壳聚糖—羟基苯甲酸类接枝共聚物膜的合成及其对双孢菇的保鲜效果
发布时间:2021-06-25 10:44
本文利用1-(3-二甲基氨丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐(EDC)/N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)化学交联法分别将5种羟基苯甲酸(香草酸、丁香酸、原儿茶酸、龙胆酸、没食子酸)接枝到壳聚糖分子上,并将接枝共聚物制备成膜;通过比较5种壳聚糖-羟基苯甲酸接枝共聚物膜的理化特性、机械强度及抗氧化活性,筛选出综合性能较好的壳聚糖-没食子酸接枝共聚物膜,并评价其对双孢菇的保鲜效果。(1)通过EDC/NHS介导的交联反应分别将5种羟基苯甲酸(香草酸、丁香酸、原儿茶酸、龙胆酸、没食子酸)接枝到壳聚糖上,并对制备的壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物进行结构鉴定和理化特性分析。结果表明,5种壳聚糖-羟基苯甲酸接枝共聚物的接枝率为34.9-111.0 mg/g,接枝共聚物溶液在250-600 nm处有明显的紫外-可见吸收峰。与壳聚糖的红外光谱相比,壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物在1596 cm-1及1654 cm-1处的吸收峰强度减弱,主要是由于酰胺键的形成;同时,接枝共聚物在1730cm-1处出现新的峰,对应于酯键的C=O伸缩振动。核磁共振氢谱显示,壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物除了具有壳聚糖的所有质子信号外,...
【文章来源】:扬州大学江苏省
【文章页数】:87 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
通过EDCINHS合成壳聚糖一经基笨甲酸类接枝共聚物的反应机理
?2.3.3壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的紫外光谱图??图2.2显示了壳聚糖及壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的紫外光谱图。壳聚糖在??250-600?nm处无明显的紫外吸收峰,而壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物有明显的紫外吸??收峰。不同的接枝共聚物出峰位置也不尽相同,如表2.1所示,GLA-g-CS、GTA-g-CS、??PA-g-CS、SA-g-CS以及VA-g-CS的紫外吸收峰位置分别为270?nm、322?nm、258?nm和??293?nm、270?nm、260?nm和295?nm。壳聚糖-轻基苯甲酸类接枝共聚物的紫外吸收峰位置??与其对应的苯甲酸紫外吸收峰位置相一致,表明不同的羟基苯甲酸己经成功接枝到壳聚糖??上。其他研究者也发现了相似的实验结果[37,44,?46]。Liu等[37]指出紫外吸收峰是由接枝共??聚物中羟基苯甲酸的71键引起的。从图中可以看出,紫外吸收峰的强度大小顺序为??GLA-g-CS?>?VA-g-CS?>?PA-g-CS?>?SA-g-CS?>?GTA-g-CS,与壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共??聚物的接枝率呈正相关。〇1^等[37]和\\^等[39]也发现了相似的现象
Fig.?2.3?FT-IR?spectra?of?CS?(a),?VA-g-CS(b),?SA-g-CS?(c),?PA-g-CS?(d),?GTA-g-CS(e)?and?GLA-g-CS(f)??2.3_5壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的核磁共振氢谱图??壳聚糖及壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的核磁共振氢谱图如图2.4所示。壳聚糖??在4.46?ppm处的化学位移对应于壳聚糖吡喃环的H-1,3.60-3.81?ppm处的化学位移对应??于H-3、H-4、H-5和H-6,?3.06ppm处对应于吡喃环上的H-2,1.95?ppm处对应于乙酰??氨基葡萄糖残基的甲基质子。与壳聚糖相比,壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物除了具有??壳聚糖所有的质子信号外,还在6.0-8.0?ppm范围内出现了新的化学位移,据文献报道[37,??44],不同接枝共聚物出现的新质子信号是由羟基苯甲酸的芳香质子所产生的。表2.1显示??了不同壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物核磁共振氢谱的化学位移及其取代度,这一实验??结果进一步证实了羟基苯甲酸己经成功接枝到壳聚糖上。接枝共聚物的取代度由羟基苯甲??酸芳香质子对应的峰面积与壳聚糖H-2对应的峰面积的比值决定[5()]。壳聚糖-羟基苯甲酸??
本文编号:3249067
【文章来源】:扬州大学江苏省
【文章页数】:87 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
通过EDCINHS合成壳聚糖一经基笨甲酸类接枝共聚物的反应机理
?2.3.3壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的紫外光谱图??图2.2显示了壳聚糖及壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的紫外光谱图。壳聚糖在??250-600?nm处无明显的紫外吸收峰,而壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物有明显的紫外吸??收峰。不同的接枝共聚物出峰位置也不尽相同,如表2.1所示,GLA-g-CS、GTA-g-CS、??PA-g-CS、SA-g-CS以及VA-g-CS的紫外吸收峰位置分别为270?nm、322?nm、258?nm和??293?nm、270?nm、260?nm和295?nm。壳聚糖-轻基苯甲酸类接枝共聚物的紫外吸收峰位置??与其对应的苯甲酸紫外吸收峰位置相一致,表明不同的羟基苯甲酸己经成功接枝到壳聚糖??上。其他研究者也发现了相似的实验结果[37,44,?46]。Liu等[37]指出紫外吸收峰是由接枝共??聚物中羟基苯甲酸的71键引起的。从图中可以看出,紫外吸收峰的强度大小顺序为??GLA-g-CS?>?VA-g-CS?>?PA-g-CS?>?SA-g-CS?>?GTA-g-CS,与壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共??聚物的接枝率呈正相关。〇1^等[37]和\\^等[39]也发现了相似的现象
Fig.?2.3?FT-IR?spectra?of?CS?(a),?VA-g-CS(b),?SA-g-CS?(c),?PA-g-CS?(d),?GTA-g-CS(e)?and?GLA-g-CS(f)??2.3_5壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的核磁共振氢谱图??壳聚糖及壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物的核磁共振氢谱图如图2.4所示。壳聚糖??在4.46?ppm处的化学位移对应于壳聚糖吡喃环的H-1,3.60-3.81?ppm处的化学位移对应??于H-3、H-4、H-5和H-6,?3.06ppm处对应于吡喃环上的H-2,1.95?ppm处对应于乙酰??氨基葡萄糖残基的甲基质子。与壳聚糖相比,壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物除了具有??壳聚糖所有的质子信号外,还在6.0-8.0?ppm范围内出现了新的化学位移,据文献报道[37,??44],不同接枝共聚物出现的新质子信号是由羟基苯甲酸的芳香质子所产生的。表2.1显示??了不同壳聚糖-羟基苯甲酸类接枝共聚物核磁共振氢谱的化学位移及其取代度,这一实验??结果进一步证实了羟基苯甲酸己经成功接枝到壳聚糖上。接枝共聚物的取代度由羟基苯甲??酸芳香质子对应的峰面积与壳聚糖H-2对应的峰面积的比值决定[5()]。壳聚糖-羟基苯甲酸??
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