MiR-346对Graves病小鼠Tfh细胞影响的初步研究
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【摘要】:目的:利用重组腺病毒载体Ad E-GFP-h TSHR289诱导小鼠GD模型,并初步探讨mi R-346对GD小鼠Tfh细胞的影响。方法:(1)利用电转化的方法将腺病毒骨架质粒转化至E.coli BJ5183中,获得含有腺病毒骨架质粒的E.coli BJ5183(E.coli BJ5183-p),之后将E.coli BJ5183-p制备成化学感受态。(2)利用限制性内切酶技术将h TSHR289插入携带GFP基因的p Ad Track-CMV中,然后将重组后的质粒p Ad Track-h TSHR289转化至感受态E.coli BJ5183-p,利用E.coli BJ5183的重组酶活性,腺病毒骨架质粒和p Ad Track-h TSHR289实现同源重组,得到了携带有目的基因的重组腺病毒骨架质粒(p Ad Easy-GFP-h TSHR289),进一步将此质粒转化至感受态E.coli DH5α中,制备大量拷贝的腺病毒质粒。Pac I酶切p Ad Easy-GFP-h TSHR289,将其转染到人胚肾293A细胞,1-2天后,倒置荧光显微镜下可见293A细胞表达绿色荧光蛋白,初步判断其转染效率。(3)大量扩增重组的腺病毒,TCID50法检测重组腺病毒滴度。在第0、3、6周通过肌肉注射腺病毒免疫刺激雌性BABL/c小鼠。于第10周取小鼠眼球血,ELISA方法检测小鼠血清TRAb和T4水平,同时取甲状腺组织做病理学检查。(4)流式细胞术检测小鼠脾脏和颈部淋巴结Tfh细胞比例。(5)第0、4、8、12、16天,尾静脉注射mi R-346到GD小鼠体内,于第18天处死小鼠,ELISA方法检测小鼠血清TRAb和T4水平,流式细胞术检测小鼠颈部淋巴结中Tfh细胞的比例,并与对照小鼠进行比较。结果(1)通过酶切,转接和测序验证,得到重组质粒p Ad Easy-GFPh TSHR289,通过人胚肾293A细胞包装得到了重组腺病毒(Ad E-GFPh TSHR289)。(2)重组腺病毒具有高滴度和高感染性,TCID50法测得Ad EGFP-h TSHR289的滴度为3.5×109 pfu/ml,Ad E-GFP-CMV的滴度为2.4×109 pfu/ml;ELISA结果显示,与对照组小鼠相比,腺病毒Ad EGFP-h TSHR289处理组小鼠,80%的血清中TRAb水平明显升高(p0.001),60%的血清T4水平升高(p0.01);甲状腺病理切片显示,实验组小鼠的甲状腺细胞轻度增生,滤泡内胶质明显减少。(3)与对照组小鼠相比,GD小鼠颈部淋巴结中Tfh细胞的比例是显著增加的(p0.05),而脾脏中则无显著变化。(4)GD小鼠在mi R-346干预后,与对照组相比,小鼠血清中TRAb和T4水平都出现显著性降低(TRAb:p0.05;T4:p0.01)并且小鼠颈部淋巴结中Tfh细胞的比例也有所下降(p0.05)。结论(1)利用Adeasy系统得到携带h TSHR289的重组腺病毒骨架质粒,通过人胚肾293A细胞包装得到了重组腺病毒。(2)重组腺病毒能够成功诱导BALB/c小鼠GD的发生。(3)GD小鼠颈部淋巴结中Tfh显著增加。(4)mi R-346能够下调Ad E-GFP-h TSHR289诱导的GD小鼠自身抗体的水平。(5)mi R-346能够抑制GD小鼠颈部淋巴结Tfh细胞比例的增多。
【关键词】:miR-346 Graves病 TSHR 腺病毒
【学位授予单位】:江苏大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R581;R446
【目录】:
- 摘要5-7
- ABSTRACT7-16
- 第一章 绪论16-26
- 1.1 Graves病16-17
- 1.1.1 Graves病概述16
- 1.1.2 GD的临床表现和特征16-17
- 1.1.3 GD的发病机制17
- 1.2 TSHR17-20
- 1.2.1 TSHR的基因和蛋白结构18-19
- 1.2.2 TSHR的信号传导19-20
- 1.2.3 TSHR的组织分布20
- 1.3 GD小鼠模型20-22
- 1.3.1 GD的现状20-21
- 1.3.2 GD动物模型的探索21-22
- 1.3.3 理想GD动物模型的构建22
- 1.4 miRNA22-24
- 1.4.1 概述22-23
- 1.4.2 miRNA的生物合成及生物学功能23
- 1.4.3 miRNA与自身免疫病23-24
- 1.5 本研究的目的、方法、实验设计及意义24-26
- 1.5.1 研究目的24
- 1.5.2 研究方法24
- 1.5.3 实验设计24-25
- 1.5.4 意义25-26
- 第二章 人TSHR289基因重组腺病毒的制备与鉴定26-44
- 2.1 实验仪器和材料26-30
- 2.1.1 主要实验仪器26-27
- 2.1.2 菌种、细胞株及质粒27
- 2.1.3 材料和试剂27
- 2.1.4 主要溶液配制27-28
- 2.1.5 相关质粒图谱28-30
- 2.2 实验方法30-37
- 2.2.1 电转化E. coli BJ5183感受态菌制备30-31
- 2.2.2 电转化pAdEasy-131
- 2.2.3 化学法制备感受态E. coli BJ5183-p31-32
- 2.2.4 质粒pBlueScript II SK (+)-hTSHR289扩大培养和鉴定32
- 2.2.5 目的基因hTSHR289的纯化32-33
- 2.2.6 pAdTrack-CMV载体的酶切33
- 2.2.7 目的基因hTSHR289和线性化pAdTrack-CMV载体的连接和鉴定33-34
- 2.2.8 腺病毒载体的重组和鉴定。34-36
- 2.2.9 重组腺病毒载体(pAdEasy-GFP-hTSHR289和pAdEasy-GFP-CMV)的包装。36-37
- 2.3 实验结果37-42
- 2.3.1 pBluescript II SK(+)-hTSHR289的鉴定37-39
- 2.3.2 pAdTrack-hTSHR289的构建和鉴定39-40
- 2.3.3 重组腺病毒质粒载体的构建和鉴定40-41
- 2.3.4 重组腺病毒pAdEasy-GFP-hTSHR289的包装41-42
- 2.4 讨论42-44
- 第三章 GD小鼠模型的构建44-53
- 3.1 实验仪器和材料44-45
- 3.1.1 实验仪器44
- 3.1.2 实验材料44-45
- 3.1.3 实验动物45
- 3.2 实验方法45-48
- 3.2.1 重组腺病毒的大量扩增45-46
- 3.2.2 动物免疫46
- 3.2.3 组织标本及血清的留取46-47
- 3.2.4 血清TRAb检测47-48
- 3.2.5 血清T4检测48
- 3.2.6 小鼠甲状腺组织的病理学检查48
- 3.2.7 统计学分析48
- 3.3 实验结果48-51
- 3.3.1 TCID50法检测病毒滴度48
- 3.3.2 血清TRAb(单位U/L)以及T4检测(单位pg/ml)48-50
- 3.3.3 甲状腺组织病理切片检查50-51
- 3.4 讨论51-53
- 第四章 GD小鼠模型中Tfh细胞比例的变化53-58
- 4.1 实验仪器和材料53-54
- 4.1.1 实验仪器53-54
- 4.1.2 实验材料54
- 4.1.3 实验动物54
- 4.2 实验方法54-55
- 4.2.1 动物模型的构建54
- 4.2.2 流式细胞仪检测小鼠颈部淋巴结中Tfh细胞比例的变化54-55
- 4.2.3 流式细胞仪检测小鼠脾脏Tfh细胞比例的变化55
- 4.2.4 统计学分析55
- 4.3 实验结果55-57
- 4.3.1 小鼠颈部淋巴结中Tfh细胞比例的变化55-56
- 4.3.2 小鼠脾脏Tfh细胞比例的变化56-57
- 4.4 讨论57-58
- 第五章 miR-346对GD小鼠模型的影响58-64
- 5.1 实验仪器和材料58-59
- 5.1.1 实验仪器58
- 5.1.2 实验材料58-59
- 5.1.3 实验动物59
- 5.2 miR-346对GD小鼠的影响59-60
- 5.2.1 GD小鼠模型的构建59
- 5.2.2 miR-346对GD小鼠的干预59-60
- 5.2.3 检测血清中TRAb和T4水平60
- 5.2.4 流式细胞仪检测小鼠淋巴结中Tfh细胞60
- 5.2.5 统计学分析60
- 5.3 实验结果60-62
- 5.3.1 miR-346对GD小鼠血清TRAb和T4的影响60-61
- 5.3.2 miR-346对GD小鼠淋巴结中Tfh的影响61-62
- 5.4 讨论62-64
- 结论64-65
- 参考文献65-81
- 致谢81-82
- 攻读硕士期间发表的文章82
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