营养不良对大鼠脓毒症早期血浆ACTH及皮质酮的影响

发布时间：2020-04-30 01:13

【摘要】：目的:观察营养不良导致的免疫力低下大鼠在脓毒症早期血浆ACTH及皮质酮的变化。方法:将126只雄性SD大鼠随机分为营养良好组(well-nourished group,WN,n=62)和营养不良组(malnutrition group,MN,n=64)。营养良好组大鼠不限制进食量,营养不良组大鼠喂食9g/d(相当于1/3日均进食量),所有大鼠均单笼饲养4周。喂养结束后,每组各取6只处死后留取大鼠脾脏及胸腺,称重记录,并观察组织形态学变化。WN组及MN组各取30只(假手术10只/组,CLP术20只/组),做生存率分析。将营养良好组及营养不良组剩余大鼠再随机分为营养良好CLP组(well-nourished CLP group,WNC,n=16)、营养良好sham组(well-nourished sham group,WNS,n=10)、营养不良CLP组(malnutrition CLP group,n=18)和营养不良sham组(malnutrition sham group,n=10),WNS组及MNS组进行假手术,WNC组及MNC组进行盲肠结扎穿孔(CLP)术。造模后8h及16h经腹主动脉采血离心后留取血清及血浆,通过酶联免疫吸附(ELISA)法检测血清白细胞介素1β(IL-1β)、白细胞介素10(IL-10)及血浆促肾上腺皮质激素(ACTH)、皮质酮(CORT)水平,留取肾上腺观察组织形态学结构、巨噬细胞分布及细胞凋亡,留取脾脏用流式细胞法检测CD3~+、CD4~+、CD8~+T淋巴细胞比例及M1型巨噬细胞(CD11c~+CD80~+、CD11c~+CD86~+)比例。结果:在4周喂养结束后,营养不良大鼠比营养良好大鼠体重、脾脏及胸腺均明显减轻(P0.001)。营养不良大鼠比营养良好大鼠在CLP造模后死亡率更高(100%VS 65%,P0.01)。在CLP术前,营养不良组比营养良好组大鼠脾脏CD4~+T淋巴细胞、CD4~+/CD8~+比值更高(P0.05),M1巨噬细胞(CD11c~+CD80~+)亦更高(P0.01)。而在CLP术后,营养不良及营养良好大鼠脾脏CD4~+、CD8~+T淋巴细胞及CD4~+/CD8~+比值相比于各自的基础状态均无改变;营养良好组大鼠在CLP术后M1型巨噬细胞(CD11c~+CD80~+,CD11c~+CD86~+)相比于其基础状态明显增高(P0.01),而营养不良大鼠在CLP术后M1型巨噬细胞相比于其基础状态并无改变。与营养良好sham组相比,营养良好CLP组的血浆ACTH在术后8h、16h均无改变,但皮质酮在8h时释放明显增加(P0.05),在16h时释放明显减少(P0.01)。与营养不良sham组相比,营养不良CLP组血浆ACTH在8h无差异,在16h时释放增加(P0.05),而皮质酮在术后8h及16h均无差异。营养不良及营养良好组大鼠在CLP术后血清IL-1β、IL-10均增高(P0.01)。但营养良好CLP组与营养不良CLP组相比血清IL-1β、IL-10却并无差异。在造模后16h,营养不良组比营养良好组大鼠肾上腺皮质可见更显著的出血、炎症细胞浸润及坏死。结论:CLP诱导的脓毒症导致了血浆ACTH及皮质酮的动态变化,并导致了HPA轴调节失常。营养不良可导致大鼠脓毒症早期肾上腺皮质功能不全,抑制皮质酮的升高。
【图文】：

营养不良及营养良好大鼠体重、脾脏重量、胸腺重量比较

中国医科大学硕士学位论文后，两组大鼠都可见明显立毛，抱团，，腹泻，精神萎靡脓血性分泌物等现象。而在假手术后，两组大鼠均于麻活动。组及营养不良组大鼠假手术后 7 天死亡率均为 0。营养死亡率为 100%，营养良好组大鼠在 CLP 术后 7 天死亡养良好组大鼠 CLP 术后 7 天死亡率更高（P<0.01）。见
【学位授予单位】：中国医科大学
【学位级别】：硕士
【学位授予年份】：2019
【分类号】：R459.7

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 范琳犀;杨玉洁;姜宁;陈远伟;刘新民;王琼;;皮质酮诱导小鼠抑郁伴发的学习记忆损伤[J];中国比较医学杂志;2018年04期

2 赵玉男;戴建国;王中立;陈琳;黄玉芳;;长期皮质酮注射对C57BL/6N小鼠海马胶质纤维酸性蛋白水平的影响[J];中国病理生理杂志;2010年10期

3 杨春星,张杰,王健,李欧,冀鹏,李怡凡,范少光;不同年龄小鼠血浆皮质酮对腹腔注射白细胞介素-1β的反应[J];北京医科大学学报;2000年04期

4 熊忠,索有瑞;血浆和组织中皮质酮的荧光测定法[J];光谱学与光谱分析;1998年02期

5 张少英,陶才美,戴雁峰;特异性免疫皮质酮提高肉鸡生长速度[J];中国农业科学;1988年02期

6 黄孝玢;张琦;李建中;张成员;谢进;高中双;;特异性免疫皮质酮对爱拨益加肉鸡增重和降低脂肪的试验[J];西南民族学院学报(畜牧兽医版);1988年01期

7 查良伦;沈自尹;张晓峰;张萍;施凤英;黄士通;费绍华;;生地对家兔糖皮质激素受抑模型的实验研究[J];中西医结合杂志;1988年02期

8 张少英,汪琳仙,陈育新,杨淑华,吴武干,梁华;皮质酮免疫对北京鸭某些生产性能的影响[J];畜牧兽医学报;1989年S1期

9 李柏青,杨贵贞;新生期去胸腺对神经内分泌系统的影响[J];白求恩医科大学学报;1989年05期

10 李经才;;侧脑室及下丘脑注射人参皂甙对大鼠皮质酮分泌的影响[J];四川生理科学杂志;1989年03期

相关会议论文 前10条

1 胡家庆;殷明;章建程;徐灵活;赵敏;竺青;王晓花;余浩;郭俊生;;酪氨酸干预对皮质酮致原代培养多巴胺神经元损伤的保护作用[A];上海市预防医学会第二届学术年会论文汇编[C];2006年

2 赵玉男;;通过反复注射皮质酮制备小鼠抑郁模型[A];药学发展前沿论坛及药理学博士论坛论文集[C];2008年

3 陈琳;王昕;戴建国;黄玉芳;赵玉男;;人参总皂苷对皮质酮致小鼠海马星形胶质细胞结构可塑性损伤和海马萎缩的保护作用[A];第二届国际抑郁共病暨第十二届中国中西医结合基础理论学术研讨会论文集[C];2016年

4 匡培梓;胡家芬;隋南;管林初;;胚胎期光照和皮质酮对改善暗孵化雏鸡记忆的作用机理[A];第九届全国心理学学术会议文摘选集[C];2001年

5 王莹;冯星;;外源性褪黑素对新生大鼠缺氧缺血性脑损伤应激中血浆促肾上腺皮质激素和皮质酮的影响[A];2006（第三届）江浙沪儿科学术会议暨浙江省儿科学术年会论文汇编[C];2006年

6 赵玉男;戴建国;王中立;陈琳;黄玉芳;;长期皮质酮注射对C57BL/6N小鼠海马胶质纤维酸性蛋白水平的影响[A];中国病理生理学会第九届全国代表大会及学术会议论文摘要[C];2010年

7 刘冲;蒋春雷;;皮质酮对大鼠腹腔肥大细胞分泌组胺的非基因组调节作用[A];中国生理学会2004年消化内分泌生殖学术研讨会论文摘要汇编[C];2004年

8 翟学佳;陈芬;朱超然;吕永宁;;HPLC-MS/MS测定抑郁模型大鼠血浆中皮质酮的浓度[A];2015年全国医院药学（药学监护）学术会议论文集[C];2015年

9 钟河江;周建云;蒋建新;王海燕;杨策;严军;刘庆;程英;;X盒结合蛋白1在低浓度皮质酮对巨噬细胞免疫功能调控中的作用[A];第七届全国创伤学术会议暨2009海峡两岸创伤医学论坛论文汇编[C];2009年

10 钟河江;蒋建新;王海燕;杨策;张冲;严军;刘庆;黄苏娜;;皮质酮诱导小鼠腹腔巨噬细胞发生内质网应激的作用[A];第七届全国创伤学术会议暨2009海峡两岸创伤医学论坛论文汇编[C];2009年

相关重要报纸文章 前5条

1 张俊杰;爬山要讲科学[N];大众卫生报;2004年

2 秦红群;癌症 爱缠情绪差的人[N];卫生与生活报;2007年

3 张田勘;用药物“擦掉”人脑中的坏记忆[N];大众科技报;2009年

4 王素霞;孤独催人老[N];保健时报;2005年

5 杨振刚;情绪对癌症发生及康复的影响[N];光明日报;2003年

相关博士学位论文 前10条

1 谭秀文;CRH和皮质酮影响小鼠着床前胚胎发育的机制：体外模型研究[D];山东农业大学;2016年

2 李栋;LW-AFC及其活性成分对皮质酮致突触可塑性损伤的保护作用及机制研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2017年

3 李晏;应激大鼠条件性位置偏爱及伏隔核多巴胺机制的皮质酮调节通路研究[D];中南大学;2006年

4 朱泽华;电针结合淫羊藿总黄酮对外源性皮质酮引起大鼠海马损伤的影响及机制[D];复旦大学;2006年

5 冯昊;高血浆皮质酮下调大鼠海马BDNF基因表达的机制研究[D];复旦大学;2005年

6 宋清;调肝方药对皮质酮、谷氨酸致PC12细胞损伤模型的保护效应及机制研究[D];广州中医药大学;2007年

7 何芳;心理应激致肝铁蓄积的机制探讨[D];第二军医大学;2010年

8 邓琼;垂体促肾上腺皮质激素细胞的糖皮质激素快速反馈机制研究[D];吉林大学;2014年

9 王国华;抗抑郁药物的神经可塑性促进作用及机制研究[D];南方医科大学;2013年

10 刘宝君;淫羊藿苷对皮质酮诱导的原代培养海马神经元损伤的保护作用及其机制探讨[D];复旦大学;2009年

相关硕士学位论文 前10条

1 邹梦娟;营养不良对大鼠脓毒症早期血浆ACTH及皮质酮的影响[D];中国医科大学;2019年

2 李天;有氧运动对衰老大鼠血清中的皮质酮和肾上腺CYP19A1和VDR表达的影响[D];吉林大学;2019年

3 李响;急性皮质酮给药对中缝核—海马通路内5-HT神经传导的作用[D];中国医科大学;2018年

4 谭谦;大黄素甲醚调控BDNF-TrkB通路拮抗皮质酮对PC12细胞的损伤作用研究[D];西南交通大学;2018年

5 王琼;Reelin-dab1信号转导通路在铝致Aβ代谢异常中的作用及其机制研究[D];山西医科大学;2018年

6 丁芹;锌受体GPR39对皮质酮致海马HT-22细胞损伤的保护作用及机制研究[D];第二军医大学;2017年

7 郭亚鹏;豆腐果苷通过ERK1/2信号通路对皮质酮致PC12细胞损伤的保护作用[D];皖南医学院;2017年

8 王俊;皮质酮预处理对脂多糖激活小胶质细胞的调节作用及鸡豆黄素A的保护作用[D];安徽医科大学;2017年

9 李萌;PKC介导皮质酮诱发大鼠胃特异性背根节神经元敏化的机制研究[D];苏州大学;2017年

10 余甜;毛发皮质酮为啮齿类动物内源性应激标记的验证[D];东南大学;2016年

本文编号：2645213