC3T3-E1细胞成骨诱导的作用机制。分别予细胞ALP、茜素红染色观察成骨情况;qPCR,WB、IF检测Nox4;流式检测ROS的表达。结果PFTα能显著提高MC3T3-E1细胞成骨分化。在10-80μmol范围内随着PFTα浓度增高细胞活力下降。同时,随着PFTα浓度增加,NOX4和ROS水平也逐步增加,成骨能力提升。在转染si-NOX4的细胞后,PFTα增加NOX4-ROS的作用和促进成骨的作用明显受到抑制。结论PFTα通过PFTα-NOX4-ROS通路促进MC3T3-E1细胞成骨分化第二部分SIS-ECM/PLGA/PFTα,复合膜体外诱导MC3T3-E1细...
【文章来源】:南方医科大学广东省
【文章页数】:117 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
图1-1?p53的基本结构间??Fig.?1-1?The?basic?structure?of?p53??
?博士学位论文???3.实验结果??3.1?CCK8检测药物对细胞活性的影响??对不同浓度的PFTa细胞毒性进行筛眩按照5?nM,?10?|iM,20?pM,?40?pM,??80?nM的浓度进行配置,MC3T3-E1细胞经不冋浓度的PFTa处理24小时后,检??测细胞活性情况。如图1-2?CCK8在450nm处OD值所示:与对照组(MC3T3-E1)??相比,随着PFTa浓度增加,OD数值逐渐减小:细胞相对增值率如表1-3:与对??照组相比,5pM,?lOpM,20pM组细胞增殖率较高,均大?丁-80%,40pM组??61.8°/。,80pM组细胞增殖率<50%。Ifl丨细胞毒性:5(iM,10pM,20pM为1级,??40?为2级,80pM3级,冈此在80?pM细胞的毒性作用已经显著增加。??E?1.〇1?*??c?|?1?,?■?MC3T3-E1??養?0.8-?^?1?|??WM?MC3T3-E1+5mM?PFTa????H|?t?*?■?MC3T3-E1?+?10_?PFTa??Bi?MC3T3-E1+20(JM?PFTa??|?B|?m?MC3T3-E1+40(jM?PFTa??illlUU??^?^?<C>?/???。令。令0?士??图1-2不同浓度的PFTct处理MC3T3-E1细胞后,CCK8法检测细胞毒性。随着浓度的增加,??细胞的活性下降。数据以M土SD:*p<().()5。??Fig.?1-2?CCK8?was?conducted?to?test?the?c>?toto\icity?of?PFTa?used?in?MC3T3-E1?cells.?With?the??inc
Tct?90.8%?1??MC3T3-EK20^M?PFTa?84.2&?1??MC3T3-El+40^iM?PFTa?61.8%?2??MC3T3-El+80^iM?PFTa?40.6%?3??3.2?ALP结果??用不同浓度的PFTa处理MC3T3-E1细胞,诱导其成骨。ALP是成骨分化的??早期指标,因此MC3T3-E1细胞培养7天后行ALP检测,结果显示相对于对照??组,PFTa具备诱导成骨分化的能力,这种作用呈剂量依赖性,在40pM的时候??达到峰值(如图1-3)。结合CCK8的结果综合分析PFTa在40pM具有最大的??成骨作用,细胞毒性相对于80pM校后续实验采用40pM浓度。??2?°'1°?]?.?■?*???m?MC3T3-E1??§_?0.08-?■?*?I?_?'?m?MC3T3-E1?+?5|JM?PFTa??〇?|?■?MC3T3-E1?+?10|JM?PFTa??2?0?06?■????H?MC3T3-E1+20|JM?PFTa??;H?MC3T3-E1+40|JM?PFTa??,专?〇.04-?_?MC3T3-E1+8〇mM?PFTa??匕?tutu??^?/?/?/?/??图1-3不同浓度的PFTa处理MC3T3-E1细胞7天后行ALP检测。数据以M士SD:*p<0.05。??Fig.?1-3?The?osteogenesis?of?MC3T3-E1?cells?treated?with?different?concentrations?of?PFT?a?was??detected?by?ALP?after?7?days.?Data?were?repr
本文编号:3472321
【文章来源】:南方医科大学广东省
【文章页数】:117 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
图1-1?p53的基本结构间??Fig.?1-1?The?basic?structure?of?p53??
?博士学位论文???3.实验结果??3.1?CCK8检测药物对细胞活性的影响??对不同浓度的PFTa细胞毒性进行筛眩按照5?nM,?10?|iM,20?pM,?40?pM,??80?nM的浓度进行配置,MC3T3-E1细胞经不冋浓度的PFTa处理24小时后,检??测细胞活性情况。如图1-2?CCK8在450nm处OD值所示:与对照组(MC3T3-E1)??相比,随着PFTa浓度增加,OD数值逐渐减小:细胞相对增值率如表1-3:与对??照组相比,5pM,?lOpM,20pM组细胞增殖率较高,均大?丁-80%,40pM组??61.8°/。,80pM组细胞增殖率<50%。Ifl丨细胞毒性:5(iM,10pM,20pM为1级,??40?为2级,80pM3级,冈此在80?pM细胞的毒性作用已经显著增加。??E?1.〇1?*??c?|?1?,?■?MC3T3-E1??養?0.8-?^?1?|??WM?MC3T3-E1+5mM?PFTa????H|?t?*?■?MC3T3-E1?+?10_?PFTa??Bi?MC3T3-E1+20(JM?PFTa??|?B|?m?MC3T3-E1+40(jM?PFTa??illlUU??^?^?<C>?/???。令。令0?士??图1-2不同浓度的PFTct处理MC3T3-E1细胞后,CCK8法检测细胞毒性。随着浓度的增加,??细胞的活性下降。数据以M土SD:*p<().()5。??Fig.?1-2?CCK8?was?conducted?to?test?the?c>?toto\icity?of?PFTa?used?in?MC3T3-E1?cells.?With?the??inc
Tct?90.8%?1??MC3T3-EK20^M?PFTa?84.2&?1??MC3T3-El+40^iM?PFTa?61.8%?2??MC3T3-El+80^iM?PFTa?40.6%?3??3.2?ALP结果??用不同浓度的PFTa处理MC3T3-E1细胞,诱导其成骨。ALP是成骨分化的??早期指标,因此MC3T3-E1细胞培养7天后行ALP检测,结果显示相对于对照??组,PFTa具备诱导成骨分化的能力,这种作用呈剂量依赖性,在40pM的时候??达到峰值(如图1-3)。结合CCK8的结果综合分析PFTa在40pM具有最大的??成骨作用,细胞毒性相对于80pM校后续实验采用40pM浓度。??2?°'1°?]?.?■?*???m?MC3T3-E1??§_?0.08-?■?*?I?_?'?m?MC3T3-E1?+?5|JM?PFTa??〇?|?■?MC3T3-E1?+?10|JM?PFTa??2?0?06?■????H?MC3T3-E1+20|JM?PFTa??;H?MC3T3-E1+40|JM?PFTa??,专?〇.04-?_?MC3T3-E1+8〇mM?PFTa??匕?tutu??^?/?/?/?/??图1-3不同浓度的PFTa处理MC3T3-E1细胞7天后行ALP检测。数据以M士SD:*p<0.05。??Fig.?1-3?The?osteogenesis?of?MC3T3-E1?cells?treated?with?different?concentrations?of?PFT?a?was??detected?by?ALP?after?7?days.?Data?were?repr
本文编号:3472321
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/swyx/3472321.html