Ca 2+ /CaM/CaMKⅡ信号通路在大鼠肝脏再生中的初步研究
发布时间:2021-07-16 17:59
第一部分 新生大鼠肝细胞的分离、培养与鉴定目的:建立一种简单、高效的新生大鼠肝细胞分离与培养的方法。方法:采用组织块-胶原酶消化法,经多步低速离心获取新生大鼠肝细胞,待体外培养的肝细胞呈克隆样生长形成细胞集落,应用RT-PCR和Western blot技术分别检测新生大鼠肝细胞中ALB、CK-18、CK-8和AFP的mRNA和蛋白表达情况,同时将同种新生大鼠肝组织、大鼠肝组织中作为参照,进行生物学功能鉴定。结果:分离的新生大鼠肝细胞体外培养,在倒置显微镜下可见细胞形态呈现为圆形,24h部分细胞贴壁,胞体伸展后,呈岛屿状,由圆球形转变为椭圆形,48h细胞进入增殖期,细胞呈不规则多边形上皮细胞特征,3d培养的肝细胞互相连接成片,同时胞体透明度减弱、轮廓增强,可见部分肝细胞呈双核或多核。5d细胞形态基本一致,呈克隆样生长彼此之间相互融合。RT-PCR技术检测新生大鼠肝细胞表达成熟肝细胞标记物ALB、CK-18、CK-8 mRNA:Western blot技术检测新生大鼠肝细胞表达成熟肝细胞标记物ALB、CK-18、CK-8蛋白。结论:成功分离、鉴定出了新生大鼠肝细胞,并可在体外条件下扩增培养...
【文章来源】:昆明医科大学云南省
【文章页数】:146 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图4大量真茵污染(X200)
一般肉眼可见培养液浑浊,呈黄绿色。镜下可见满视野都是细菌颗粒,??同时可覆盖细胞,使得整个背景模糊,可能导致细胞死亡,及时应用双抗有效??进行预防,若较重则尽快丢弃细胞,如图5所示。W上两种污染在培养中较多见,??若污染较重应尽快丢弃细胞,同时按污染情况消毒培养箱和细胞间。??圓圓??图4大量真茵污染(X200)?图5大量细菌污染(X200)??2.2.2细胞冻存及复苏流程??(1)冻存液配制:DMEM培养基?50%??胎牛血清?40%??DMSO?10%??21??
图6转移夹居示意图??
【参考文献】:
期刊论文
[1]慢病毒载体及其研究进展[J]. 孟凡荣,陈琛,万海粟,周清华. 中国肺癌杂志. 2014(12)
[2]肝脏原位注射新生大鼠肝细胞构建的工程化肝组织对大鼠肝纤维化的影响[J]. 周海洋,郑爱民,黄蓉蓉,戴大江,张海宏,曹厚军. 空军医学杂志. 2013(03)
[3]Advances in cell sources of hepatocytes for bioartificial liver[J]. Xiao-Ping Pan , Lan-Juan Li State Key Laboratory for Diagnosis and Treatment of Infectious Diseases, First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine, Hangzhou 310003, China. Hepatobiliary & Pancreatic Diseases International. 2012(06)
[4]大鼠原代肝细胞分离与培养[J]. 陈宁,覃霞,朱樑. 胃肠病学和肝病学杂志. 2011(06)
[5]Role of lipid rafts in liver health and disease[J]. Angela Dolganiuc. World Journal of Gastroenterology. 2011(20)
[6]肝细胞分离技术的研究进展[J]. 袁晓华,李灼日. 中国现代手术学杂志. 2011(01)
[7]磷酸钙转染法用于第三代自身失活型慢病毒包装的探讨[J]. 杨智,骆菁菁,钱程,刘立. 浙江理工大学学报. 2010(02)
[8]新生大鼠肝细胞分离及体外培养方法[J]. 刘巨超,张兰,张博峰,赵云山,徐飞,徐迎新. 中国组织工程研究与临床康复. 2009(53)
[9]原代肝细胞分离培养技术现状及展望[J]. 牟卉卉,胡康洪. 世界华人消化杂志. 2009(21)
[10]基因治疗病毒载体的研究及应用[J]. 眭维国,邬俊勇,陈洁晶,戴勇. 医学综述. 2008(24)
博士论文
[1]大鼠减体积肝移植术后肝脏再生差异蛋白及再生诱导免疫低反应性的实验研究[D]. 刘静.昆明医学院 2010
硕士论文
[1]Tmub1基因沉默对大鼠肝部分切除术后肝细胞增殖周期的影响[D]. 王保林.第三军医大学 2012
本文编号:3287488
【文章来源】:昆明医科大学云南省
【文章页数】:146 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图4大量真茵污染(X200)
一般肉眼可见培养液浑浊,呈黄绿色。镜下可见满视野都是细菌颗粒,??同时可覆盖细胞,使得整个背景模糊,可能导致细胞死亡,及时应用双抗有效??进行预防,若较重则尽快丢弃细胞,如图5所示。W上两种污染在培养中较多见,??若污染较重应尽快丢弃细胞,同时按污染情况消毒培养箱和细胞间。??圓圓??图4大量真茵污染(X200)?图5大量细菌污染(X200)??2.2.2细胞冻存及复苏流程??(1)冻存液配制:DMEM培养基?50%??胎牛血清?40%??DMSO?10%??21??
图6转移夹居示意图??
【参考文献】:
期刊论文
[1]慢病毒载体及其研究进展[J]. 孟凡荣,陈琛,万海粟,周清华. 中国肺癌杂志. 2014(12)
[2]肝脏原位注射新生大鼠肝细胞构建的工程化肝组织对大鼠肝纤维化的影响[J]. 周海洋,郑爱民,黄蓉蓉,戴大江,张海宏,曹厚军. 空军医学杂志. 2013(03)
[3]Advances in cell sources of hepatocytes for bioartificial liver[J]. Xiao-Ping Pan , Lan-Juan Li State Key Laboratory for Diagnosis and Treatment of Infectious Diseases, First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine, Hangzhou 310003, China. Hepatobiliary & Pancreatic Diseases International. 2012(06)
[4]大鼠原代肝细胞分离与培养[J]. 陈宁,覃霞,朱樑. 胃肠病学和肝病学杂志. 2011(06)
[5]Role of lipid rafts in liver health and disease[J]. Angela Dolganiuc. World Journal of Gastroenterology. 2011(20)
[6]肝细胞分离技术的研究进展[J]. 袁晓华,李灼日. 中国现代手术学杂志. 2011(01)
[7]磷酸钙转染法用于第三代自身失活型慢病毒包装的探讨[J]. 杨智,骆菁菁,钱程,刘立. 浙江理工大学学报. 2010(02)
[8]新生大鼠肝细胞分离及体外培养方法[J]. 刘巨超,张兰,张博峰,赵云山,徐飞,徐迎新. 中国组织工程研究与临床康复. 2009(53)
[9]原代肝细胞分离培养技术现状及展望[J]. 牟卉卉,胡康洪. 世界华人消化杂志. 2009(21)
[10]基因治疗病毒载体的研究及应用[J]. 眭维国,邬俊勇,陈洁晶,戴勇. 医学综述. 2008(24)
博士论文
[1]大鼠减体积肝移植术后肝脏再生差异蛋白及再生诱导免疫低反应性的实验研究[D]. 刘静.昆明医学院 2010
硕士论文
[1]Tmub1基因沉默对大鼠肝部分切除术后肝细胞增殖周期的影响[D]. 王保林.第三军医大学 2012
本文编号:3287488
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