不同剂量H22肝癌细胞株对C57BL/6J小鼠原位肝癌造模的影响研究
发布时间：2021-12-10 17:45
目的:比较不同剂量H22传代小鼠腹水细胞构建原位肝癌移植模型小鼠的成瘤率、腹水率及存活率,以期构建和完善该模型。方法:115只C57BL6/J小鼠随机分为三组（10μL组、20μL组、30μL组）,选取浓度为1×1013/m L的H22传代小鼠腹水细胞沿肝长轴直接注射接种到肝脏实质内,每组分别于第10、20 d随机选取15只给予麻醉后脱颈椎处死,肝脏称重,测量瘤体体积及重量,观察肝脏外观及病理学改变,每组预留5只观察其存亡天数,计算成瘤率、腹水率及存活率。结果:115只模型小鼠有114只均可见肿瘤,成瘤率99%;10μL组腹水率7%,20μL组腹水率46%,30μL组腹水率63%。结论:使用10μL浓度为1×1013/m L的H22传代小鼠腹水细胞悬液建立小鼠原位肝癌模型,其成瘤率高,腹水率低,存活时间较长,是较为理想的肝癌小鼠模型。
【文章来源】：成都中医药大学学报. 2016,39(04)
【文章页数】：6 页
【部分图文】：
各组小鼠肝脏重量的比较见表2，空白组前后
位肝癌造模的影响研究表2各组小鼠肝脏的重量变化情况(x珋±s，单位:g)分组n10d20d空白组101.38±0.091.38±0.0810μL组301.34±0.121.47±0.21*～20μL组301.44±0.16*＇1.68±0.28*＇～30μL组301.62±0.12*＇※2.01±0.45*＇※～注:10μL组与空白组比差异有统计学意义:*P＜0.05;与20μL组比较差异有统计学意义:＇P＜0.05;与30μL组比较差异有统计学意义:※P＜0.05;与第10d比差异有统计学意义:～P＜0.052.5成瘤小鼠的瘤体的体积与瘤重的比较瘤体体积的测量如图3，图4，图5。3组成瘤小鼠瘤体体积的比较见表3，各组间以及组间前后两两比较具有统计学意义(P＜0.05)，结果表明随着接种越大剂量H22肝癌细胞株瘤体的体积越大。3组成瘤小鼠的瘤体体积比较见表4，各组间以及组间前后两两比较具有统计学意义(P＜0.05)，结果表明接种越大剂量H22肝癌细胞株瘤体的重量越大。图3图4图5表33组成瘤小鼠瘤体的体积情况(x珋±s，单位:cm3)分组n10d20d10μL组150.24±0.020.26±0.0520μL组150.47±0.14＇0.64±0.27＇～30μL组150.73±0.14＇※1.03±0.34＇※～注:10μL组与20μL组比较差异有统计学意义:＇P＜0.05;与30μL组比较差异有统计学意义:※P＜0.05;与第10天比差异有统计学意义:～P＜0.05表43组成瘤小鼠瘤体的重量情况(x珋±s单位:g)分组n10d20d10μL组150.29±0.040.32±0.07～10μL组150.52±0.05＇0.59±0.12＇～10μL组150.61±0.08＇※0.78±0.21＇※～注:10μL组与20μL组比较差异有统计学意义:＇P＜0.05;与30μL组比较差异有统计学意义:※P＜0.05;与第10d比差异有统计学意义:～P＜0.052.6小鼠肝癌移植后肝脏病理形态学在电镜分
成都中医药大学学报2016年第39卷BCD图A、B、C、D组分别为电镜下HE×100、HE×200、HE×400，ABC分别为10μL组、20μL、20μL组，D为正常对照组图1电镜下小鼠肝癌移植后肝脏病理形态学3讨论H22肝癌细胞属于种植腹水型肝癌细胞，目前国内外各实验室在以往的制造肝癌模型的过程中，多因没有很好的解决H22肝细胞浓度和注射剂量的问题从而导致造模成瘤率很低。经过前期不同浓度的实验探索［12］，使用不同浓度造模成瘤率较低，并且成瘤时间长。故笔者在前期的实验探索中选用同一浓度不同剂量的H22传代小鼠腹水细胞造模，可缩短成瘤的时间，提高成瘤率。从19世纪到20世纪初，经过各国有许多实验室不断地努力，终于制作出小鼠自发性肝癌模型，对肝癌动物模型建立，各国科研人员经过不断探寻，逐步建立了动物的诱发性、移植性、自发性、人类肝癌的异种移植模型以及转基因动物肝癌模型［18-19］。对于以上肝癌动物模型的认识，其中原位移植瘤模型具有较快的生长速度、较强的侵袭和远处转移能力，其肿瘤细胞的发生、发展的微环境与人体肿瘤在体内生长环境具有很大的相似，故是目前研究肿瘤侵袭转移的最佳模型选择。然而选用大鼠进行原位移植性肝癌模型造模方法的报道也有许多［20-21］，主要是手术便于操作，饲养方便，接植移植方法多样，成功率高，病死率较低以及成瘤的瘤体较大，利于取组织等好处。但是利用小鼠建立肝癌动物模型更适合药物筛选和大量实验性治疗研究。因此我们采用C57BL/6J小鼠建立肝癌移植模型。·12·
【参考文献】：
期刊论文
[1]不同浓度H22肝癌细胞株对C57BL/6J小鼠原位肝癌造模差异的影响[J]. 柏灿,王颖,贾亚妹,薛红,陈莎莎. 成都中医药大学学报. 2015(04)
[2]小鼠肝癌原位移植模型的建立及其意义的研究[J]. 项亮亮,侯杰,王婕,焦成斌. 黑龙江医药科学. 2015(06)
[3]大鼠肝癌细胞C2不同途径接种造模及比较[J]. 阮思蓓,李世宁,朱小霞,倪江涛,刘勇,唐红,张元,唐明希. 临床与实验病理学杂志. 2013(02)
[4]BALB/c裸鼠与SCID小鼠皮下种植人肝癌模型的比较[J]. 白建华,李立,李晓延,朱新锋,陈刚. 中国组织工程研究与临床康复. 2011(31)
[5]移植瘤体积不同计测方法的比较[J]. 何志军,陈先祥,蔡庆和,于洋,唐俊明,杨建业,程彩涛,王家宁. 中国比较医学杂志. 2009(09)
[6]Mouse models in liver cancer research:A review of current literature[J]. Martijn WH Leenders,Maarten W Nijkamp,Inne HM Borel Rinkes. World Journal of Gastroenterology. 2008(45)
[7]医学实验肝癌动物模型的研究进展[J]. 陈谦,孙慧,李强. 中华实验外科杂志. 2006(03)
[8]大白鼠转移性肝癌模型的制作[J]. 杨继金,朱永法,左长京,刘崎,田建民,王振堂,贾雨辰. 中华放射学杂志. 1993 (02)
本文编号：3533098
【文章来源】：成都中医药大学学报. 2016,39(04)
【文章页数】：6 页
【部分图文】：
各组小鼠肝脏重量的比较见表2，空白组前后
位肝癌造模的影响研究表2各组小鼠肝脏的重量变化情况(x珋±s，单位:g)分组n10d20d空白组101.38±0.091.38±0.0810μL组301.34±0.121.47±0.21*～20μL组301.44±0.16*＇1.68±0.28*＇～30μL组301.62±0.12*＇※2.01±0.45*＇※～注:10μL组与空白组比差异有统计学意义:*P＜0.05;与20μL组比较差异有统计学意义:＇P＜0.05;与30μL组比较差异有统计学意义:※P＜0.05;与第10d比差异有统计学意义:～P＜0.052.5成瘤小鼠的瘤体的体积与瘤重的比较瘤体体积的测量如图3，图4，图5。3组成瘤小鼠瘤体体积的比较见表3，各组间以及组间前后两两比较具有统计学意义(P＜0.05)，结果表明随着接种越大剂量H22肝癌细胞株瘤体的体积越大。3组成瘤小鼠的瘤体体积比较见表4，各组间以及组间前后两两比较具有统计学意义(P＜0.05)，结果表明接种越大剂量H22肝癌细胞株瘤体的重量越大。图3图4图5表33组成瘤小鼠瘤体的体积情况(x珋±s，单位:cm3)分组n10d20d10μL组150.24±0.020.26±0.0520μL组150.47±0.14＇0.64±0.27＇～30μL组150.73±0.14＇※1.03±0.34＇※～注:10μL组与20μL组比较差异有统计学意义:＇P＜0.05;与30μL组比较差异有统计学意义:※P＜0.05;与第10天比差异有统计学意义:～P＜0.05表43组成瘤小鼠瘤体的重量情况(x珋±s单位:g)分组n10d20d10μL组150.29±0.040.32±0.07～10μL组150.52±0.05＇0.59±0.12＇～10μL组150.61±0.08＇※0.78±0.21＇※～注:10μL组与20μL组比较差异有统计学意义:＇P＜0.05;与30μL组比较差异有统计学意义:※P＜0.05;与第10d比差异有统计学意义:～P＜0.052.6小鼠肝癌移植后肝脏病理形态学在电镜分
成都中医药大学学报2016年第39卷BCD图A、B、C、D组分别为电镜下HE×100、HE×200、HE×400，ABC分别为10μL组、20μL、20μL组，D为正常对照组图1电镜下小鼠肝癌移植后肝脏病理形态学3讨论H22肝癌细胞属于种植腹水型肝癌细胞，目前国内外各实验室在以往的制造肝癌模型的过程中，多因没有很好的解决H22肝细胞浓度和注射剂量的问题从而导致造模成瘤率很低。经过前期不同浓度的实验探索［12］，使用不同浓度造模成瘤率较低，并且成瘤时间长。故笔者在前期的实验探索中选用同一浓度不同剂量的H22传代小鼠腹水细胞造模，可缩短成瘤的时间，提高成瘤率。从19世纪到20世纪初，经过各国有许多实验室不断地努力，终于制作出小鼠自发性肝癌模型，对肝癌动物模型建立，各国科研人员经过不断探寻，逐步建立了动物的诱发性、移植性、自发性、人类肝癌的异种移植模型以及转基因动物肝癌模型［18-19］。对于以上肝癌动物模型的认识，其中原位移植瘤模型具有较快的生长速度、较强的侵袭和远处转移能力，其肿瘤细胞的发生、发展的微环境与人体肿瘤在体内生长环境具有很大的相似，故是目前研究肿瘤侵袭转移的最佳模型选择。然而选用大鼠进行原位移植性肝癌模型造模方法的报道也有许多［20-21］，主要是手术便于操作，饲养方便，接植移植方法多样，成功率高，病死率较低以及成瘤的瘤体较大，利于取组织等好处。但是利用小鼠建立肝癌动物模型更适合药物筛选和大量实验性治疗研究。因此我们采用C57BL/6J小鼠建立肝癌移植模型。·12·
【参考文献】：
期刊论文
[1]不同浓度H22肝癌细胞株对C57BL/6J小鼠原位肝癌造模差异的影响[J]. 柏灿,王颖,贾亚妹,薛红,陈莎莎. 成都中医药大学学报. 2015(04)
[2]小鼠肝癌原位移植模型的建立及其意义的研究[J]. 项亮亮,侯杰,王婕,焦成斌. 黑龙江医药科学. 2015(06)
[3]大鼠肝癌细胞C2不同途径接种造模及比较[J]. 阮思蓓,李世宁,朱小霞,倪江涛,刘勇,唐红,张元,唐明希. 临床与实验病理学杂志. 2013(02)
[4]BALB/c裸鼠与SCID小鼠皮下种植人肝癌模型的比较[J]. 白建华,李立,李晓延,朱新锋,陈刚. 中国组织工程研究与临床康复. 2011(31)
[5]移植瘤体积不同计测方法的比较[J]. 何志军,陈先祥,蔡庆和,于洋,唐俊明,杨建业,程彩涛,王家宁. 中国比较医学杂志. 2009(09)
[6]Mouse models in liver cancer research:A review of current literature[J]. Martijn WH Leenders,Maarten W Nijkamp,Inne HM Borel Rinkes. World Journal of Gastroenterology. 2008(45)
[7]医学实验肝癌动物模型的研究进展[J]. 陈谦,孙慧,李强. 中华实验外科杂志. 2006(03)
[8]大白鼠转移性肝癌模型的制作[J]. 杨继金,朱永法,左长京,刘崎,田建民,王振堂,贾雨辰. 中华放射学杂志. 1993 (02)
本文编号：3533098
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