鄱阳湖水体细菌物种多样性研究
发布时间:2021-09-06 11:17
本研究采用细菌16SrDNA序列分析的分子生物学技术对鄱阳湖南北主湖区水体细菌多样性进行了系统研究。其结果如下:①.北湖平水期(2006年10月样)水域的细菌分属于八大细菌类群:变形菌门的α-,β-,γ-,Epsilon和未知分类地位的变形细菌纲,放线菌门,拟杆菌门,酸杆菌门,浮霉菌门。②.北湖丰水期(2007年5月样)水域的细菌分属于以下七大细菌类群中:变形菌门的α-,β-,γ-变形细菌纲,放线菌门,拟杆菌门,OP10,浮霉菌门,以及未知分类地位细菌。③.南湖平水期水域(2006年10月样)的细菌分属于以下九大细菌类群中:变形菌门的α-,β-,γ-变形细菌门,放线菌门,拟杆菌门,OP10,蓝细菌,疣微菌门,硝化螺旋菌门以及未知分类地位细菌。④.南湖丰水期(2007年5月样)水域的细菌分属于以下八大细菌类群中:变形菌门的α-,β-,γ-变形细菌纲,放线菌门,拟杆菌门,蓝细菌,疣微菌门,浮霉菌以及未知分类地位细菌。鄱阳湖水体细菌主要由不可培养菌组成,细菌群落明显受季节影响,南湖水体细菌的丰富度和多样性高于北湖。北湖平水期和丰水期水体优势菌分别为β-变形菌和γ-变形菌+拟杆菌;南湖平水期和...
【文章来源】:南昌大学江西省 211工程院校
【文章页数】:134 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
细菌的系统发育树
样品采集点如图2.1。样品LpYN一A困29020,50.95”E一16004性4.66,,),LPYS一A伽29020’20.63” E116003‘43.29“),LPYN一B伽29009,10.06,,Ell6o04,24.57”)
水体中杂质含量多,微生物含量少难以得到高纯度和高质量的微生物DNA。本研究采用加以改进的DNA提取法提取湖泊水体细菌DNA,都阳湖水体细菌基因组DNA的1%琼脂糖电泳图谱见图3.1。20kbP图3.1都阳湖水样基因组DNA电泳图谱Fig.3.lTheeleetroPhoretogralnofbacterialgenomieDNAinLakePoyanM:Marker:LPYN一A;2:LPYN一B;3:LPYS一A;4:LPYS一B图3.1结果显示:所得DNA经1%琼脂糖凝胶电泳检测发现,长度约为20kbP,表明此方法所提的基因组很好地保证了基因组的完整性,通过后续的PCR实验证明所提基因组DNA的质量较好,可以顺利扩增出细菌的16srDNA。.2.2细菌16SrDNA片段的PCR扩增在PCR体系中采用不同的模板稀释梯度对细菌 16srDNA基因进行梯度PCR
【参考文献】:
期刊论文
[1]关于如何应对鄱阳湖区水生态恶化的调研报告[J]. 孙晓山. 水利发展研究. 2008(10)
[2]鄱阳湖区水体氮、磷污染状况分析[J]. 王毛兰,周文斌,胡春华. 湖泊科学. 2008(03)
[3]枯水期赣江流域氮磷的分布特征[J]. 王毛兰,周文斌,胡春华. 地球与环境. 2007(02)
[4]鄱阳湖水质富营养化评价方法应用及探讨[J]. 万金保,闫伟伟. 江西师范大学学报(自然科学版). 2007(02)
[5]利用生物修复技术防治鄱阳湖水体富营养化初探[J]. 李昌花,林波. 江西化工. 2005(01)
[6]基于经验频率曲线的湖泊富营养化随机评价方法及其验证[J]. 谢平,黎红秋,叶爱中. 湖泊科学. 2004(04)
[7]西太平洋“暖池”区沉积物中的细菌类群及其与环境的关系[J]. 曾润颖,赵晶,张锐,林念炜. 中国科学(D辑:地球科学). 2004(03)
[8]可用于微生物群落分子生态学研究的活性污泥总DNA提取方法研究[J]. 高平平,赵立平. 生态学报. 2002(11)
[9]南极菲尔德斯半岛环境微生物含量估计[J]. 陈皓文,袁峻峰,曹俊杰,张树荣. 黄渤海海洋. 2001(01)
[10]湖泊富营养化物元模型及复合应用初探[J]. 齐玉梅,黄志明. 重庆环境科学. 1999(05)
本文编号:3387360
【文章来源】:南昌大学江西省 211工程院校
【文章页数】:134 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
细菌的系统发育树
样品采集点如图2.1。样品LpYN一A困29020,50.95”E一16004性4.66,,),LPYS一A伽29020’20.63” E116003‘43.29“),LPYN一B伽29009,10.06,,Ell6o04,24.57”)
水体中杂质含量多,微生物含量少难以得到高纯度和高质量的微生物DNA。本研究采用加以改进的DNA提取法提取湖泊水体细菌DNA,都阳湖水体细菌基因组DNA的1%琼脂糖电泳图谱见图3.1。20kbP图3.1都阳湖水样基因组DNA电泳图谱Fig.3.lTheeleetroPhoretogralnofbacterialgenomieDNAinLakePoyanM:Marker:LPYN一A;2:LPYN一B;3:LPYS一A;4:LPYS一B图3.1结果显示:所得DNA经1%琼脂糖凝胶电泳检测发现,长度约为20kbP,表明此方法所提的基因组很好地保证了基因组的完整性,通过后续的PCR实验证明所提基因组DNA的质量较好,可以顺利扩增出细菌的16srDNA。.2.2细菌16SrDNA片段的PCR扩增在PCR体系中采用不同的模板稀释梯度对细菌 16srDNA基因进行梯度PCR
【参考文献】:
期刊论文
[1]关于如何应对鄱阳湖区水生态恶化的调研报告[J]. 孙晓山. 水利发展研究. 2008(10)
[2]鄱阳湖区水体氮、磷污染状况分析[J]. 王毛兰,周文斌,胡春华. 湖泊科学. 2008(03)
[3]枯水期赣江流域氮磷的分布特征[J]. 王毛兰,周文斌,胡春华. 地球与环境. 2007(02)
[4]鄱阳湖水质富营养化评价方法应用及探讨[J]. 万金保,闫伟伟. 江西师范大学学报(自然科学版). 2007(02)
[5]利用生物修复技术防治鄱阳湖水体富营养化初探[J]. 李昌花,林波. 江西化工. 2005(01)
[6]基于经验频率曲线的湖泊富营养化随机评价方法及其验证[J]. 谢平,黎红秋,叶爱中. 湖泊科学. 2004(04)
[7]西太平洋“暖池”区沉积物中的细菌类群及其与环境的关系[J]. 曾润颖,赵晶,张锐,林念炜. 中国科学(D辑:地球科学). 2004(03)
[8]可用于微生物群落分子生态学研究的活性污泥总DNA提取方法研究[J]. 高平平,赵立平. 生态学报. 2002(11)
[9]南极菲尔德斯半岛环境微生物含量估计[J]. 陈皓文,袁峻峰,曹俊杰,张树荣. 黄渤海海洋. 2001(01)
[10]湖泊富营养化物元模型及复合应用初探[J]. 齐玉梅,黄志明. 重庆环境科学. 1999(05)
本文编号:3387360
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