河北杨再生体系及遗传转化体系建立研究
发布时间:2021-03-28 17:01
本研究以河北杨(Populus hopeiensis Hu et Chow)1年生嫩枝为外植体,通过对不同培养阶段最佳培养基与生长调节剂浓度的筛选,建立了河北杨的高效再生体系。并在此基础上,以河北杨无菌苗叶片为受体材料,利用农杆菌介导法转化WOX基因,对影响转化效率的主要因素进行了研究,为河北杨提供高效、安全、规模化遗传转化改良平台,也为其他杨树遗传转化培育新品种及相关基因功能研究提供理论和技术参考。主要研究结果如下:1.河北杨再生体系的建立:最佳消毒方法为先用75%酒精消毒30 s,再用0.1%升汞消毒12 min,消毒效果最好,污染率最低为10%,死亡率为13.33%;茎段诱导腋芽最佳培养基为1/2MS+0.5 mg·L-1 6-BA+0.05 mg·L-1 NAA,腋芽萌发时间为7d,诱导率为95%;最佳生根培养基为1/2MS+0.3 mg·L-1 IBA+0.05mg·L-1 NAA,生根率达100%;炼苗移栽基质配比为草炭土:蛭石:珍珠岩=6:3:1(v/v/v),成活率达93.7%。2.河北杨遗传转化受体体系的建立:叶片诱导不定芽最佳培养基为MS+0.3 mg·L-1 TD...
【文章来源】:内蒙古农业大学内蒙古自治区
【文章页数】:49 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2?5号培养基中腋芽的诱导情况??Fig.2?induction?of?axillary?buds?in?medium?5??
图4无菌苗移栽??Fig.4?transplanting?of?sterile?seedlings??
?内蒙古农业大学硕士学位论文?23??图5?8号培养基中不定芽的诱导情况??Fig.5?induction?of?adventitious?buds?in?medium?8??注:A.培养15?d的不定芽;B.培养25?d的不定芽;C.培养35?d的不定芽??A.?adventitious?buds?cultured?for?15?days;?B.?adventitious?buds?cultured?for?25?days;?C.?adventitious?buds?cultured??for?35?days??3.2.2不同浓度潮霉素对叶片诱导不定芽的影响??不同浓度潮霉素处理试验结果如表6所示,叶片对潮霉素非常敏感,随着潮霉素??的浓度的升高叶片分化率降低,平均不定芽数变少;潮霉素浓度1.0?m^I/1时,分化??率达到70%,叶色浅绿,不定芽较少,长势较好(图5.A);潮霉素浓度为2.0?mg*!;1??时,叶色黄绿,不定芽少,长势弱(图5.B);当潮霉素浓度为S.Omg*!;1时,在边缘??可见分化芽(图5.C);当潮霉素浓度增加至5.0?mpL—1时,没有芽点且大部分叶片都??褐化死亡(图5.D)。因此,避免潮霉素浓度过低产生大量的假阳性苗或者因其浓度??过高导致损伤转化细胞,本实验选择潮霉素浓度为3.0?。??表6不同浓度潮霉素对叶片诱导不定芽的影响??Table.?6?Effects?of?different?concentrations?of?hygromycin?on?adventitious?buds?induced?by?leaves??1霉素/mg*!;1?外植体数/个?分化率/%?不定芽生
【参考文献】:
期刊论文
[1]中红杨离体叶片植株再生体系建立[J]. 孙红英,辛全伟,马志慧,兰思仁. 中南林业科技大学学报. 2019(04)
[2]植物组织培养技术的现状及发展趋势[J]. 陈红. 生物化工. 2018(05)
[3]河北杨繁育技术初探[J]. 赵平. 山西林业科技. 2017(02)
[4]大青杨再生体系的优化[J]. 姜洋,刘焕臻,李开隆. 东北林业大学学报. 2017(04)
[5]转Bt基因欧洲黑杨转化TA29-Barnase基因的研究[J]. 朱伟康,贾小明,李周岐. 西北林学院学报. 2017(01)
[6]河北杨扦插育苗技术[J]. 杨晓梅. 农技服务. 2016(12)
[7]青皮河北杨繁育及造林技术[J]. 朱虎山. 南方农业. 2016(15)
[8]甜杨叶片高频率植株再生体系的建立[J]. 赵鑫闻. 中国农学通报. 2015(34)
[9]小黑杨快繁与再生体系的优化[J]. 杜兆伟,郑唐春,李爽,臧丽娜,曲冠证,由香玲. 植物研究. 2015(06)
[10]Establishment of high frequency shoot regeneration system in Himalayan poplar(Populus ciliata Wall. ex Royle) from petiole explants using Thidiazuron cytokinin as plant growth regulator[J]. G. Aggarwal,A. Gaur,D. K. Srivastava. Journal of Forestry Research. 2015(03)
博士论文
[1]BtCry1A基因转化中嘉8号杨的研究[D]. 郑进.华中师范大学 2006
[2]胡杨再生体系的建立及rolB-pttGA20ox基因的遗传转化研究[D]. 丁霞.北京林业大学 2006
硕士论文
[1]四种杨树组培和再生体系的建立[D]. 马宁.山西农业大学 2015
[2]84K杨再生和遗传转化体系的研究[D]. 周熙莹.东北林业大学 2013
[3]小叶杨杂种再生体系建立及农杆菌介导遗传转化体系的初步研究[D]. 付文锋.北京林业大学 2012
[4]两个杨树无性系再生体系的建立及抗虫基因Cry1C+9C转化的初步研究[D]. 卢小三.华中农业大学 2010
[5]三种杨树再生体系的建立及青海青杨遗传转化的研究[D]. 杜晓艳.西南大学 2010
[6]丹红杨和巨尾桉组织培养技术的研究[D]. 蒋淑磊.中南林业科技大学 2009
[7]黑杨派无性系SN05-11和LN05-51再生体系的研究[D]. 程云.华中农业大学 2009
[8]山地杨的组织培养和快速繁殖的研究[D]. 汪建亚.华中农业大学 2003
[9]毛白杨木质素合成相关基因分离和转基因杨树植株获得[D]. 赵华燕.新疆农业大学 2001
本文编号:3105924
【文章来源】:内蒙古农业大学内蒙古自治区
【文章页数】:49 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2?5号培养基中腋芽的诱导情况??Fig.2?induction?of?axillary?buds?in?medium?5??
图4无菌苗移栽??Fig.4?transplanting?of?sterile?seedlings??
?内蒙古农业大学硕士学位论文?23??图5?8号培养基中不定芽的诱导情况??Fig.5?induction?of?adventitious?buds?in?medium?8??注:A.培养15?d的不定芽;B.培养25?d的不定芽;C.培养35?d的不定芽??A.?adventitious?buds?cultured?for?15?days;?B.?adventitious?buds?cultured?for?25?days;?C.?adventitious?buds?cultured??for?35?days??3.2.2不同浓度潮霉素对叶片诱导不定芽的影响??不同浓度潮霉素处理试验结果如表6所示,叶片对潮霉素非常敏感,随着潮霉素??的浓度的升高叶片分化率降低,平均不定芽数变少;潮霉素浓度1.0?m^I/1时,分化??率达到70%,叶色浅绿,不定芽较少,长势较好(图5.A);潮霉素浓度为2.0?mg*!;1??时,叶色黄绿,不定芽少,长势弱(图5.B);当潮霉素浓度为S.Omg*!;1时,在边缘??可见分化芽(图5.C);当潮霉素浓度增加至5.0?mpL—1时,没有芽点且大部分叶片都??褐化死亡(图5.D)。因此,避免潮霉素浓度过低产生大量的假阳性苗或者因其浓度??过高导致损伤转化细胞,本实验选择潮霉素浓度为3.0?。??表6不同浓度潮霉素对叶片诱导不定芽的影响??Table.?6?Effects?of?different?concentrations?of?hygromycin?on?adventitious?buds?induced?by?leaves??1霉素/mg*!;1?外植体数/个?分化率/%?不定芽生
【参考文献】:
期刊论文
[1]中红杨离体叶片植株再生体系建立[J]. 孙红英,辛全伟,马志慧,兰思仁. 中南林业科技大学学报. 2019(04)
[2]植物组织培养技术的现状及发展趋势[J]. 陈红. 生物化工. 2018(05)
[3]河北杨繁育技术初探[J]. 赵平. 山西林业科技. 2017(02)
[4]大青杨再生体系的优化[J]. 姜洋,刘焕臻,李开隆. 东北林业大学学报. 2017(04)
[5]转Bt基因欧洲黑杨转化TA29-Barnase基因的研究[J]. 朱伟康,贾小明,李周岐. 西北林学院学报. 2017(01)
[6]河北杨扦插育苗技术[J]. 杨晓梅. 农技服务. 2016(12)
[7]青皮河北杨繁育及造林技术[J]. 朱虎山. 南方农业. 2016(15)
[8]甜杨叶片高频率植株再生体系的建立[J]. 赵鑫闻. 中国农学通报. 2015(34)
[9]小黑杨快繁与再生体系的优化[J]. 杜兆伟,郑唐春,李爽,臧丽娜,曲冠证,由香玲. 植物研究. 2015(06)
[10]Establishment of high frequency shoot regeneration system in Himalayan poplar(Populus ciliata Wall. ex Royle) from petiole explants using Thidiazuron cytokinin as plant growth regulator[J]. G. Aggarwal,A. Gaur,D. K. Srivastava. Journal of Forestry Research. 2015(03)
博士论文
[1]BtCry1A基因转化中嘉8号杨的研究[D]. 郑进.华中师范大学 2006
[2]胡杨再生体系的建立及rolB-pttGA20ox基因的遗传转化研究[D]. 丁霞.北京林业大学 2006
硕士论文
[1]四种杨树组培和再生体系的建立[D]. 马宁.山西农业大学 2015
[2]84K杨再生和遗传转化体系的研究[D]. 周熙莹.东北林业大学 2013
[3]小叶杨杂种再生体系建立及农杆菌介导遗传转化体系的初步研究[D]. 付文锋.北京林业大学 2012
[4]两个杨树无性系再生体系的建立及抗虫基因Cry1C+9C转化的初步研究[D]. 卢小三.华中农业大学 2010
[5]三种杨树再生体系的建立及青海青杨遗传转化的研究[D]. 杜晓艳.西南大学 2010
[6]丹红杨和巨尾桉组织培养技术的研究[D]. 蒋淑磊.中南林业科技大学 2009
[7]黑杨派无性系SN05-11和LN05-51再生体系的研究[D]. 程云.华中农业大学 2009
[8]山地杨的组织培养和快速繁殖的研究[D]. 汪建亚.华中农业大学 2003
[9]毛白杨木质素合成相关基因分离和转基因杨树植株获得[D]. 赵华燕.新疆农业大学 2001
本文编号:3105924
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