当前位置:主页 > 医学论文 > 中药论文 >

金雀异黄素调控miR-21对LPS活化的小鼠巨噬细胞凋亡的影响

发布时间:2020-05-16 06:12
【摘要】:目的:研究金雀异黄素(genistein,GEN)对脂多糖(lipopolysaccharides,LPS)活化的小鼠巨噬细胞凋亡的影响,以及是否与调控mi R-21有关。方法:1.应用不同浓度LPS(0、500、1 000 ng·m L-1)活化RAW264.7细胞12h或24h,q RT-PCR检测TNF-α和IL-6 m RNA表达,Western Blot检测COX-2和i NOS蛋白表达。使用不同浓度GEN(10、20、40μM)预孵育细胞2h,再与LPS(1 000 ng·m L-1)共同孵育24h后,CCK8检测细胞活力,Annexin V-FITC/PI法检测细胞凋亡,q RT-PCR检测caspase-3、caspase-8、Bcl-2、Bax、CHOP基因表达,Western Blot检测caspase-3、caspase-8、Bcl-2、Bax、CHOP凋亡蛋白表达。GEN(20μM)预处理细胞2h,再与LPS(1 000 ng·m L-1)共孵育24h后,q RT-PCR检测mi R-21基因表达。2.分别使用携带mi R-21 NC、mi R-21 OE、mi R-21 NC、mi R-21 KD的慢病毒感染RAW264.7细胞,经嘌呤霉素筛选,构建稳定细胞系,LPS处理24h,CCK8检测细胞活力,q RT-PCR检测caspase-3、caspase-8、Bcl-2、Bax、CHOP和mi R-21基因表达,Western Blot检测caspase-3、caspase-8、Bcl-2、Bax、CHOP蛋白表达。3.GEN预处理慢病毒介导的mi R-21 NC、mi R-21 OE、mi R-21 NC、mi R-21 KD细胞2h,再与LPS共孵育24h,CCK8检测细胞活力,q RT-PCR检测caspase-3、caspase-8、Bcl-2、Bax、CHOP基因表达,Western Blot检测caspase-3、caspase-8、Bcl-2、Bax、CHOP蛋白表达。结果:1.与对照组相比,LPS(1 000 ng·m L-1,24h)可以明显上调TNF-α和IL-6 m RNA表达(P0.05),促进COX-2和i NOS蛋白表达。因此,我们选取1 000 ng·m L-1 LPS孵育24h作为活化RAW264.7细胞的最佳药物浓度和作用时间。与对照组相比,LPS可明显增强细胞活力(P0.05),降低细胞凋亡率,下调caspase-3、caspase-8、Bax、CHOP基因(P0.05)及蛋白表达,上调Bcl-2基因(P0.05)及蛋白表达。与LPS组相比,GEN(10、20、40μM)可呈浓度依赖性抑制LPS活化的RAW264.7细胞活力(P0.05),升高细胞凋亡率,并促进caspase-3、caspase-8、Bax、CHOP基因(P0.05)及蛋白表达,抑制Bcl-2基因(P0.05)及蛋白表达。综合考虑,在GEN 20μM具有统计学差异,所以,我们选取20μM为GEN最佳药物浓度。与对照组相比,LPS可明显上调mi R-21表达(P0.05);与LPS组相比,GEN可明显下调mi R-21表达(P0.05)。2.与mi R-21 NC组相比,mi R-21 OE组mi R-21表达上调约2.5倍(P0.05),与mi R-21 NC相比较,mi R-21 KD组中mi R-21表达下调约70%(P0.05),可以用于后续实验。mi R-21 OE增强LPS活化的RAW264.7细胞活力(P0.05),下调caspase-3、caspase-8、Bax、CHOP基因(P0.05)及蛋白表达,上调Bcl-2基因(P0.05)及蛋白表达。mi R-21 KD抑制LPS活化的RAW264.7细胞活力(P0.05),上调caspase-3、caspase-8、Bax、CHOP基因(P0.05)及蛋白表达,下调Bcl-2基因(P0.05)及蛋白表达。3.与RAW264.7+GEN+LPS组相比,mi R-21 OE+GEN+LPS组细胞活力明显增强(P0.05),caspase-3、caspase-8、Bax、CHOP基因(P0.05)及蛋白表达均下降,Bcl-2基因(P0.05)及蛋白表达均升高。与RAW264.7+GEN+LPS组相比,mi R-21 KD+GEN+LPS组细胞活力明显下降(P0.05),caspase-3、caspase-8、Bax、CHOP基因(P0.05)及蛋白表达均升高,Bcl-2基因(P0.05)及蛋白表达均下降。结论:GEN可能通过下调mi R-21表达,促进LPS活化的RAW264.7细胞凋亡。
【图文】:

活化的,细胞活力,模型,细胞模型


图 1-1 构建 LPS 活化的 RAW264.7 细胞模型 RAW264.7 细胞经 LPS 处理 12h或者 24h。qRT-PCR 检测 TNF-α(A)、IL-6(B)mRNA 表达,Western Blot 检测 COX-2(C)、iNOS (D)蛋白表达。n=3, x±s,*P<0.05。1.3.2 GEN 对 LPS 活化的 RAW264.7 细胞活力影响分别使用 10、20、40 μM GEN 预处理细胞 2h,再与 LPS(1 000 ng·mL-1)共孵育 24h。与对照组相比,LPS 明显增加细胞活力(P<0.05);GEN(10、20、40μM )则呈浓度依赖性抑制 LPS 活化的 RAW264.7 细胞活力,见图 1-2。

活化的,活力,细胞活力,细胞


LPS 活化的 RAW264.7 细胞活力的影响 不同育细胞 2h,再与 LPS 共同孵育 24h,,CCK8 *P<0.05。 LPS 活化的 RAW264.7 细胞凋亡率的N(10、20、40 μM )预孵育细胞 2h,再与 LP用 Annexin V-FITC/PI 凋亡试剂盒检测细胞凋率为 5.3%,GEN 组(10、20、40 μM)凋
【学位授予单位】:湖南师范大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2019
【分类号】:R285.5

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 王磊;张黎明;;镁离子对金雀异黄素在遗传性高血压大鼠血压调节作用的影响[J];生命科学仪器;2017年06期

2 吴雅冬;田蕊;胡玉红;朱紫薇;夏文焱;刘艳娣;;金雀异黄素对孕期母鼠肥胖的影响研究[J];黑龙江医药科学;2018年01期

3 刘春凤;;金雀异黄素乙二胺盐的制备及理化性质研究[J];北方药学;2018年06期

4 范玉贞;王玉华;;金雀异黄素抗肿瘤作用的研究进展[J];实用肿瘤学杂志;2008年01期

5 朱松柏;吕永曼;;金雀异黄素抗癌作用分子机制研究进展[J];华中医学杂志;2006年03期

6 袁志兰,周青,王斌,戈应滨,袁孝如;缺氧诱导人视网膜色素上皮细胞19中血管内皮生长因子mRNA表达及金雀异黄素的抑制作用[J];中国临床康复;2005年18期

7 李琴山;刘洋;冯赞杰;钱民章;;金雀异黄素抑制单核细胞趋化蛋白-1诱导的人脐静脉内皮细胞凋亡[J];中国病理生理杂志;2007年05期

8 佘戟,莫丽儿,梁念慈;合成金雀异黄素水溶性硫酸酯的研究[J];化学通报;2000年01期

9 陈桂茹,常凤启,陈玉海;高效液相色谱法测定金转停中金雀异黄素[J];中国卫生检验杂志;2000年02期

10 刘文,宋芝娟,梁念慈;Effects of genistein on aggregation and cytosolic free calcium in pig platelets[J];Acta Pharmacologica Sinica;1998年06期

相关会议论文 前10条

1 孙莉静;袁伟杰;姜小宇;李保春;崔若兰;;金雀异黄素对PDGF刺激下大鼠系膜细胞增殖及周期调节蛋白的影响[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年

2 逄晓云;于榕;贡沁燕;;金雀异黄素对正常的和过氧化氢损伤的内皮细胞的影响[A];第八届全国生化药理学术讨论会暨第七届Servier奖颁奖大会会议摘要集[C];2003年

3 刘楠梅;袁伟杰;于建平;刘先锋;贾凤玉;;金雀异黄素对糖尿病大鼠代谢紊乱及肾脏病理的影响[A];“中华医学会肾脏病学分会2004年年会”暨“第二届全国中青年肾脏病学术会议”论文汇编[C];2004年

4 刘楠梅;袁伟杰;刘先锋;贾凤玉;;金雀异黄素对高糖培养下肾小球系膜细胞表型转换的影响[A];“中华医学会肾脏病学分会2004年年会”暨“第二届全国中青年肾脏病学术会议”论文汇编[C];2004年

5 李云;张勇;;锌与金雀异黄素对小鼠胚胎肢芽的影响[A];第四届第二次中国毒理学会食品毒理学专业委员会与营养食品所毒理室联合召开学术会议论文集[C];2008年

6 贾凤玉;袁伟杰;刘楠梅;刘先锋;张晓瑛;;金雀异黄素对晚期糖基化终末产物刺激大鼠系膜细胞的保护作用[A];“中华医学会肾脏病学分会2004年年会”暨“第二届全国中青年肾脏病学术会议”论文汇编[C];2004年

7 贾凤玉;袁伟杰;刘楠梅;刘先锋;张晓瑛;;金雀异黄素对终末糖化产物刺激大鼠系膜细胞终末糖化产物受体表达的影响[A];“中华医学会肾脏病学分会2004年年会”暨“第二届全国中青年肾脏病学术会议”论文汇编[C];2004年

8 孙莉娜;赵婷婷;鞠婷;王潇然;张黎明;于桂春;;金雀异黄素和镁剂联合应用对自发性高血压大鼠血压的影响及相关血管机制研究[A];中华医学会第十七次全国神经病学学术会议论文汇编(上)[C];2014年

9 姜晓宇;张爱平;丁尧海;王艳侠;张磊;石书梅;李宏栋;;金雀异黄素对大鼠肾小球基质的影响[A];中华医学会肾脏病学分会2006年学术年会论文集[C];2006年

10 刘楠梅;袁伟杰;于建平;张小瑛;石姝;;金雀异黄素对糖尿病大鼠肾脏细胞外基质产生及降解的影响[A];“中华医学会肾脏病学分会2004年年会”暨“第二届全国中青年肾脏病学术会议”论文汇编[C];2004年

相关重要报纸文章 前1条

1 记者 王夕;齐艳:我们为什么要多吃紫色食物?[N];北京科技报;2014年

相关博士学位论文 前8条

1 袁志兰;金雀异黄素抑制眼内新生血管性疾病的作用和机理研究[D];南京医科大学;2005年

2 王晶华;金雀异黄素合成工艺优化及抗肿瘤活性研究[D];黑龙江中医药大学;2006年

3 游江;金雀异黄素抑制增生性玻璃体视网膜病变的研究[D];中南大学;2006年

4 刘芳;抗Ⅳ型胶原抗体偶联金雀异黄素抑制后发障的研究[D];中国医科大学;2007年

5 扶志敏;调控MnSOD/FoxM1表达介导金雀异黄素逆转H460源性肺癌干细胞样细胞表型[D];暨南大学;2017年

6 金延泽;金雀异黄素对大鼠异位子宫内膜的作用及相关机制[D];延边大学;2012年

7 王媛媛;金雀异黄素对高糖环境足细胞自噬和炎症损伤的干预机制研究[D];河北医科大学;2015年

8 陈栋;金雀异黄素对尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)生长的影响及其机制研究[D];中国海洋大学;2013年

相关硕士学位论文 前10条

1 向丽萍;金雀异黄素调控miR-21对LPS活化的小鼠巨噬细胞凋亡的影响[D];湖南师范大学;2019年

2 翟晓涵;金雀异黄素调控Nrf2及二相解毒酶的表达对Caco-2细胞氧化损伤保护机制的研究[D];大连医科大学;2013年

3 甄井龙;金雀异黄素对雌性大鼠卵巢储备功能的作用研究[D];黑龙江八一农垦大学;2018年

4 王娟;金雀异黄素抑制宫颈癌Hela细胞增殖迁移作用及其机制的研究[D];扬州大学;2017年

5 李程;7-二氟甲氧基-5,4’-二甲氧基金雀异黄素稳定动脉粥样硬化斑块作用的实验研究[D];湖南师范大学;2011年

6 陈晓蛟;金雀异黄素对哮喘小鼠胸腺基质淋巴细胞生成素介导的Th2优势免疫的影响[D];扬州大学;2015年

7 梅煜明;蛋白酪氨酸激酶及金雀异黄素对人肾小管上皮细胞-肌成纤维细胞转分化的影响[D];第三军医大学;2002年

8 向剑;金雀异黄素经Nrf2和PI3K上调HO-1表达减轻Aβ神经毒性损伤[D];南华大学;2017年

9 计江东;金雀异黄素抑制缺氧人视网膜色素上皮细胞VEGF表达机理的研究[D];南京医科大学;2006年

10 高晋;金雀异黄素抗胰腺癌细胞的实验研究[D];山西医科大学;2010年



本文编号:2666294

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zhongyaolw/2666294.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户530a5***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com