湖北省灰霉病菌致病力分化及菌株HBstr-470中真菌病毒的研究
本文选题:灰霉病菌 + 致病力分化 ; 参考:《华中农业大学》2015年硕士论文
【摘要】:灰葡萄孢(Botrytis cinerea)引起的灰霉病是一类广泛分布的重要病害,而湖北省的地理位置和气候条件也有利于灰霉病的发生。本论文对湖北省灰霉病菌致病力分化情况以及灰霉菌株HBstr-470中的真菌病毒进行了研究,取得了如下的研究成果:首先,本研究对湖北省各地区保护地果蔬灰霉病的发病情况进行了调查采样,发现由灰霉病菌引起的果蔬灰霉病在全省范围内发生十分普遍。从湖北省除神农架林区外的17个城市采集的灰霉病样品中共分离到1140株灰霉病菌。通过菌丝块接种本氏烟离体叶片的方法测定了其中942株灰霉病菌的致病力,发现中强致病力(病斑直径大于10 mm)灰霉病菌的比例高达93.94%,而弱致病力菌株(病斑直径小于等于10 mm)的比例约为6.06%。通过进一步对弱致病力菌株致病力的重复测定,我们最终获得了15株致病力较弱或无致病力的灰霉病菌。其次,对上述15株弱致病力灰霉菌株中的一株弱致病力菌株HBstr-470进行了生物学特性研究。结果表明,该菌株生长速率十分缓慢,菌落形态异常,长期培养不产菌核,但有较多的气生菌丝并产生丰富的分生孢子,且分生孢子的萌发率较高。通过孢子悬浮液接种本氏烟活体叶片,发现菌株HBstr-470的分生孢子致病力也较弱,并且在与强致病力菌株B05.10的孢子液混合接种时产生比B05.10孢子液单独接种更小的病斑。再次,从弱致病力灰霉菌株HBstr-470的菌丝中检测到了5条ds RNA条带,分别命名为条带A、B、C、D和E,并对这5条ds RNA进行了序列的克隆和分析。结果表明,ds RNA-A的大小约为10,000 bp,与Sclerotinia sclerotiorum hypovirus 1的同源关系较高。ds RNA-B、ds RNA-C和ds RNA-D分别与病毒Rosellinia necatrix quadrivirus 1的片段1、片段3和片段4同源,因此,这三条ds RNA可能属于同一真菌病毒不同基因组片段,其中ds RNA-C编码病毒Rd Rp。此外,基于病毒Rd Rp的系统进化分析也表明,该病毒与Quadriviridae科病毒成员Rn QV-W1075和Rn QV-W1118,还有Totiviridae科病毒成员Sc V-L-A和Sc V-L-BC的亲缘关系较近。ds RNA-E大小约为2,000 bp,与Rosellinia necatrix partitivirus 5和Sclerotinia sclerotiorum partitivirus S有较高的同源关系。因此,弱致病力灰霉菌株HBstr-470可能被多种病毒复合侵染,分别属于Hypoviridae、Quadriviridae和Partitiviridae这三个科。最后,通过原生质体融合技术获得了一株灰霉菌株HBstr-470与灰霉菌株B05.10(01868)原生质体融合后的子代菌株B05.10(W1),该菌株培养形态异常,产生大量气生菌丝和分生孢子,且生长十分缓慢,这与灰霉菌株HBstr-470的培养形态较为一致。
[Abstract]:Botrytis cinerea) is a kind of important disease which is widely distributed, and the geographical location and climatic conditions of Hubei Province are also conducive to the occurrence of gray mold disease. In this paper, the pathogenicity differentiation of cinerea in Hubei Province and the fungal virus in HBstr-470 were studied. The results are as follows: first of all, In this study, the incidence of grey mold of fruits and vegetables in protected areas of Hubei Province was investigated and sampled, and it was found that the occurrence of grey mold of fruits and vegetables caused by cinerea cinerea was very common in the whole province. A total of 1140 strains of Botrytis cinerea were isolated from 17 cities in Hubei Province except Shennongjia forest area. The pathogenicity of 942 strains of Botrytis cinerea was determined by inoculating the leaves of Bensi tobacco in vitro. It was found that the proportion of moderately virulent (disease spot diameter > 10 mm) was 93.94, while that of weakly virulent strain (less than 10 mm) was about 6.06 mm. Through the repeated determination of the pathogenicity of the weakly pathogenic strains, we finally obtained 15 strains of grey mold with weak pathogenicity or no pathogenicity. Secondly, the biological characteristics of one of the 15 weakly virulent strains of Aspergillus virulence (HBstr-470) were studied. The results showed that the growth rate of the strain was very slow, the colony morphology was abnormal, and no sclerotia was produced in long-term culture, but there were more airborne hyphae and abundant conidia, and the germination rate of conidia was higher. It was found that the virulence of conidia of strain HBstr-470 was also weak when inoculated with the spore suspension of B05.10, and the disease spot was smaller than that of B05.10 when inoculated with the spore liquid of strong virulent strain B05.10. Thirdly, five DS RNA bands were detected from the hyphae of the weakly virulent Aspergillus strain HBstr-470, named as the band Acarinobium C (D) and the band E, respectively, and the five DS RNA were cloned and analyzed. The results showed that the size of DS RNA-A was about 10000 BP, and the homology with Sclerotinia sclerotiorum hypovirus 1 was higher. DS RNA-Bds RNA-C and DS RNA-D were homologous to Rosellinia necatrix quadrivirus 1 fragment 1, fragment 3 and fragment 4, respectively. These three DS RNA may belong to different genome fragments of the same fungal virus, among which DS RNA-C encodes Rd Rp. In addition, phylogenetic analysis based on virus RRd p also showed that, The relationship between this virus and Rn QV-W1075 and rn QV-W1118 of Quadriviridae family, and that of SC V-L-A and SC V-L-BC of Totiviridae family is about 2000 BP, which has high homology with Rosellinia necatrix partitivirus 5 and Sclerotinia sclerotiorum partitivirus S. Therefore, HBstr-470 may be infected by multiple viruses, belonging to three families: Hypoviridaeae Quadriviridae and Partitiviridae. Finally, the protoplast fusion technique was used to obtain a strain of Aspergillus cinerea (HBstr-470) fused with Ash strain B05.10101868). The strain B05.10W1 was cultured in abnormal morphology and produced a large number of airborne hyphae and conidia, and the growth was very slow. This was consistent with the culture morphology of HBstr-470.
【学位授予单位】:华中农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:S432.44
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 孙业连;;如何防好大棚蔬菜灰霉病[J];科技致富向导;2012年13期
2 吴迪;朱登胜;何勇;张传清;冯雷;;基于地面多光谱成像技术的茄子灰霉病无损检测研究[J];光谱学与光谱分析;2008年07期
3 邢继红;翁巧云;董金皋;;拟南芥感染灰霉病菌后差异表达基因分析[J];河北农业大学学报;2006年01期
4 赵蕾,杨合同;蔬菜灰霉病生防菌的筛选与防效试验初报[J];应用与环境生物学报;1999年01期
5 赵同芝;徐金兰;徐金彪;张玉梅;;茄子灰霉病症状识别与防治技术[J];黑龙江科技信息;2001年08期
6 杨君丽;董汇泽;;纳米Cu_2O原药与悬浮液对菜瓜灰霉病菌的抑制作用[J];甘肃科学学报;2014年02期
7 鲍秀芬,宗玉丽,王志,席海生,刘树良,张爱玲,胡永兰;抗灰霉病菌的产抗生素菌株筛选初报[J];微生物学杂志;1995年01期
8 朱述政;蒋秀琼;;蔬菜灰霉病的发生规律及综合治理技术[J];科技信息;2012年03期
9 孔汶汶;虞佳佳;刘飞;何勇;鲍一丹;;基于高光谱成像技术的番茄茎秆灰霉病早期诊断研究[J];光谱学与光谱分析;2013年03期
10 尚庆茂;张志刚;;亚精胺对黄瓜幼苗灰霉病的诱抗作用[J];应用生态学报;2008年04期
相关会议论文 前10条
1 刘春艳;王万立;郝永娟;王勇;;天津地区灰霉病菌对多菌灵抗药性研究[A];中国植物病理学会2005年学术年会暨植物病理学报创刊50周年纪念会论文摘要集[C];2005年
2 刘春艳;王万立;郝永娟;王勇;;天津地区灰霉病菌对多菌灵抗药性研究[A];中国植物病理学会2005年学术年会暨植物病理学报创刊50周年纪念会论文集[C];2005年
3 张传清;冯雷;张雅;朱国念;;基于光谱学—实时定量PCR联合预警的(抗药性)灰霉病治理技术[A];植物保护科技创新与发展——中国植物保护学会2008年学术年会论文集[C];2008年
4 李威;李跃;杨卓;周颖;;蔬菜灰霉病的防治技术[A];辽宁省农林业无害化生产技术研讨会论文集[C];2011年
5 张纯胄;;茄子果实灰霉病的发生特点及其物候防治试验[A];加入WTO和中国科技与可持续发展——挑战与机遇、责任和对策(上册)[C];2002年
6 张璨;张国珍;;北京地区温室草莓灰霉病菌的室内药剂筛选[A];中国植物病理学会2012年学术年会论文集[C];2012年
7 刘超;刘芝秀;张悦丽;张博;李长松;齐军山;;设施蔬菜灰霉病菌的抗药性检测及绿色防控技术研究[A];“创新驱动与现代植保”——中国植物保护学会第十一次全国会员代表大会暨2013年学术年会论文集[C];2013年
8 范瑾秀;李姗姗;田世仙;逄连;;葡萄灰霉病菌对不同杀菌剂的敏感性分析[A];葡萄产业化与标准化生产——2007年第十三届全国葡萄学术研讨会论文集[C];2007年
9 王春梅;张杰;陈浩;石志琦;;天然化合物丁香酚对灰霉病菌菌丝脂质过氧化和膜损伤的影响[A];江苏省植物病理学会第十一次会员代表大会暨学术研讨会论文集[C];2008年
10 宋士清;尚庆茂;张志刚;;外源水杨酸诱导黄瓜幼苗对灰霉病菌抗性的生化机制[A];中国园艺学会第七届青年学术讨论会论文集[C];2006年
相关重要报纸文章 前10条
1 省植保总站 姜京宇;灰霉病这样防[N];河北科技报;2002年
2 施秀萍 王自生;大棚蔬菜灰霉病的防治[N];中华合作时报;2000年
3 聊城市农业局 孙振成;25%菌思奇防治蔬菜灰霉病效果好[N];山东科技报;2009年
4 徐作埏;大棚蔬菜灰霉病防治[N];山西科技报;2001年
5 李素琴 路静;大棚蔬菜灰霉病防治[N];山西科技报;2004年
6 王绍敏;抓紧防治蔬菜灰霉病[N];山东科技报;2008年
7 中化化肥高级顾问、中国农大教授 肖悦岩;防治蔬菜灰霉病要控制好温湿度[N];农民日报;2010年
8 本报特邀专家 董克锋;大棚蔬菜灰霉病“早、准、换”用药防效佳[N];山东科技报;2010年
9 张晓丹;灰霉病防治[N];云南科技报;2002年
10 北京市植物保护站 孙海;冬季果菜注意防治灰霉病[N];农民日报;2014年
相关博士学位论文 前3条
1 严蕾艳;灰霉病菌双组分组氨酸激酶信号途径上五个关键基因的功能研究[D];浙江大学;2011年
2 李君明;番茄抗灰霉病和晚疫病基因定位及分子标记多基因辅助选育技术研究[D];中国农业科学院;2005年
3 杨倩倩;灰霉病菌中2C型丝氨酸/苏氨酸磷酸酶(PTCs)及酪氨酸磷酸酶(PTPs)的功能研究[D];浙江大学;2013年
相关硕士学位论文 前10条
1 周梓良;湖北省灰霉病菌致病力分化及菌株HBstr-470中真菌病毒的研究[D];华中农业大学;2015年
2 杨晓楠;山东省灰霉病菌对常用杀菌剂敏感性监测及微孔板法检测技术研究[D];山东农业大学;2012年
3 张杰;植物源天然化合物丁香酚对灰霉病菌生物活性初步研究[D];南京师范大学;2008年
4 刘佳;外源物质对番茄幼苗灰霉病抗性诱导效应的研究[D];吉林农业大学;2012年
5 刘超;果蔬灰霉病的抗药性检测及其生防菌的分离[D];曲阜师范大学;2014年
6 李欣欣;拮抗放线菌E001菌株对蔬菜灰霉病的生物防治[D];扬州大学;2011年
7 吴瑶;灰霉病菌Atg9基因的功能研究[D];吉林大学;2015年
8 陈燕芬;灰霉病菌VeA调控系统上三个关键基因的功能研究[D];浙江大学;2012年
9 李永灿;利用病原真菌毒素离体筛选番茄抗灰霉病突变体[D];南京农业大学;2012年
10 苗建强;反式-2-己烯醛诱导黄瓜抗灰霉病活性初步研究[D];山东农业大学;2013年
,本文编号:1837468
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/nykj/1837468.html