乳及乳制品中牛羊源性成分的PCR高分辨熔解检测方法研究
【学位授予单位】:陕西科技大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2019
【分类号】:TS252.7
【图文】:
图 1-2 高分辨熔解技术中的染料对比Fig. 1-2 HRM saturating and non-saturating dyes(1)影响 HRM 分析的 PCR 试剂与扩增条件、荧光染料及仪器软件与普通 PCR 反应一样,选择可靠的 PCR 反应试剂以及合适的扩增反应条件,以确获得高纯度的 PCR 特异性产物对于 HRM 分析的成功也至关重要。PCR 反应试剂如NA 聚合酶、PCR 缓冲液,扩增条件包括退火温度、循环次数等条件均直接影响 PCR物的质量,其中引物二聚体和非特异性扩增产物的生成将降低样品的扩增效率,影响CR 产物的熔解和 HRM 分析的准确性。此外,缓冲溶液的离子强度及添加剂也影响着CR 结束后的熔解步骤和 HRM 分析的分辨率。因此,PCR 试剂与扩增条件都需要仔细化,必要时需在进行 HRM 分析之前,使用经典的熔解曲线分析或者凝胶电泳对 PCR物的特异性进行检验,以确认 HRM 熔解曲线中的差异源于模板 DNA 中的序列变异。饱和荧光染料是经典熔解曲线分析和 HRM 分析之间最大的区别。SYBR Green I 染用于经典熔解曲线分析,但由于其对 PCR 的抑制作用较强,属于非饱和染料,加之染本身在 DNA 双链熔解的过程中容易发生重排,导致熔解结果失真并影响检测的分辨
乳制品中牛羊源性成分的 PCR 高分辨熔解检测方法与验证整性鉴定提取出高质量的 DNA 是运用 PCR 技术进选择的方法合适,其可以最大限度地提高在。依据实验室已有的工作基础,这里选用A[38]。对提取的 DNA 进行琼脂糖凝胶电泳,明磁珠法提取的 DNA 完整性良好,没有到理想的扩增区域,相对于山羊、奶牛和可能是由于绵羊 DNA 的质量浓度较小,需
牛乳中掺假奶牛乳的双重 PCR 研究,主要是根据作繁琐、耗时,探针法针对不同的靶标设计特异双重 PCR-HRM 克服了以上的不足,实现了快速通过设计的特异性引物对奶牛和水牛 DNA 进行牛和水牛在 35 个循环内可以产生明显的扩增曲的片段大小分别 161bp 和 175bp,通过琼脂糖凝2-2 插图),在水牛和奶牛模板等比例混合样品中的扩增片段长度相差较小(14bp),采用琼脂糖凝。传统的熔解曲线水牛和奶牛的熔解温度分别为重叠部分(图 2-3A),根据曾少灵等[59]的研究,双重 PCR 反应时,混合模板的熔解曲线会积累显此,为了同时鉴别奶牛和水牛乳源性成分,采用鉴别,结果显示(图 2-3B)水牛和奶牛特异性引熔解曲线可以有效区分水牛和奶牛成分,这就水牛乳中掺假的奶牛乳成分提供了理论依据。
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