当前位置:主页 > 医学论文 > 特种医学论文 >

siRNA干扰slug基因表达对IEC-6细胞放射线敏感性影响

发布时间:2018-05-16 04:17

  本文选题:slug基因 + RNA干扰 ; 参考:《青岛大学医学院学报》2017年01期


【摘要】:目的探讨siRNA干扰slug基因表达对体外肠隐窝上皮细胞IEC-6接受X线照射的敏感性影响及其机制。方法以体外培养大鼠小肠隐窝上皮细胞IEC-6为研究对象,将转染siRNA-slug(实验组)、转染siRNA(阴性对照组)和未转染siRNA(空白对照组)的细胞进行X射线照射处理,24h后,用Western blot法检测各组细胞的Slug和细胞P53正向凋亡上调因子(PUMA)蛋白的表达,CCK8法检测细胞在不同剂量X射线照射下的生长抑制情况,流式细胞仪检测细胞凋亡情况。结果实验组Slug蛋白表达与阴性对照组和空白对照组比较明显降低,PUMA蛋白表达明显高于阴性对照组和空白对照组,差异有显著性(F=1 760、421,P0.01)。与阴性对照组和空白对照组比较,实验组细胞的凋亡率增加,差异有统计学意义(F=33.02,P0.01)。在0~6Gy剂量范围内,随着X线照射剂量的增加,各组细胞的增殖活性均降低(F=6.595~31.470,P0.05);在6Gy剂量X线照射下,实验组细胞生长抑制率、早期+晚期凋亡率较阴性对照组和空白对照组明显增高,差异有统计学意义(F=47.700、33.020,P0.01)。结论 siRNA干扰slug基因的表达能够使促凋亡的PUMA蛋白表达增加,从而增强IEC-6细胞对X射线的敏感性。
[Abstract]:Objective to investigate the effect of siRNA interfering slug gene expression on the sensitivity and mechanism of X ray irradiation to IEC-6 of intestinal crypt epithelial cells in vitro. Methods IEC-6 of rat intestinal crypt epithelial cells was cultured in vitro. The cells transfected with siRNA-slug (experimental group, negative control group) and untransfected siRNAs (blank control group) were treated with X ray irradiation for 24 hours. Western blot assay was used to detect the expression of Slug and p53 positive apoptosis up-regulation factor (Puma) protein. CCK8 method was used to detect the growth inhibition of cells exposed to different doses of X-rays, and flow cytometry was used to detect the apoptosis of cells. Results compared with the negative control group and the blank control group, the expression of Slug protein in the experimental group was significantly lower than that in the negative control group and the blank control group, and the difference was significant (P 0.01). Compared with the negative control group and the blank control group, the apoptosis rate of the experimental group increased, and the difference was statistically significant. In the range of 0~6Gy dose, the proliferative activity of each group decreased with the increase of X-ray irradiation dose. The rate of late apoptosis in early stage was significantly higher than that in negative control group and blank control group, and the difference was statistically significant (P 0.01). Conclusion siRNA interference with the expression of slug gene can increase the expression of apoptotic PUMA protein and enhance the sensitivity of IEC-6 cells to X-ray.
【作者单位】: 青岛大学附属医院麻醉科;青岛大学附属医院外科;青岛大学附属医院小儿外科;
【基金】:山东省自然科学基金资助项目(2014ZRB01198)
【分类号】:R730.55

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 朱晓明;王晓红;姜锋;肖西峰;尹国武;;miR-152调节JEG-3细胞中HLA-G的表达[J];中华全科医学;2011年02期

2 陈京;李雅林;路海;白波;;pEYFP-hApelin-R重组真核表达载体的构建及在HEK293细胞中的表达[J];济宁医学院学报;2010年05期

3 高兴;邱实;蔡云;顾寿智;刘泽军;;iASPP在p53缺失肿瘤细胞中影响细胞凋亡的机制[J];第三军医大学学报;2011年01期

4 孙璇君;胡友洋;陈志武;;CSEsiRNA对EAhy926细胞的CSE及H_2S的表达影响[J];安徽医科大学学报;2012年08期

5 陈涛;唐北沙;廖小平;严新翔;张如旭;张玉虎;汤建光;曹立;郭纪锋;李静;;α-synuclein基因过度表达诱导HEK293细胞α-synuclein蛋白病理性积聚[J];中华医学遗传学杂志;2006年01期

6 蔡绍晖,杜军,陈新年,黄宁,王伯瑶;重组人beta防御素基因在COS-7细胞的转染表达[J];四川生理科学杂志;2000年02期

7 林芳;王锐;高萍;刘丽;王希;张惠中;;诱骗寡核苷酸下调MKN-45细胞OP18基因表达及对细胞增殖的影响[J];第四军医大学学报;2007年12期

8 张荣华;王冰;;哺乳动物细胞转染技术概述[J];大家健康(学术版);2013年17期

9 陈亮;辛钟成;袁亦铭;刘刚;田龙;宋卫东;姜学军;郭应禄;;Cox7a2在TM3睾丸Leydig细胞中表达,定位及与ERK1/2磷酸化相关性研究[J];临床泌尿外科杂志;2006年08期

10 朱焱;王禄增;杨威;于洋;王维;董婉维;汪瑛;秦英;郑志红;;STK15的表达对NIH3T3细胞的影响[J];中国比较医学杂志;2010年02期

相关会议论文 前6条

1 司聚同;孙红;王永潮;;c-fos基因真核表达真粒构建及细胞转染[A];中国细胞生物学学会第五次会议论文摘要汇编[C];1992年

2 林婴;;细胞培养中野生型和突变型ELOVL4的表达:亚细胞定位及细胞多样性[A];第五次全国中青年检验医学学术会议论文汇编[C];2006年

3 郑德先;刘彦信;何亦平;刘士廉;;T淋巴细胞激活与凋亡的信号传递[A];中国细胞生物学学会第七次会议论文摘要汇编[C];1999年

4 刘世洲;Simon Bekker-Jensen;Niels Mailand;Jiri Lukas;Jiri Bartek;;TopBP1与Claspin协同作用于在细胞DNA损伤中ATR介导的Chk1磷酸化[A];第四届中国肿瘤学术大会暨第五届海峡两岸肿瘤学术会议论文集[C];2006年

5 梅世月;李世博;魏绿;席真;;DNA/RNA荧光探针在示踪细胞转染过程中的应用[A];中国化学会第27届学术年会第03分会场摘要集[C];2010年

6 陈云超;;自制阳离子纳米泡介导HepG2细胞基因转染的实验研究[A];中华医学会第十三次全国超声医学学术会议论文汇编[C];2013年

相关博士学位论文 前7条

1 王欣;Bmo-miR-305*等对家蚕BmSGF-1、BmFMBP-1的转录后调控[D];江苏科技大学;2015年

2 高星杰;Tudor-SN蛋白调控细胞内应激颗粒组装的分子机制[D];天津医科大学;2015年

3 刘世洲;TopBP1蛋白在细胞DNA损伤中的作用机制[D];中国医科大学;2006年

4 林晓岐;人IL-2基因的克隆及哺乳动物细胞转染的研究[D];中国协和医科大学;1991年

5 张志文;聚阳离子纳米脂质载体的制备及穿膜机理的研究[D];复旦大学;2008年

6 李媛;基于血栓调节蛋白的抗炎措施研究[D];第三军医大学;2010年

7 韩聚强;改造HBV作为肝靶向性基因治疗载体的研究[D];第三军医大学;2003年

相关硕士学位论文 前10条

1 王萌萌;miR-126-3p抑制IRS2及其在β细胞增殖调节中的作用研究[D];宁夏医科大学;2015年

2 尚敏;PRRSV非结构蛋白Nsp1α对细胞SUMO化修饰的影响[D];华中农业大学;2015年

3 胡丹;双亮氨酸基序对NOK/STYK1蛋白的表达及细胞内分布特征的影响[D];新疆农业大学;2015年

4 任莉;ARIP1及ARIP2在Neuro-2a细胞中的表达及作用比较[D];吉林大学;2016年

5 孙海华;敲除SIRT1基因对小鼠AML-12细胞中SFRS10、Lipin 1表达的影响[D];河北医科大学;2016年

6 王雅婷;bmo-miR-3378在家蚕细胞抗BmNPV感染中的功能研究[D];浙江理工大学;2016年

7 张庆慧;PAM14的细胞转染表达和定位[D];安徽医科大学;2008年

8 崔万鹏;TLR4介导的MyD88信号通路在PC12细胞氧糖剥夺导致的损伤中的作用[D];中国医科大学;2010年

9 梁宇;LPS诱导GCH1基因表达上调的机制研究[D];清华大学;2010年

10 盛艳蕊;HBV通过下调miR-101-3p促进肝癌细胞的增殖和迁移[D];重庆医科大学;2014年



本文编号:1895412

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/yundongyixue/1895412.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户31493***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com