量子点与纳米金的制备及其分析应用
本文关键词:量子点与纳米金的制备及其分析应用
【摘要】:量子点由于量子产率高,荧光寿命长,发射光谱窄而对称、吸收光谱宽而连续,光稳定性及生物相容性极好等性质,被广泛地应用于分析化学。纳米金由于特殊的物理和化学特性,尤其是其在紫外-可见区域内具有较高的消光系数和能进行可视化检测方面,被作为光学探针广泛应用于生物、化学等各个领域。适配体是一小段经体外筛选得到的寡核苷酸序列,能与相应的目标物质进行高度特异性结合,同时能吸附在带负电荷的纳米金颗粒的表面来增加其稳定性,还能使带正电荷的纳米金发生团聚,将其引入传感器中能大大增加实验的选择性和灵敏度。本文主要完成了量子点和纳米金的制备、表征及其分析应用等实验内容。具体概述如下:(1)合成了巯基乙酸修饰的CdTe量子点,分别采用紫外-可见分光光度法、荧光光谱法、Zeta电位和动态光散射技术(DLS)等方法进行了表征。通过静电作用,孔雀石绿能使量子点荧光发生猝灭并具有很好的线性关系,结合孔雀石绿易与适配体发生作用及适配体和目标物具有很好的特异性等特点,构造一种基于量子点适配体无标记荧光传感器的溶菌酶检测方法。实验结果表明,在pH为8.0的Tris-HCl缓冲溶液体系中,溶菌酶浓度在0.1-60 nM范围内,体系的荧光猝灭程度与溶菌酶的浓度存在良好的线性关系,实际样品(唾液)的加标回收率为93.2%-101.5%。(2)合成了一种带负电的柠檬酸-纳米金和带负电的谷胱甘肽-CdTe量子点,基于柠檬酸-纳米金与谷胱甘肽-量子点的内滤光作用构建了一种简单、快速、灵敏和无标记传感器检测溶菌酶。实验结果表明,当溶菌酶的浓度在4.0-60 nmol L~(-1)范围内,体系的荧光相对强度F/F0与溶菌酶浓度存在着很好的线性关系,检出限为3.0nmol L~(-1),实际样品(眼泪)加标回收率为94.6%-102.5%。(3)合成了一种带正电的巯基乙胺-纳米金和带负电的谷胱甘肽-量子点,基于AuNPs与QDs的FRET构建了一种无标记适配体传感器比色、荧光检测凝血酶。实验结果表明,当凝血酶浓度在10-80 nmol L~(-1)范围内,体系的荧光相对强度F/F0与凝血酶浓度存在着很好的线性关系。对于实际样品的加标回收率为103.3%-108.5%。
【关键词】:量子点 纳米金 适配体 溶菌酶 凝血酶
【学位授予单位】:湘潭大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:O657.3
【目录】:
- 摘要4-5
- Abstract5-10
- 第1章 绪论10-23
- 1.1 纳米材料简介10-13
- 1.1.1 纳米材料的分类11
- 1.1.2 纳米材料的表征11-12
- 1.1.3 纳米材料的应用12-13
- 1.2 量子点13-17
- 1.2.1 量子点的性质13-14
- 1.2.2 量子点的制备及纯化14-16
- 1.2.3 量子点荧光探针的应用16-17
- 1.3 纳米金17-20
- 1.3.1 纳米金的性质17-18
- 1.3.2 纳米金的制备及纯化18
- 1.3.3 纳米金的应用18-20
- 1.4 荧光共振能量转移20-21
- 1.5 内滤光作用21-22
- 1.6 论文选题的意义及主要研究内容22-23
- 第2章 基于量子点和适配体的无标记荧光法检测溶菌酶23-32
- 2.1 引言23
- 2.2 实验部分23-25
- 2.2.1 实验仪器与试剂23-24
- 2.2.2 CdTeQD的合成24
- 2.2.3 实验方法24-25
- 2.3 结果与讨论25-30
- 2.3.1 实验原理25
- 2.3.2 CdTe量子点的表征25-26
- 2.3.3 实验条件的选择26-28
- 2.3.4 溶菌酶的检测28-29
- 2.3.5 干扰实验29-30
- 2.3.6 样品的分析30
- 2.4 结论30-32
- 第3章 基于纳米金与量子点的内滤光作用的无标记适配体荧光、比色传感器检测溶菌酶32-44
- 3.1 引言32
- 3.2 实验部分32-34
- 3.2.1 实验仪器与试剂32-33
- 3.2.2 CdTeQDs的合成33
- 3.2.3 AuNPs的制备33
- 3.2.4 溶菌酶的检测33-34
- 3.3 结果与讨论34-43
- 3.3.1 实验原理34
- 3.3.2 CdTeQDs与AuNPs的表征34-36
- 3.3.3 AuNPs对CdTeQDs荧光强度的影响36-38
- 3.3.4 实验条件的选择38-39
- 3.3.5 溶菌酶的检测39-41
- 3.3.6 干扰实验41-42
- 3.3.7 样品分析42-43
- 3.4 结论43-44
- 第4章 基于AuNPs与CdTeQDs的FRET的无标记适配体传感器比色、荧光检测凝血酶44-58
- 4.1 引言44
- 4.2 实验部分44-46
- 4.2.1 实验仪器与试剂44-45
- 4.2.2 AuNPs的制备45
- 4.2.3 CdTeQDs的合成45-46
- 4.2.4 凝血酶的检测46
- 4.3 结果与讨论46-57
- 4.3.1 实验原理46-51
- 4.3.2 CdTeQDs与AuNPs的表征51-52
- 4.3.3 实验条件的选择52-55
- 4.3.4 凝血酶的检测55-56
- 4.3.5 干扰实验56-57
- 4.3.6 样品分析57
- 4.4 结论57-58
- 结论58-59
- 参考文献59-67
- 致谢67-68
- 个人简历、在学期间发表的学术论文及研究成果68
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