Wnt/β-catenin信号调控IL-17A介导的巨噬细胞极化对肺脏上皮细胞间质化特性的影响
发布时间:2021-06-28 06:09
背景:肺纤维化(Pulmonary fibrosis,PF)是由多种原因引起的一种严重的慢性肺间质性疾病。主要特征是早期的弥漫性肺泡炎和肺泡持续损伤,后期成纤维细胞大量病理性增殖,伴随细胞外基质(Extracellularmatrix,ECM)异常性汇聚,导致肺结构破坏,最终导致肺纤维化。炎症已被认为是肺纤维化的最初原因,并且上皮-间充质转化(Eβithelial-mesenchymal transition,EMT)是促进肺纤维化进程的重要发病机理。巨噬细胞是一类专业的免疫细胞,在维持免疫稳态方面具有重要作用。在肺纤维化过程中,巨噬细胞也发挥着重要作用,根据所处的微环境以及外界刺激极化为两种不同的功能状态,即经典活化的巨噬细胞(M1)和替代活化的巨噬细胞(M2)而发挥其免疫调控作用。Wnt信号是机体维持组织稳定和损伤修复的关键信号通路,在免疫调节中起着非常重要的作用。白介素17A(IL-17A)是一种能够诱导巨噬细胞极化的的免疫调节剂,并且与宿主防御和各种免疫相关疾病有关。有研究表明,Wnt信号和IL-17都在肺纤维化进程中异常活化。目的:本研究探讨Wnt/β-catenin信号的活...
【文章来源】:宁夏大学宁夏回族自治区 211工程院校
【文章页数】:65 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图3-2.IL-17A逆转Wm3a改变的K噬细胞极化标志物的表达A.不同处理组iNOS和Argl的蛋白表达分析:B.不??同处理组iNOS和Argl的蛋白表达定S分析
compared?to?the?respective?groups.?#:?p<0.05,?##:?p<0.01.??接下来,我们运用流式细胞术检测Ml型巨噻细胞表面标志物CD86和M2型巨噬细胞表面??标志物CD206来进一步验证上述结果。结果显示(图3-5),在使用WntC-CM培养细胞时,??RAW264.7细胞中分别含有39.91%的Ml型巨噬细胞和27.3%的M2型巨噬细胞;Wnt3a-CM增??加了?CD206阳性的M2型巨噬细胞,并且IL-17A増加了?CD86阳性的Ml型巨噬细胞。有趣的??是,IL-17A改变的Ml、M2巨噻细胞的数量可以被WntSa部分逆转,并且通过添加XAV939可??以在一定程度上减少WntSa的抵消作用。这些结果清除的表明在RAW264.7细胞中,Wnt/p-catenin??信号能够负调控IL-17A诱导的巨噬细胞细胞极化。??3.3.3?Wnt/p-catenin对IL-17A介导的巨嗤细胞极化调控机制探讨??接下来,我们试图研宄Wnt/p-catenin信号调控IL-17A介导的巨噬细胞极化的潜在作用机制。??巨噬细胞极化由各种转录因子的激活而受到严格的调控,并且已经证明Stat信号参与该调控过程。??因此,我们检测了?Stat信号通路相关蛋白来探宄其是否参与Wnt3a调控的IL-17A介导的巨噬细??胞极化。正如预期的那样,结果显示,WntSa和IL-17A确实可以通过增加p-STATl的表达来增??强Stat信号传导
气管上皮细胞的微孔膜置于加入了?PneumaCult?Ex-Plus的6孔板中,将6孔板放置于37°C,5%C02??的培养箱中培养,24h后,将膜上培养基弃去,将微孔膜下方培养基更换为含2%FBS的USG培??养基,培养24h后,更换为完全UltroSerG(USG)培养基,从而建立气液相培养条件。如图4-1??所示,在气液相培养条件下,微孔膜下方的USG培养液每两天更换一次。??小鼠管丨:皮细胞??mhhmhhbhh???孔隙支拎脱??图4-1.小鼠气管上皮细胞气液相培养模型??Figure?4-1.?Air-liquid?interface?culture?model?of?mouse?Tracheal?epithelial?cells??4.2.4气液相培养的小鼠气管上皮细胞(mTEC)与RAW264.7细胞共培养??从液氮罐中取出一株冻存的RAW264.7细胞复苏,传代,待细胞生长状态处于稳定且活力较??好时,当其融合率达至80%-90%时,弃去培养基,加入4mL预热的PBS轻轻漂洗一遍,加入2mL??-38-??
【参考文献】:
期刊论文
[1]巨噬细胞在肺纤维化的发病机制研究进展[J]. 黄雁超,李流云,崔向清,黄春芳. 重庆医学. 2015(21)
[2]阻断IL-17A活化p50NF-κB抑制小鼠肺损伤引起的肺纤维化[J]. 米粟,李辙,刘虹,胡卓伟,花芳. 药学学报. 2012(06)
本文编号:3253777
【文章来源】:宁夏大学宁夏回族自治区 211工程院校
【文章页数】:65 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图3-2.IL-17A逆转Wm3a改变的K噬细胞极化标志物的表达A.不同处理组iNOS和Argl的蛋白表达分析:B.不??同处理组iNOS和Argl的蛋白表达定S分析
compared?to?the?respective?groups.?#:?p<0.05,?##:?p<0.01.??接下来,我们运用流式细胞术检测Ml型巨噻细胞表面标志物CD86和M2型巨噬细胞表面??标志物CD206来进一步验证上述结果。结果显示(图3-5),在使用WntC-CM培养细胞时,??RAW264.7细胞中分别含有39.91%的Ml型巨噬细胞和27.3%的M2型巨噬细胞;Wnt3a-CM增??加了?CD206阳性的M2型巨噬细胞,并且IL-17A増加了?CD86阳性的Ml型巨噬细胞。有趣的??是,IL-17A改变的Ml、M2巨噻细胞的数量可以被WntSa部分逆转,并且通过添加XAV939可??以在一定程度上减少WntSa的抵消作用。这些结果清除的表明在RAW264.7细胞中,Wnt/p-catenin??信号能够负调控IL-17A诱导的巨噬细胞细胞极化。??3.3.3?Wnt/p-catenin对IL-17A介导的巨嗤细胞极化调控机制探讨??接下来,我们试图研宄Wnt/p-catenin信号调控IL-17A介导的巨噬细胞极化的潜在作用机制。??巨噬细胞极化由各种转录因子的激活而受到严格的调控,并且已经证明Stat信号参与该调控过程。??因此,我们检测了?Stat信号通路相关蛋白来探宄其是否参与Wnt3a调控的IL-17A介导的巨噬细??胞极化。正如预期的那样,结果显示,WntSa和IL-17A确实可以通过增加p-STATl的表达来增??强Stat信号传导
气管上皮细胞的微孔膜置于加入了?PneumaCult?Ex-Plus的6孔板中,将6孔板放置于37°C,5%C02??的培养箱中培养,24h后,将膜上培养基弃去,将微孔膜下方培养基更换为含2%FBS的USG培??养基,培养24h后,更换为完全UltroSerG(USG)培养基,从而建立气液相培养条件。如图4-1??所示,在气液相培养条件下,微孔膜下方的USG培养液每两天更换一次。??小鼠管丨:皮细胞??mhhmhhbhh???孔隙支拎脱??图4-1.小鼠气管上皮细胞气液相培养模型??Figure?4-1.?Air-liquid?interface?culture?model?of?mouse?Tracheal?epithelial?cells??4.2.4气液相培养的小鼠气管上皮细胞(mTEC)与RAW264.7细胞共培养??从液氮罐中取出一株冻存的RAW264.7细胞复苏,传代,待细胞生长状态处于稳定且活力较??好时,当其融合率达至80%-90%时,弃去培养基,加入4mL预热的PBS轻轻漂洗一遍,加入2mL??-38-??
【参考文献】:
期刊论文
[1]巨噬细胞在肺纤维化的发病机制研究进展[J]. 黄雁超,李流云,崔向清,黄春芳. 重庆医学. 2015(21)
[2]阻断IL-17A活化p50NF-κB抑制小鼠肺损伤引起的肺纤维化[J]. 米粟,李辙,刘虹,胡卓伟,花芳. 药学学报. 2012(06)
本文编号:3253777
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/huxijib/3253777.html
最近更新
教材专著