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多巴胺类生物样品的处理与电化学检测方法的建立

发布时间:2017-08-20 22:24

  本文关键词:多巴胺类生物样品的处理与电化学检测方法的建立


  更多相关文章: 多巴胺 左旋多巴 抗坏血酸 电化学 方波伏安法 差分脉冲法


【摘要】:儿茶酚胺是由两个邻羟基的苯环和一个氨基链组成的生物神经类递质。多巴胺(Dopamine,DA)属于儿茶酚胺类物质的一种,对人体的神经调节和相关的神经系列活动具有很重要的生理意义。老年痴呆症、癫痫症和帕金森等病症就是因为人体内DA的含量异常引起的。所以,研究DA对于保障人类健康具有重要意义。左旋多巴(L-dopa)和DA一样,也是一种非常重要的儿茶酚胺类物质。它是DA的合成前体,它能够通过血脑屏障进入脑组织,及时补充DA,进而达到了治疗帕金森症的效果。因为这两种儿茶酚胺对人类的健康具有很重要的意义。所以建立一种简单、快速而又准确的检测DA和L-dopa的电化学方法是很有必要的。因为DA和L-dopa具有电化学活性。所以,可以直接用电化学方法对其测定。在进行电化学测定的时候,主要问题来自于抗坏血酸(AA)的干扰。因为在人的体液和大脑中,AA的浓度远远高于多巴胺和左旋多巴胺的浓度,而且它们的氧化电位相近。所以如何更好地消除AA的干扰,实现对于DA和L-dopa的准确检测,是电化学分析研究的热点。本实验利用在负向扫描过程中,AA的电化学信号大幅度降低,而DA和L-dopa的电化学信号基本保持不变的实验原理。通过优化pH、静置时间、扫描宽度、频率等条件得到最优条件。在最优条件下,对于微量DA和L-dopa准确的测定。使用差分脉冲法测定混合溶液的时候,DA在2.0×10-7~1.0×10-5mol/L浓度范围内与其峰电流呈现良好的线性关系,检出限达到了1.0×10-7mol/L,并实现了对人体尿液中DA的准确检测。通过加标回收测定了回收率,回收率的范围在93%~95%;而L-dopa在1.0×10-6~5.0×10-4mol/L范围内其浓度与峰电流的大小呈现出良好的线性关系,检测下限达到了1.0×10-7mol/L。
【关键词】:多巴胺 左旋多巴 抗坏血酸 电化学 方波伏安法 差分脉冲法
【学位授予单位】:辽宁大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:O657.1
【目录】:
  • 摘要4-5
  • ABSTRACT5-11
  • 第1章 序言11-23
  • 1.1 儿茶酚胺概述11-15
  • 1.1.1 多巴胺(DA)11-14
  • 1.1.1.1 多巴胺对于硬肿症的治疗12-13
  • 1.1.1.2 多巴胺对于肾肺心类内科疾病的治疗13
  • 1.1.1.3 多巴胺对于肝硬化顽固性腹水的治疗13-14
  • 1.1.2 左旋多巴胺(L-DOPA)14-15
  • 1.1.2.1 左旋多巴胺对于帕金森症的治疗14
  • 1.1.2.2 左旋多巴胺对于心力衰竭的治疗14-15
  • 1.1.2.3 左旋多巴胺对于促进骨折早期愈合15
  • 1.2 儿茶酚胺的测定方法15-22
  • 1.2.1 光谱法16
  • 1.2.1.1 荧光光谱法16
  • 1.2.1.2 共振散射光谱法16
  • 1.2.2 分光光度法16
  • 1.2.3 化学发光法16-17
  • 1.2.4 高效液相色谱法(HPLC)17
  • 1.2.4.1 氧化铝吸附法17
  • 1.2.4.2 直接进样法17
  • 1.2.4.3 外标法17
  • 1.2.5 电化学方法17-22
  • 1.2.5.1 Nafion膜材料电化学传感器18-19
  • 1.2.5.2 介孔材料电化学传感器19-20
  • 1.2.5.3 纳米材料的电化学传感器20-22
  • 1.3 研究课题的提出22-23
  • 第2章 差分脉冲法测定多巴胺和抗坏血酸23-43
  • 2.1 前言23
  • 2.2 实验部分23-24
  • 2.2.1 实验仪器及装置23-24
  • 2.2.2 实验药品24
  • 2.3 溶液配制24-25
  • 2.4 实验方法25
  • 2.5 结果和讨论25-40
  • 2.5.1 差分脉冲测定抗坏血酸和多巴胺的原理研究25-27
  • 2.5.1.1 多巴胺电化学原理25-26
  • 2.5.1.2 抗坏血酸电化学原理26-27
  • 2.5.2 实验条件优化27-31
  • 2.5.2.1 正向扫描和负向扫描效果的比较27-29
  • 2.5.2.2 缓冲溶液pH的选择29-30
  • 2.5.2.3 扫描宽度的选择30-31
  • 2.5.2.4 静置时间的选择31
  • 2.5.3 与抗坏血酸共同存在的多巴胺的差分脉冲的测定31-37
  • 2.5.3.1 差分脉冲法测定与1.0 mmol/LAA共存的0.1~0.5 mmol/L的DA32-33
  • 2.5.3.2 差分脉冲法测定与1.0 mmol/LAA共存的0.01~0.05 mmol/L的DA33-34
  • 2.5.3.3 差分脉冲法测定与1.0 mmol/LAA共存的0.001~0.005 mmol/L的DA34-36
  • 2.5.3.4 差分脉冲法测定与1.0 mmol/LAA共存的0.001~0.005 mmol/L的DA36-37
  • 2.5.4 干扰实验37-40
  • 2.5.4.1 AA对于实验的干扰测定37-38
  • 2.5.4.2 甘氨酸对于实验的干扰38-39
  • 2.5.4.3 L-赖氨酸对于实验的干扰39-40
  • 2.6 实际样测定40-42
  • 2.7 本章小结42-43
  • 第3章 方波伏安法测定左旋多巴胺和抗坏血酸43-58
  • 3.1 前言43
  • 3.2 实验部分43-45
  • 3.2.1 实验仪器与装置43-44
  • 3.2.2 实验药品44
  • 3.2.3 溶液配制44
  • 3.2.4 实验方法44-45
  • 3.3 结果和讨论45-57
  • 3.3.1 差分脉冲测定抗坏血酸中微量多巴胺的原理45-47
  • 3.3.1.1 左旋多巴电化学原理45-46
  • 3.3.1.2 抗坏血酸电化学原理46-47
  • 3.3.2 实验条件优化47-51
  • 3.3.2.1 正向扫描和负向扫描效果的比较47-49
  • 3.3.2.2 pH条件的优化49-50
  • 3.3.2.3 频率的优化选择50-51
  • 3.3.2.4 静置时间的优化选择51
  • 3.3.3 方波法测定与抗坏血酸共存的左旋多巴51-55
  • 3.3.3.1 方波脉冲法测定与1.0 mmol/L AA共存的0.1-0.5 mmol/L的L-Dopa51-53
  • 3.3.3.2 方波脉冲法测定与1.0 mmol/L AA共存的0.01-0.05 mmol/L的L-Dopa53-54
  • 3.3.3.3 方波脉冲法测定与1.0 mmol/L AA共存的0.001-0.005 mmol/L的L-Dopa54-55
  • 3.3.4 干扰实验55-57
  • 3.3.4.1 L-赖氨酸对于实验的干扰测定55-56
  • 3.3.4.2 L-组氨酸对于实验的干扰测定56-57
  • 3.4 本章小结57-58
  • 第4章 结论与展望58-59
  • 致谢59-60
  • 参考文献60-66

【参考文献】

中国期刊全文数据库 前4条

1 李金萍;谢丽峰;郭春瑞;;基于有序介孔碳的电化学生物传感器的研究进展[J];辽宁化工;2015年08期

2 徐环环;李丹;陈荣;王学亮;郁章玉;;化学修饰电极在儿茶酚胺类物质电化学测定中的应用[J];菏泽学院学报;2013年02期

3 Shan-Shan Li;Hai-Long Wu;Ya-Juan Liu;Hui-Wen Gu;Ru-Qin Yu;;Simultaneous determination of tyrosine and dopamine in urine samples using excitation-emission matrix fluorescence coupled with second-order calibration[J];Chinese Chemical Letters;2013年03期

4 孙延一,吴康兵,胡胜水;多壁碳纳米管-Nafion化学修饰电极在高浓度抗坏血酸和尿酸体系中选择性测定多巴胺[J];高等学校化学学报;2002年11期



本文编号:709237

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