当前位置:主页 > 医学论文 > 皮肤病论文 >

DLL1基因在小鼠B16黑色素瘤形成中的作用研究

发布时间:2019-11-02 23:20
【摘要】:Notch信号通路是进化上高度保守的细胞与细胞间的信号传导系统,通过调控细胞的分化、增殖、凋亡的命运选择,在胚胎正常发育、机体稳态调控以及成体干细胞的维持中发挥重要作用。在胚胎血管发育过程中,Notch信号通路调控着动静脉血管的分化和血管内皮Tip细胞和Stalk细胞的命运选择,对胚胎血管网络正常结构和功能的维持起到了关键作用。Notch信号通路调控的异常往往由于血管网络发育的缺陷而导致胚胎死亡。在成体生理性新生血管形成中,Notch信号通路的激活限制了血管的过度生成,维持了机体的稳定。在肿瘤血管中,DLL4的表达显著增高,阻断DLL4激活的Notch信号通路引起了肿瘤血管的无功能性过度生成,使肿瘤的血流灌注减少而抑制了肿瘤的生长;而过表达DLL4虽然肿瘤血管的生成,但却改善了肿瘤血管的结构和灌流功能,促进了肿瘤的生长。但与此同时,也有研究证实Notch的另一配体Jagged1能通过促进肿瘤的功能血管的形成而促进肿瘤的生长。 鉴于Notch信号通路的调控作用环境依赖性(Context-dependent)和Notch分子间的功能特异性,我们检测了另外一个Notch配体DLL1在肿瘤血管中的作用。DLL1调控胚胎期动静脉血管的分化和成体损伤后血管的形成。但其在肿瘤血管中的作用还没有详细的研究报道。我们在DLL1与肿瘤血管的研究中主要做了以下工作: 1、构建共表达DLL1蛋白和绿色荧光蛋白(GFP)的真核表达质粒。通过设计特异引物,利用PCR方法扩增出DLL1基因片段,测序正确后连接通过到pIRES2-EGFP质粒中;然后对新构建的pIRES2-EGFP-DLL1质粒进行了酶切鉴定和测序。 2、在体外实验中发现DLL1的表达促进肿瘤细胞的体外增殖。通过分别转染pIRES2-EGFP-DLL1质粒和pIRES2-EGFP质粒,药物筛选建立了稳定表达DLL1基因和GFP基因的B16黑色素瘤细胞系;检测发现DLL1激活了肿瘤细胞Notch信号通路;MTT和软琼脂克隆形成实验表明DLL1的表达促进了肿瘤细胞的增殖和克隆的形成。 3、观查到DLL1通过减少肿瘤血管的生成抑制了肿瘤在小鼠体内的生长。小鼠皮下荷瘤实验发现实验组肿瘤在小鼠体内的生长长受到抑制,基因检测发现Notch通路在肿瘤中激活,免疫荧光和免疫组化实验证实血管肿瘤中血管形成减少,肿瘤组织血供障碍,缺氧程度加重,坏死增加。 结论:综上所述,我们的研究认为DLL1在肿瘤细胞中的表达能通过肿瘤细胞间的相互作用激活HES1、HEY1等Notch下游基因,促进肿瘤细胞的增殖和克隆的形成。但在B16-DLL1肿瘤在小鼠体内的生长并没有相应的加速,反而受到了抑制。可能原因是肿瘤的快速增殖需要与营养的供应相适应,而DLL1的表达一方面促进了肿瘤细胞的增殖,另一方面却使肿瘤血管的生成减少,结构紊乱,扰乱了肿瘤的血液供应,加重了肿瘤内部缺血缺氧情况,使肿瘤组织坏死增加,从而抑制了肿瘤的生长。
【图文】:

受体,配体


第四军医大学硕士学位论文图1 、Notch受体和配体的结构(引自DumortierA. etal.IntJHematol.2005)1.3 Notch 信号的激活过程(图 2)Notch信号激活需要三个重要的步骤:①Notch受体和配体的识别与结合。配体的DSL基序与受体的第11、12位EGF序列相互作用,激活相关的蛋白水解酶。②Notch胞内段(NICD)从细胞膜上酶切释放。Notch受体需要经过两次酶切才能释放具有活性的NICD进入细胞核。第一次由肿瘤坏死因子-α-转化酶(TNF-α-converting enzyme,TACE)在S2位点酶切,释放胞外区[9];第二次由早老蛋白(Presenilin)依赖的γ-secretase复合物在S3位点酶切,释放NICD[10-11]。③ NICD核内转录复合物的形成。NICD在细胞核内不能直接与DNA结合,首先需要通过RAM结构域和ANK结构域与转录因子CSL(CBF1/RBP-J,Su[H],Lag1)相作用

信号通路


图2 Notch信号通路的激活(引自John Panelos et al Cancer Biology &Therapy 2008)二、Notch 信号通路对血管形成的作用1 Notch 分子在血管上的表达⑴Notch受体在血管内皮细胞和血管平滑肌中都有表达:Notch1 广泛表达在心脏和血管内皮细胞上,,而Notch4 特异表达在血管内皮细胞上表达[14-15];Notch3 则主要表达在血管平滑肌细胞上[16-17]。一般认为Notch受体和配体主要表达在较大动脉血管内皮细胞中,但在毛细血管和静脉中也检测到了Notch分子的表达[15-18]。 ⑵Notch配体中除了Dll3,其他配体 (DLL1,DLL4, Jagged1 和Jagged2)都能在血管内皮细胞上检测到[18]。其中DLL4 是被认为是血管中最重要的Notch配体,在胚胎期主要表达在小血管和毛细血管中,成体后表达下降,但在机体新生血管和肿瘤血管表达又会升高[19-20]。
【学位授予单位】:第四军医大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2011
【分类号】:R739.5

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 杨振江;赵霞;邹映珍;冯玉丽;戴玲;;瘀毒清抗B16黑色素瘤血管生成的研究[J];医学研究杂志;2004年02期

2 ;皮肤肿瘤[J];国外科技资料目录(医药卫生);1998年08期

3 尤艳;尤敏;刘厚广;朱晓麟;王红焰;;b-FGF在恶性黑色素瘤中的表达及其与血管微密度的关系[J];哈尔滨医科大学学报;2006年05期

4 李静;孙保存;古强;董学易;韩春荣;宗文康;赵楠;刘艳荣;赵秀兰;;VEGF及其受体Flt-1和Flk-1在人体黑色素瘤中的表达[J];天津医科大学学报;2011年02期

5 杨景春,刘子勇,孙扬,苏肖汉,马远平;CO_2激光照射实验性黑色素瘤观察[J];中国医科大学学报;1986年Z1期

6 于楠;王金柱;张玉玖;毛玉泉;张景权;谭郁彬;;原发性食管黑色素瘤的临床和病理探讨——附1例报告及文献复习[J];天津医药;1986年11期

7 吕德志;钱俊甫;张友昌;;黑色素瘤误诊鸡眼一例[J];中国实用外科杂志;1988年08期

8 李忠,王荣朝;小肠、口腔及肺多灶性无色素性黑色素瘤1例[J];江苏大学学报(医学版);1994年02期

9 郭华北,余裕民,姜程茂,蒋秉坤;血清S100IRMA对黑色素瘤的临床应用价值[J];标记免疫分析与临床;1995年04期

10 钟泽华,康晓丽,梅蓉;激光治疗足底黑色素瘤1例[J];华西医学;1995年03期

相关会议论文 前10条

1 赵连梅;韩丽娜;单保恩;;木鳖子提取物通过调节MAPKs通路诱导黑色素瘤B16细胞分化[A];河北省免疫学会第六次免疫学大会资料汇编[C];2010年

2 吴缅;;MicroRNA调控黑色素瘤发生机制(英文)[A];第三届细胞结构与功能的信号基础研讨会论文摘要[C];2010年

3 黎川;;黑色素瘤的MRI诊断[A];2010中华医学会影像技术分会第十八次全国学术大会论文集[C];2010年

4 许宇;赵培泉;朱颖;;视盘上的黑色素细胞瘤抑或是黑色素瘤[A];中国眼底病论坛·全国眼底病专题学术研讨会论文汇编[C];2008年

5 王国华;;恶性黑色素瘤胃转移的X线表现(附5例分析)[A];全国非血管性与血管性介入新技术学术研讨大会(第二届介入放射学新技术提高班、第二届河南省肿瘤介入诊疗学术大会)论文汇编[C];2004年

6 贾兰青;罗利群;张友会;;转导B_7-1基因消除IFN-γ对黑色素瘤转移潜力的增强作用[A];面向21世纪的科技进步与社会经济发展(下册)[C];1999年

7 胡巍;张超;方芸;;雾化吸入羟基喜树碱对小鼠黑色素瘤肺转移的药效学及体外作用机制研究[A];2010年江苏省药学大会暨第十届江苏省药师周大会论文集[C];2010年

8 王寅;林文;殷明;姜恅英;陈新生;;5—脂氧合酶对黑色素瘤A375粘附及整合素表达的作用[A];海峡两岸三地药理学学术报告会论文汇编[C];2001年

9 徐辉;唐桂波;;黑色素瘤脑转移的MRI表现[A];中华医学会第十三届全国放射学大会论文汇编(上册)[C];2006年

10 胡巍;张超;方芸;;雾化吸入羟基喜树碱对小鼠黑色素瘤肺转移的药效学及体外作用机制研究[A];2010施慧达杯第十届全国青年药学工作者最新科研成果交流会论文集[C];2010年

相关重要报纸文章 前10条

1 王伦 刘晨;探索黑色素瘤治疗新技术[N];保健时报;2009年

2 健康时报特约记者 管九苹;澳大利亚免费普查黑色素瘤[N];健康时报;2010年

3 实习生 易立;黑色素瘤,是否无药可治?[N];科技日报;2011年

4 本报记者 聂国春;专家:黑色素瘤可防可治[N];中国消费者报;2011年

5 记者 张e

本文编号:2554764


资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/pifb/2554764.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户1e5a5***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com