玉米淀粉黄浆发酵产小核菌多糖的抗氧化活性研究
发布时间：2021-09-18 12:57
小核菌多糖（Scleroium rolfsii exopolysaccharides,SEPS）是由小核菌（Scleroium rolfsii）分泌的一种胞外真菌多糖。SEPS具有良好持水性和稳定性,可广泛应用于食品和医药等领域[1]。目前关于SEPS的研究报道大多数集中在理化性质方面,鲜见关于其生理活性的报道。本课题组筛选出一株发酵产SEPS菌株,该菌株以玉米淀粉为碳源,以玉米黄浆为氮源,多糖产量达26.226g/L,既降低生产成本又提高了多糖产量。但是,关于该多糖抗氧化活性的研究工作并未深入开展,缺少SEPS抗氧化活性理论依据。因此,本文研究了SEPS体外、体内抗氧化活性,并对其结构进行分析。主要研究结果如下:1.以DPPH自由基清除率和ABTS自由基清除率为评价指标,对比未清除蛋白多糖、Sevag法除蛋白获得多糖和等电点法除蛋白获得多糖的自由基清除能力,选择等电点法为SEPS的除蛋白工艺。2.以DPPH自由基清除率和ABTS自由基清除率为评价指标,对比二次醇沉脱色获得多糖、大孔树脂脱色获得多糖和双氧水脱色获得多糖的自由基清除能力,选择二次醇沉法为SEPS的脱...
【文章来源】：吉林农业大学吉林省
【文章页数】：52 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
SEPS0、SEPSS和SEPSP的DPPH清除率比较
图 3.2 SEPS0、SEPSS 和 SEPSP 的 ABTS 清除率比较Fig. 3.2 Difference of ABTS scavenging activity among SEPS0，SEPSS and SEPSP.2 可知，SEPS0、SEPSS 和 SEPSP 对 ABTS 自由基的清除率均随样品浓当样品浓度为 5mg/mL 时，SEPS0、SEPSS 和 SEPSP 的 ABTS 自由基值，且样品浓度进一步增大时清除率无明显变化。样品浓度相同时，AEPS0＞SEPSP＞SEPSS。其原因与图 3.1.1 所述相同。此外，SEPSS 的 SEPS0 和 SEPSP 相比有明显降低，还可能是由于有机溶剂使蛋白质变结合的糖蛋白也变性除去，使多糖的空间构象发生改变[56]。蛋白方法获得多糖的 DPPH 自由基和 ABTS 自由基清除试验结果一致率优于 SEPSS。等电点法除蛋白具有操作简单和所用试剂绿色环保的电点法作为 SEPS 的除蛋白工艺。色方法对 SEPS 抗氧化活性的影响
图 3.3 SEPSE、SEPSR 和 SEPSH 的 DPPH 清除率比较Fig. 3.3 Difference of DPPH scavenging activity among SEPSE，SEPSR and SEPSHSE(二次醇沉脱色所得多糖）、SEPSR（大孔树脂脱色所得多糖）和 SE所得多糖）的 DPPH 自由基清除率如图 3.3 所示。试验结果表明，SEPSH 对 DPPH 的清除率均随样品浓度的增大而升高。当样品浓度为 5mgSEPSR 和 SEPSH 的 DPPH 自由基清除率均达到最大值，且样品浓度进无明显变化。样品浓度相同时，SEPSE 和 SEPSR 表现出几乎相同的 D显强于 SEPSH，其原因可能是双氧水氧化了多糖含的羟基、醛基等活解或者改变了多糖的链状结构，降低了多糖的有效质量浓度，表现出较力。大孔树脂脱色是一种温和的、较优的脱色方法，能有效去除色素，分子的同时还能吸附其他小分子杂质，一定程度上可以纯化多糖[57]。PSE、SEPSR 和 SEPSH 的 ABTS 清除率比较
【参考文献】：
期刊论文
[1]多糖提取和抗氧化活性评价方法的研究现状和进展[J]. 刘松,董晓芳,佟建明. 动物营养学报. 2016(11)
[2]罗耳阿太菌胞外多糖蛋白的脱除及其体外抗氧化活性[J]. 李鸿梅,张桂弘,魏明,闵伟红,高雅文,刘秀奇. 食品科技. 2015(12)
[3]紫山药粗多糖提取工艺的优化及其抗氧化性的研究[J]. 刘杭达,马千苏,王傑,周韵,孙璐,程永强. 食品工业科技. 2015(23)
[4]响应面优化罗耳阿太菌胞外多糖提取工艺及其保湿、黏度特性分析[J]. 魏明,李鸿梅,马艳秋,赵慧,张桂弘,闵伟红. 食品科学. 2015(08)
[5]植物多糖抗氧化体外实验方法研究进展[J]. 张德华,邓辉,乔德亮. 天然产物研究与开发. 2015(04)
[6]黄芪多糖的提取及抗氧化作用研究[J]. 李金芳. 中国食品添加剂. 2015(04)
[7]厚朴多糖提取工艺及其体外抗氧化活性[J]. 姜宁,刘晓鹏,陈芳,喻长发,勒栋梁,丁振国,吴皓. 食品科学. 2015(06)
[8]茯苓多糖抗氧化作用研究[J]. 卢华杰,卢燕,刘焱文. 食品研究与开发. 2014(23)
[9]不同处理方法对贺兰山紫蘑菇多糖抗氧化活性的影响[J]. 刘继婷,鲁晓丽,张自萍. 食品科学. 2015(04)
[10]罗耳阿太菌的鉴定及生长曲线的测定[J]. 李鸿梅,苗琇岩,魏明,赵慧,闵伟红,刘景圣. 食品科技. 2014(06)
硕士论文
[1]红松松子壳多糖的分离纯化、结构表征及其抗氧化活性研究[D]. 付昊雨.吉林大学 2017
[2]北五味子多糖的分离、纯化及其抗氧化作用的机制研究[D]. 李倩.广州中医药大学 2017
[3]乌饭树树叶多糖的提取、理化性质及抗氧化性研究[D]. 徐啟馨.合肥工业大学 2017
[4]罗耳阿太菌（Athelia rolfsii）胞外多糖提取纯化、理化性质及功能活性研究[D]. 魏明.吉林农业大学 2015
[5]三种姬松茸多糖的抗氧化、抗衰老活性与结构研究[D]. 高尚龙.山东农业大学 2014
[6]几种体外抗氧化检测方法的评价研究[D]. 张明.陕西师范大学 2010
[7]石榴汁的抗氧化作用研究[D]. 张洁.山东大学 2008
本文编号：3400179
【文章来源】：吉林农业大学吉林省
【文章页数】：52 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
SEPS0、SEPSS和SEPSP的DPPH清除率比较
图 3.2 SEPS0、SEPSS 和 SEPSP 的 ABTS 清除率比较Fig. 3.2 Difference of ABTS scavenging activity among SEPS0，SEPSS and SEPSP.2 可知，SEPS0、SEPSS 和 SEPSP 对 ABTS 自由基的清除率均随样品浓当样品浓度为 5mg/mL 时，SEPS0、SEPSS 和 SEPSP 的 ABTS 自由基值，且样品浓度进一步增大时清除率无明显变化。样品浓度相同时，AEPS0＞SEPSP＞SEPSS。其原因与图 3.1.1 所述相同。此外，SEPSS 的 SEPS0 和 SEPSP 相比有明显降低，还可能是由于有机溶剂使蛋白质变结合的糖蛋白也变性除去，使多糖的空间构象发生改变[56]。蛋白方法获得多糖的 DPPH 自由基和 ABTS 自由基清除试验结果一致率优于 SEPSS。等电点法除蛋白具有操作简单和所用试剂绿色环保的电点法作为 SEPS 的除蛋白工艺。色方法对 SEPS 抗氧化活性的影响
图 3.3 SEPSE、SEPSR 和 SEPSH 的 DPPH 清除率比较Fig. 3.3 Difference of DPPH scavenging activity among SEPSE，SEPSR and SEPSHSE(二次醇沉脱色所得多糖）、SEPSR（大孔树脂脱色所得多糖）和 SE所得多糖）的 DPPH 自由基清除率如图 3.3 所示。试验结果表明，SEPSH 对 DPPH 的清除率均随样品浓度的增大而升高。当样品浓度为 5mgSEPSR 和 SEPSH 的 DPPH 自由基清除率均达到最大值，且样品浓度进无明显变化。样品浓度相同时，SEPSE 和 SEPSR 表现出几乎相同的 D显强于 SEPSH，其原因可能是双氧水氧化了多糖含的羟基、醛基等活解或者改变了多糖的链状结构，降低了多糖的有效质量浓度，表现出较力。大孔树脂脱色是一种温和的、较优的脱色方法，能有效去除色素，分子的同时还能吸附其他小分子杂质，一定程度上可以纯化多糖[57]。PSE、SEPSR 和 SEPSH 的 ABTS 清除率比较
【参考文献】：
期刊论文
[1]多糖提取和抗氧化活性评价方法的研究现状和进展[J]. 刘松,董晓芳,佟建明. 动物营养学报. 2016(11)
[2]罗耳阿太菌胞外多糖蛋白的脱除及其体外抗氧化活性[J]. 李鸿梅,张桂弘,魏明,闵伟红,高雅文,刘秀奇. 食品科技. 2015(12)
[3]紫山药粗多糖提取工艺的优化及其抗氧化性的研究[J]. 刘杭达,马千苏,王傑,周韵,孙璐,程永强. 食品工业科技. 2015(23)
[4]响应面优化罗耳阿太菌胞外多糖提取工艺及其保湿、黏度特性分析[J]. 魏明,李鸿梅,马艳秋,赵慧,张桂弘,闵伟红. 食品科学. 2015(08)
[5]植物多糖抗氧化体外实验方法研究进展[J]. 张德华,邓辉,乔德亮. 天然产物研究与开发. 2015(04)
[6]黄芪多糖的提取及抗氧化作用研究[J]. 李金芳. 中国食品添加剂. 2015(04)
[7]厚朴多糖提取工艺及其体外抗氧化活性[J]. 姜宁,刘晓鹏,陈芳,喻长发,勒栋梁,丁振国,吴皓. 食品科学. 2015(06)
[8]茯苓多糖抗氧化作用研究[J]. 卢华杰,卢燕,刘焱文. 食品研究与开发. 2014(23)
[9]不同处理方法对贺兰山紫蘑菇多糖抗氧化活性的影响[J]. 刘继婷,鲁晓丽,张自萍. 食品科学. 2015(04)
[10]罗耳阿太菌的鉴定及生长曲线的测定[J]. 李鸿梅,苗琇岩,魏明,赵慧,闵伟红,刘景圣. 食品科技. 2014(06)
硕士论文
[1]红松松子壳多糖的分离纯化、结构表征及其抗氧化活性研究[D]. 付昊雨.吉林大学 2017
[2]北五味子多糖的分离、纯化及其抗氧化作用的机制研究[D]. 李倩.广州中医药大学 2017
[3]乌饭树树叶多糖的提取、理化性质及抗氧化性研究[D]. 徐啟馨.合肥工业大学 2017
[4]罗耳阿太菌（Athelia rolfsii）胞外多糖提取纯化、理化性质及功能活性研究[D]. 魏明.吉林农业大学 2015
[5]三种姬松茸多糖的抗氧化、抗衰老活性与结构研究[D]. 高尚龙.山东农业大学 2014
[6]几种体外抗氧化检测方法的评价研究[D]. 张明.陕西师范大学 2010
[7]石榴汁的抗氧化作用研究[D]. 张洁.山东大学 2008
本文编号：3400179
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