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人参皂苷Rd对成年大鼠脑内神经干细胞神经发生的影响及机制研究

发布时间:2017-09-30 00:18

  本文关键词:人参皂苷Rd对成年大鼠脑内神经干细胞神经发生的影响及机制研究


  更多相关文章: 人参皂苷Rd 神经干细胞 增殖 分化 PI3K/Akt MAPK/ERK1/2


【摘要】:长期以来,神经病学领域都认为中枢神经系统成熟的神经元属于终末分化细胞,很难再进行分裂和增殖。因而中枢神经系统的损伤、变性导致的神经元丢失及神经元的损伤难以得到自我修复,神经功能的重建被视为不可能。科学家们对体外神经干细胞(NSCs)分离培养和增殖的成功,为中枢神经系统的再生和功能重建带来了新的希望。但目前已有的促进NSCs增殖和分化的方法都因其临床治疗可操作性不强而制约了临床转化应用。因此找到一种促进NSCs增殖和定向分化的药物可能为神经系统疾病的临床治疗提供新的可行途径。人参皂苷Rd(GSRd)是从人参和三七中提取的一种单体化合物,是它们主要活性成分之一。我们前期的临床和基础研究发现,GSRd具有明确的神经保护作用:治疗脑梗死安全有效、减少脑缺血模型大鼠梗死体积、减少神经元死亡、促进大鼠运动功能恢复等。但GSRd是否能促进成年哺乳动物脑内NSCs的神经发生从而发挥神经修复功能呢?目前还鲜有报道。为此本研究拟在在体和离体探究GSRd对NSCs增殖及分化的作用并初步探索可能的分子机制。第一部分GSRd对成年大鼠脑内海马齿状回神经发生影响的研究目的:探究GSRd对海马齿状回NSCs增殖分化的影响。方法:(1)30 mg/kg的GSRd腹腔注射到成年大鼠体内,每天注射1次,连续注射1周。GSRd给药后的第7 d和第14 d处死大鼠,将海马区切片,通过Brd U染色、DCX染色,观察GSRd对海马区NSCs增殖和新生神经元的影响。(2)GSRd给药后的第34 d处死大鼠,将海马区切片,进行Brd U/Neu N和Brd U/GFAP荧光双标记染色,观察GSRd对海马区NSCs分化的影响。结果:(1)GSRd干预后7 d,GSRd组的海马齿状回Brd U和DCX阳性细胞数明显增加(P0.05);GSRd干预后14 d,GSRd组海马区Brd U和DCX阳性细胞的数目与对照组相比无明显差异。(2)GSRd组的Brd U+/Neu N+双标记细胞与对照组相比,数量明显增加(P0.05)。但两组Brd U+/Neu N+双标记细胞占总Brd U+细胞百分数无统计学差异。另外,对GSRd组和对照组进行Brd U/GFAP免疫荧光双标记染色,两组均没有观察到Brd U+/GFAP+双标记细胞。结论:GSRd显著增加海马齿状回NSCs及新生神经元的数量,但对NSCs的分化并无明显作用。第二部分GSRd对培养NSCs增殖分化影响的研究目的:探究GSRd对体外培养NSCs增殖分化的影响。方法:(1)分离培养胎鼠NSCs并进行神经球鉴定和分化鉴定。(2)体外培养NSCs,经过不同浓度GSRd干预后,观察神经球的数量和大小的变化;CCK-8法、Brd U免疫荧光染色分别观察GSRd对NSCs存活和增殖的影响。(3)体外培养NSCs,经过GSRd干预后,分别进行Tuj-1、GFAP和CNPase免疫荧光染色,观察GSRd对NSCs分化的影响。结果:(1)对体外培养的NSCs进行Nestin、Ki67免疫细胞化学染色,结果显示被染色的细胞呈Nestin阳性和Ki67阳性反应。Tuj-1、GFAP、CNPase免疫细胞化学染色结果显示,所培养的NSCs可以定向分化为神经元、星形胶质细胞以及少突胶质细胞,具有多向分化的潜能。(2)与对照组相比,GSRd组神经球的数目和直径明显增加(P0.05);CCK-8法、Brd U免疫荧光染色结果显示,GSRd可明显促进体外培养的NSCs的存活和增殖(P0.05)。(3)体外培养的NSCs,GSRd处理组Tuj-1、GFAP和CNPase阳性细胞百分率与对照组相比无明显差异。结论:GSRd可促进体外培养NSCs存活和增殖,对体外培养NSCs的分化无影响。第三部分GSRd促进神经干细胞神经发生机制的研究目的:探究GSRd促进神经干细胞神经发生可能的分子机制。方法:(1)Western Blot测定GSRd干预后的NSCs中Akt、p-Akt、ERK、p-ERK、PKC、p-PKC蛋白表达水平;(2)Western Blot测定PI3K/Akt信号通路抑制剂LY294002、MAPK/ERK1/2信号通路抑制剂PD98059干预下经GSRd作用的NSCs中Akt、p-Akt、ERK、p-ERK蛋白表达;(3)CCK-8法、Brd U免疫荧光染色分别观察LY294002和PD98059干预下经GSRd作用的NSCs的存活和增殖。结果:(1)与对照组相比,GSRd组p-Akt、p-ERK蛋白表达明显增加(P0.05),但Akt、ERK、PKC、p-PKC蛋白表达与对照组相比无明显差异。(2)与GSRd组相比,LY294002干预组和PD98059干预组p-Akt、p-ERK蛋白表达降低(P0.05)。(3)LY294002和PD98059可明显减弱GSRd干预的NSCs的存活和增殖(P0.05)。结论:GSRd可能通过PI3K/Akt和MAPK/ERK1/2信号通路调控NSCs的神经发生。
【关键词】:人参皂苷Rd 神经干细胞 增殖 分化 PI3K/Akt MAPK/ERK1/2
【学位授予单位】:第四军医大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R741
【目录】:
  • 缩略语表6-8
  • 中文摘要8-11
  • ABSTRACT11-14
  • 前言14-15
  • 文献回顾15-25
  • 第一部分 NSCS在治疗神经退行性疾病方面的潜能15-21
  • 1 NSCs的性能和特点15-17
  • 1.1 增殖和自我更新15-16
  • 1.2 多潜能性16-17
  • 1.3 分子标记17
  • 2 神经发生及其潜能17-18
  • 3 NSCs治疗衰老相关神经退行性疾病的潜能18-20
  • 4 基于NSCs疗法的前景20-21
  • 第二部分 GSRD在神经系统中的作用21-25
  • 1 GSRd具有明确的神经保护作用21-22
  • 2 GSRd对退行性疾病的神经保护作用22-25
  • 第一部分 GSRD对成年大鼠脑内海马齿状回神经发生影响的研究25-34
  • 1 材料25-26
  • 1.1 实验动物以及分组25-26
  • 1.2 实验试剂和配制方法26
  • 1.3 主要仪器及耗材26
  • 2 方法26-28
  • 2.1 BrdU给药26-27
  • 2.2 组织准备27
  • 2.3 免疫组织染色27-28
  • 2.4 统计学分析28
  • 3 结果28-32
  • 3.1 GSRd促进海马区NSC的增殖28-31
  • 3.2 BrdU/NeuN和BrdU/GFAP双标记染色结果31-32
  • 4 讨论32-34
  • 第二部分 GSRD对体外培养NSCS增殖分化的影响的研究34-52
  • 1 材料34-37
  • 1.1 实验动物34
  • 1.2 主要试剂和配制方法34-36
  • 1.3 主要仪器及耗材36-37
  • 2 方法37-42
  • 2.1 分离、培养NSCs37-38
  • 2.2 体外培养NSCs鉴定38-39
  • 2.3 NSCs的冻存和复苏39-40
  • 2.4 神经球计数40
  • 2.5 CCK-8 检测40-41
  • 2.6 免疫细胞化学染色41-42
  • 3 结果42-50
  • 3.1 大鼠NSCs的分离培养42
  • 3.2 原代NSCs的形态观察42-43
  • 3.3 传代NSCs的形态观察43-44
  • 3.4 NSCs鉴定和分化鉴定44-45
  • 3.5 复苏后的NSCs形态观察45
  • 3.6 不同浓度的GSRd干预体外培养神经球45-46
  • 3.7 不同浓度的GSRd干预体外培养的NSCs,,对其存活的影响46-47
  • 3.8 GSRd对体外培养NSCs增殖的影响47-49
  • 3.9 GSRd干预NSCs,对其分化的影响49-50
  • 4 讨论50-52
  • 第三部分 GSRD促进神经干细胞神经发生机制的研究52-61
  • 1 材料52-53
  • 1.1 主要试剂和配制方法52-53
  • 1.2 主要仪器及耗材53
  • 2 方法53-57
  • 2.1 Western Blot法53-56
  • 2.2 CCK-8 检测56
  • 2.3 BrdU免疫细胞化学染色56
  • 2.4 统计学分析56-57
  • 3 结果57-60
  • 3.1 GSRd激活PI3K/Akt、MAPK/ERK1/2 信号通路57
  • 3.2 LY294002、PD98059可逆转p-Akt、p-ERK蛋白表达水平57
  • 3.3 LY294002、PD98059减弱了GSRd对NSCs促增殖作用57-60
  • 4 讨论60-61
  • 小结61-62
  • 参考文献62-73
  • 附录73-74
  • 个人简历和研究成果74-75
  • 致谢75

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