CtBP2-ROCK通路调节前列腺癌细胞侵袭
本文选题:前列腺癌 + CTBP2 ; 参考:《天津医科大学》2014年硕士论文
【摘要】:目的 明确CTBP2表达水平及位置改变对前列腺癌细胞体外生物学行为的影响,并初步探讨其分子机制。 方法 运用免疫组织化学检测CTBP2在前列腺增生与前列腺癌组织中的表达水平及位置改变;分别用westernblot与RT-qPCR检测CTBP2在正常前列腺细胞RWPE-1与前列腺癌细胞PC3中的蛋白水平与mRNA表达量,利用免疫荧光及激光共聚焦显微镜检测CTBP2在这些细胞中的位置改变;构建CTBP2表达质粒,并用其转化感受态细胞,经扩增后提取高浓度质粒,随后将其转染入PC3细胞中,经G418筛选及单克隆细胞培养后获得稳定转染株;分别应用RT-qPCR及Westernblot验证转染后细胞中CtBP2的mRNA表达量以及蛋白水平;使用MTT法检测CTBP2高表达前列腺癌细胞增殖能力变化,Transwell法检测CTBP2高、低表达前列腺癌细胞侵袭能力变化,磷脂酰丝氨酸外翻法分析(Annexin V)检测CTBP2高、低表达前列腺癌细胞凋亡改变;利用RT-qPCR检测可能受CTBP2调节的侵袭相关分子mRNA表达量,进一步运用westernblot验证RT-qRCR所得结果及该效应分子下游靶蛋白的改变。整理数据,所有需要统计分析的实验结果均运用SPSS软件进行统计分析。 结果 前列腺癌组织中CTBP2蛋白水平增加,且与肿瘤分期、gleason评分成正相关,CTBP2在前列腺增生组织及局限性前列腺癌组织中主要位于细胞核中,而在转移性前列腺癌组织胞浆中也出现;与正常前列腺细胞RWPE-1相比,前列腺癌细胞PC3中CTBP2mRNA表达量与蛋白水平增加,在RWPE-1中CTBP2主要位于细胞核中,而其在PC3细胞核与细胞浆中均表达;取CTBP2表达质粒转化感受态细胞,经扩增后成功提取高浓度质粒;通过脂质体介导将CTBP2表达质粒转染入PC3细胞,经G418筛选与单克隆细胞培养获得CTBP2稳定表达细胞株,并验证该细胞株CTBP2稳定高表达;细胞生物学行为检测表明CTBP2高表达可显著提高前列腺癌细胞侵袭能力,但对细胞增殖与凋亡无显著影响;而CTBP2低表达可显著降低细胞侵袭能力,增加细胞凋亡。RT-qPCR发现CTBP2低表达可降低前列腺癌细胞中ROCK1表达,westernblot检测也发现CTBP2低表达细胞中ROCK1蛋白水平降低,这与RT-qRCR结果一致。Westernbolt检测发现ROCK1下游信号分子p-MLC与c-Myc蛋白水平也降低,且c-Myc下游分子HSPC111蛋白含量降低。 结论 CTBP2表达水平及位置改变可影响前列腺癌细胞体外生物学行为,前列腺癌细胞中可能存在CTBP2-ROCK通路,其可能是促进前列腺癌细胞侵袭的机制之一。
[Abstract]:Purpose To investigate the effect of CTBP2 expression level and location on the biological behavior of prostate cancer cells in vitro, and to explore its molecular mechanism. Method Immunohistochemistry was used to detect the expression and location of CTBP2 in prostatic hyperplasia and prostate cancer, and westernblot and RT-qPCR were used to detect the protein level and mRNA expression of CTBP2 in RWPE-1 and PC3, respectively. The position of CTBP2 in these cells was detected by immunofluorescence and laser confocal microscopy, the expression plasmid of CTBP2 was constructed and transformed into the competent cells, the high concentration plasmid was extracted after amplification, and then transfected into PC3 cells. The stable transfection strain was obtained by G418 screening and monoclonal cell culture, and the mRNA expression and protein level of CtBP2 in transfected cells were verified by RT-qPCR and Westernblot, respectively. The proliferative ability of prostate cancer cells with high expression of CTBP2 was detected by MTT assay. The invasion ability of prostate cancer cells with low expression of CTBP2 was detected by Transwell method. The changes of apoptosis of prostate cancer cells with low expression were detected by Annexin V and high CTBP2 by Phosphatidyl serine valgus assay. RT-qPCR was used to detect the mRNA expression of invasion-related molecules which may be regulated by CTBP2. Westernblot was used to verify the results of RT-qRCR and the changes of downstream target proteins of the effector molecule. All the experimental results that need statistical analysis are analyzed by SPSS software. Result The level of CTBP2 protein was increased in prostate cancer tissues and positively correlated with tumor staging. CTBP2 was mainly located in the nucleus of prostate hyperplasia and localized prostate cancer tissues, but also in the cytoplasm of metastatic prostate cancer. Compared with the normal prostatic cell RWPE-1, the expression of CTBP2mRNA and protein in PC3 of prostate cancer cell increased. In RWPE-1, CTBP2 was mainly expressed in the nucleus, but it was expressed in the nucleus and cytoplasm of PC3. After amplification, the high concentration plasmid was extracted and the CTBP2 expression plasmid was transfected into PC3 cells mediated by liposome. The stable expression of CTBP2 was obtained by G418 screening and monoclonal cell culture, and the stable expression of CTBP2 in the cell line was verified. The results of cell biological behavior showed that the high expression of CTBP2 could significantly increase the invasive ability of prostate cancer cells, but had no significant effect on cell proliferation and apoptosis, while the low expression of CTBP2 could significantly reduce the invasive ability of prostate cancer cells. Increasing apoptosis. RT-qPCR found that low expression of CTBP2 could decrease ROCK1 expression in prostate cancer cells. Western blot analysis also found that ROCK1 protein level in CTBP2 low expression cells decreased, which was consistent with the results of RT-qRCR. Western bolt detection showed that the lower ROCK1 signal molecules p-MLC and c-Myc protein levels were also decreased. The content of HSPC111 protein in the downstream of c-Myc was decreased. Conclusion The change of CTBP2 expression level and location may affect the biological behavior of prostate cancer cells in vitro. There may be a CTBP2-ROCK pathway in prostate cancer cells, which may be one of the mechanisms to promote the invasion of prostate cancer cells.
【学位授予单位】:天津医科大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2014
【分类号】:R737.25
【共引文献】
相关期刊论文 前10条
1 陕光;;细胞信号分子Tiaml和Racl在膀胱尿路上皮癌中的表达及意义[J];中国组织化学与细胞化学杂志;2013年06期
2 徐伶玲;安广宇;;晚期结直肠癌靶向治疗研究进展[J];癌症进展;2014年02期
3 刘璐;张云霞;董欣;刘虎;曾强成;;力学环境下成纤维细胞生物学响应研究[J];德州学院学报;2014年02期
4 陈杨;耿培亮;;非小细胞肺癌新型治疗靶点的研究进展[J];国际药学研究杂志;2014年02期
5 葛晓晓;姜丽岩;;肺癌与TTF-1分子标志物研究进展[J];中国肺癌杂志;2014年06期
6 李培;康晓征;陈克能;;ERCC1、RRM1和TS在非小细胞肺癌中的临床意义[J];中国肺癌杂志;2014年06期
7 刘明;周承志;郑丽霞;欧阳铭;;自噬在表皮生长因子受体酪氨酸激酶抑制剂耐药中的作用[J];第三军医大学学报;2014年16期
8 房念珍;谷俊东;魏慧君;尤嘉琮;周清华;;MGMT基因启动子甲基化与非小细胞肺癌关系的meta分析[J];中国肺癌杂志;2014年08期
9 张丹;黄艳;王红阳;;非小细胞肺癌驱动基因突变及靶向治疗的研究进展[J];中国肺癌杂志;2014年10期
10 薛剑;袁芳;于农;张孝忠;;胸腺肽β4对乳腺癌化疗相关心脏毒性的诊断价值[J];标记免疫分析与临床;2014年05期
相关会议论文 前7条
1 蔡辉;赵凌杰;张静;赵智明;沈思钰;;法舒地尔升高压力超负荷大鼠心肌血管紧张素转化酶2的表达[A];第九次全国中西医结合基础理论研究学术研讨会论文汇编[C];2013年
2 邓勇;张炜飞;张成斌;林金明;;液相色谱串联质谱法定量检测前列腺癌细胞肌氨酸代谢[A];中国化学会第29届学术年会摘要集——第38分会:质谱分析[C];2014年
3 支修益;;亚肺叶切除治疗早期肺癌[A];中国肿瘤内科进展 中国肿瘤医师教育(2014)[C];2014年
4 张蕾;王崇薇;史天陆;张圣雨;孙言才;姜玲;;2004-2013年我院肿瘤患者严重药品不良反应分析[A];第十三届全国青年药师成才之路论坛暨抗肿瘤药物合理应用与临床药学实践国家级继教会议论文集[C];2014年
5 邓勇;张炜飞;张成斌;林金明;;姜黄素对前列腺癌细胞肌氨酸代谢和AR/TMPRSS2-ERG信号通路的影响[A];中国化学会首届全国质谱分析学术研讨会会议论文集[C];2014年
6 谢芸;王文杰;;肺癌患者手术后心律失常原因及护理对策分析[A];中国转化医学和整合医学研讨会(广州站)论文综合刊[C];2015年
7 刘瑞;何姝霖;郑红刚;李卫东;花宝金;齐鑫;裴迎霞;张芸;;肺瘤平膏及其联合塞来昔布干预时间对Lewis肺癌小鼠不同肿瘤微环境中COX-2表达的影响[A];第一届青年中西医结合肿瘤学术论坛论文集[C];2015年
相关博士学位论文 前10条
1 李莲莲;感觉神经节对脑运动神经元轴突生长的影响及其分子机制[D];兰州大学;2013年
2 耿耀君;高通量数据特征选择算法研究[D];西安电子科技大学;2013年
3 周淑媛;低切应力对血管内皮屏障功能的调控及SL提取物的干预机制[D];中国中医科学院;2013年
4 李晓;PRDM16对C2C12细胞分化的影响及其PR结构域的功能分析[D];南京农业大学;2011年
5 张晓方;p32在EGF诱导的乳腺癌细胞趋化运动和转移中的作用[D];天津医科大学;2013年
6 李鸿雁;ELMO_S蛋白在乳腺癌趋化运动及转移中的机制研究[D];天津医科大学;2013年
7 张飞;mTORC2/Rictor调控非小细胞肺癌转移的分子机制研究[D];天津医科大学;2013年
8 张磊;DMOG对鼠BMSCs凋亡与成骨分化影响及在兔激素性股骨头坏死修复中作用的实验研究[D];昆明医科大学;2013年
9 蔡舟;PEAK1在肝细胞癌组织中的表达及其临床关系研究[D];中南大学;2013年
10 刘健平;鼻咽癌转移的线粒体蛋白质组研究[D];中南大学;2013年
相关硕士学位论文 前10条
1 黄承信;RNAi沉默CtBP1基因对人肝癌细胞株HepG2生物学行为的影响[D];桂林医学院;2012年
2 许蕊;Rac1在缺氧诱导乳腺癌细胞HIF-1α表达中作用机制的研究[D];南京医科大学;2013年
3 孙晓静;siRNA抑制ZNF139对胃癌细胞增殖、凋亡的影响及机制研究[D];河北医科大学;2013年
4 丁庆国;ROCK_1蛋白在食管鳞癌中的表达及临床意义[D];遵义医学院;2013年
5 葛芳;肿瘤基因表达谱数据聚类的谱方法研究[D];安徽大学;2013年
6 孙寅玮;ROCK对PDGF诱导大鼠血管平滑肌细胞MMP-2、MMP-9及MEF2A表达的初探[D];大连医科大学;2012年
7 鲁艳平;HGF、ERK/MAPK、ESM和CNTF信号通路在大鼠肝再生中对肝细胞分化的调节作用研究[D];河南师范大学;2013年
8 刘栓得;PDGF-D在转移性骨肿瘤中对破骨样细胞分化成熟影响的研究[D];第三军医大学;2013年
9 龚明福;GoldMag纳米粒对HUVECs生物活性影响及体外MR成像研究[D];第三军医大学;2013年
10 李丹华;ZEB1对上皮间质转化及ESRP1表达的调控机制研究[D];天津医科大学;2013年
,本文编号:1959617
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/mjlw/1959617.html