ILT4在非小细胞肺癌中的作用及分子机制研究
本文关键词: NSCLC ILT4 肿瘤转移 VEGF-C B7-H3 出处:《山东大学》2015年博士论文 论文类型:学位论文
【摘要】:研究背景肺癌的发病率和死亡率是全球恶性肿瘤的第一位,其中非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer, NSCLC)占肺癌患者的80~85%,而且绝大部分初治病人处于进展期或已发生转移。因此,如何调节和控制肿瘤细胞侵袭转移对于NSCLC的治疗至关重要。肿瘤侵袭转移是多因素参与、多步骤完成的生物化学变化过程,其中肿瘤细胞增殖生存及侵袭迁移能力的增强、逃避免疫打击以及刺激肿瘤血管淋巴管生成等是肿瘤发生侵袭转移的关键环节。免疫球蛋白样转录子(immunoglobulin-like transcript, ILT)是近年来发现的一类免疫球蛋白超家族。ILT家族基因都定位于19号染色体相同的区域,主要在单核细胞、B细胞及树突状细胞(dendritic cell, DC)等细胞表达。根据其功能性质,ILT家族分为刺激性受体(ILT1, ILT6, ILT7 and ILT8)和抑制性受体(ILT2,ILT3, ILT4 and ILT5),其中抑制性受体胞质区含有免疫受体酪氨酸抑制基序(immunoreceptor tyrosine-based inhibitory motif, ITIM)长胞质尾部,通过募集含SH2结构的酪氨酸磷酸激酶(SH2-containing protein tyrosine phos-phatase,SHP)-1和SHP-2将细胞外信号向细胞内传递的作用发挥生物学效应。研究发现,ILT家族成员在一些髓系肿瘤中高表达:ILT2可在T细胞淋巴瘤中高表达,且高表达的ILT2可以拮抗CD3单抗诱发的细胞死亡;ILT3及ILT4在慢性B淋巴细胞白血病中高表达,且ILT3高表达在伴有淋巴结浸润的患者中更常见。我们前期研究发现,ILT4在实体瘤NSCLC、乳腺癌、结肠癌组织及其相应肿瘤细胞株中表达,且ILT4高表达的肿瘤组织中肿瘤浸润淋巴细胞(tumorinfiltration lymphocytes, TILs)数量显著减少,发生淋巴结转移的几率明显增高。近期研究发现,ILT4及其小鼠同源性配对免疫球蛋白样受体(paired immunoglobulin-like-receptor, PIRB)在急性单核细胞白血病细胞中mRNA的水平明显升高;在小鼠移植AML模型中,缺失PIRB会导致白血病细胞分化;在胰腺癌细胞中,阻断ILT4后,细胞运动能力降低;揭示ILT4在促进肿瘤进展中发挥着重要的作用;然而ILT4在NSCLC发生进展中的作用及分子机制目前尚不清楚。研究目的为明确ILT4在NSCLC疾病进展中的作用,我们通过转染技术,过表达或干扰NSCLC细胞中的ILT4,检测ILT4对NSCLC细胞增殖、侵袭、迁移等恶性生物学表型的影响;进行表达谱基因芯片分析,进一步明确ILT4促进肿瘤进展的分子机制,为ILT4在NSCLC的治疗中的潜在价值提供理论基础。研究方法1.通过PCR及Western blot检测ILT4基因在NSCLC细胞株中的表达,筛选出高表达ILT4的细胞株和低表达ILT4的细胞株。选择ILT4表达低的细胞株H1650和H1975转染ILT4质粒上调ILT4表达,并通过慢病毒感染建立稳定过表达ILT4细胞株;选择ILT4高表达的细胞株A549和H226转染ILT4shRNA干扰ILT4表达,并通过慢病毒感染建立稳定干扰ILT4细胞株。2.通过生长曲线及平板克隆实验,检测ILT4对NSCLC细胞生长、增值的影响;通过Annexin V-FITC/PI流式细胞术,检测ILT4对NSCLC细胞凋亡的影响;通过Transwell小室侵袭迁移实验,检测ILT4对NSCLC细胞侵袭迁移能力的影响。3.通过慢病毒感染建立稳定过表达ILT4的NSCLC细胞株ILT4/H1650及对照细胞株NC/H1650;稳定干扰ILT4的NSCLC细胞株shILT4/A549及对照细胞株shNC/A549,选择BALB/c Nude裸鼠分别皮下注射上述细胞。观察ILT4对NSCLC细胞体内成瘤能力的影响。4.通过慢病毒感染建立稳定过表达ILT4的NSCLC细胞株ILT4/H1650及对照细胞株NC/H1650;稳定干扰ILT4的NSCLC细胞株shILT4/A549及对照细胞株shNC/A549,选择BALB/c Nude裸鼠尾静脉注射细胞。观察ILT4对肿瘤细胞体内转移能力的影响。5.通过Western blot检测ILT4对基因MAPK通路相关靶蛋白ERK、p38MAPK及JNK的表达的影响,并筛选ILT4下游信号通路ERK信号通路;通过加入信号通路抑制剂阻断信号通路,观察ILT4过表达细胞株在抑制ERK信号通路后,对NSCLC细胞增殖及侵袭迁移的影响。6.通过表达谱基因芯片前期筛选,并进行PCR及Western blot验证,筛选检测ILT4对基因VEGF-C的表达的影响;并通过加入ERK信号通路抑制剂观察ILT4是否通过此信号通路调节VEGF-C的表达;通过加入siRNA阻断VEGF-C表达,观察ILT4过表达细胞株抑制VEGF-C表达后,对NSCLC细胞增殖及侵袭迁移的影响;7.利用免疫组织化学染色检测ILT4和VEGF-C在肿瘤组织及相应癌旁正常组织中的表达;根据免疫组化染色评分结果,统计分析ILT4和VEGF-C表达水平与NSCLC患者临床病理学特征之间的相关性;收集NSCLC患者的随访资料,采用Kaplan-Meier法绘制生存曲线,应用log-rank检验分析ILT4和VEGF-C的表达与NSCLC患者生存时间之间的关系。8.通过表达谱基因芯片前期筛选,并通过PCR及Western blot验证,检测ILT4对共刺激分子B7-H3的表达及PI3K/AKT/mTOR信号通路激活的影响:通过加入P13K及mTOR信号通路抑制剂,观察ILT4是否通过此信号通路调节B7-H3的表达;9.利用免疫组织化学染色检测ILT4和B7-H3在NSCLC组织中的表达及其相关性,并分析ILT4及B7-H3表达水平与肿瘤TIL数量间的关系。研究结果1.ILT4促进NSCLC细胞增殖及侵袭迁移PCR及Western blot检测结果显示:ILT4在本实验中所用5株NSCLC细胞株(A549、H226、H1299、H1650及H1975)中均有表达,其中H1650及H1975表达最低,A549及H226表达最高。过表达ILT4表达后,H1650及H1975细胞增殖及侵袭迁移能力明显增强;干扰ILT4表达后,A549及H226细胞增殖及侵袭迁移能力明显受到抑制;然而,ILT4对NSCLC细胞的抗凋亡能力无明显影响。2.ILT4促进NSCLC细胞体内成瘤及转移通过建立皮下移植模型发现ILT4对NSCLC细胞体内成瘤及瘤体生长均有显著的影响:过表达ILT4后,肿瘤生长速度显著快于其对照组,肿瘤组织重量大于其对照组;同样,干扰表达ILT4后,肿瘤生长速度显著慢于其对照组,肿瘤组织重量小于其对照组。通过建立尾静脉注射模型发现ILT4对NSCLC细胞体内转移亦有明显的影响:造模后6周取小鼠肺组织,计数表面肿瘤表面转移灶,并通过HE染色进行病理形态学观察。结果显示过表达ILT4后,裸鼠肺组织转移灶数目显著多于其对照组;干扰ILT4后,裸鼠肺组织转移灶数目小于其对照组。3.ILT4通过激活下游ERK信号通路促进NSCLC细胞恶性表型Western blot检测结果显示:过表达ILT4后,H1650及H1975细胞中ERK的磷酸化水平明显升高;而干扰ILT4后,A549及H226细胞中ERK的磷酸化水平明显降低;而无论过表达或干扰ILT4,对p38MAPK及JNK通路均无显著影响。此外,过表达ILT4的细胞株ILT4/H1650及ILT4/H1975,加入ERK信号通路抑制剂U0126后,细胞增殖及侵袭迁移能力明显受到抑制。4.ILT4通过上调下游作用分子VEGF-C促进NSCLC细胞恶性表型表达谱基因芯片结果显示:ILT4可促进多种生长因子表达上调。后续PCR及Western blot检测结果显示:H1650及H1975细胞过表达ILT4后,细胞中VEGF-C的表达水平明显升高;而干扰ILT4后,A549及H226细胞中VEGF-C的表达水平明显降低。在过表达ILT4的细胞株ILT4/H1650及ILT4/H1975中加入ERK信号通路抑制剂U0126后,VEGF-C的表达水平明显下降。内源性高表达ILT4的细胞株A549及H226转染siRNA抑制VEGF-C表达后,细胞增殖侵袭迁移能力明显受到抑制;在过表达ILT4的细胞株ILT4/H1650及ILT4/H1975中转染siRNA抑制VEGF-C表达后,细胞侵袭迁移能力明显受到抑制,而细胞增殖能力变化不明显。5.ILT4在原发性NSCLC组织肿瘤细胞中的表达与VEGF-C呈正相关免疫组化检测结果显示:在105例临床标本中,ILT4阳性表达率45.7%(48/105),并与高龄(p=0.044)、细胞低分化(p=0.038)、淋巴结转移(p=0.04)及TNM分期(p=0.013)呈正相关;高表达ILT4的患者5年生存率偏低(p=0.035);且ILT4与VEGF-C表达呈明显正相关p=0.024),ILT4和VEGF-C共表达的患者预后更差(p=0.009)。6.ILT4上调免疫共刺激分子B7-H3表达PCR及Western blot检测结果显示:过表达ILT4后,B7-H3表达水平明显升高;而干扰ILT4后,细胞B7-H3表达水平明显降低。此外,过表达ILT4后,AKT、mTOR、ERK的磷酸化水平升高;而干扰ILT4表达后,AKT、mTOR、 ERK的磷酸化水平降低。而且在过表达ILT4的NSCLC细胞株中分别加入P13K及mTOR信号通路抑制剂后,B7-H3表达水平明显下降;而加入ERK信号通路抑制剂U0126后,B7-H3表达水平无明显变化。7.ILT4在原发性NSCLC组织肿瘤细胞中的表达与B7-H3呈正相关免疫组化检测结果显示:在118例临床标本中,ILT4与B7-H3表达呈明显正相关(p=0.021),并且ILT4和B7-H3共表达的患者肿瘤组织中TILs数量明显减少(p=0.007),且预后较差(p=0.029)。结论1.体内体外实验证实ILT4可促进NSCLC细胞增殖、侵袭及迁移等多种恶性生物学行为。2.ILT4可通过激活NSCLC细胞中的ERK信号通路上调VEGF-C表达,从而影响肿瘤恶性生物学行为,最终促进肿瘤进展。3.ILT4可通过激活NSCLC细胞中的PI3K/AKT/mTOR信号通路上调免疫共刺激分子B7-H3的表达,参与肿瘤免疫逃逸,从而促进肿瘤进展。
[Abstract]:......
【学位授予单位】:山东大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R734.2
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 许运龙,郭昭扬,张云兴,许贤荣;血管内皮生长因子在人非小细胞肺癌中表达的临床研究[J];中华肿瘤杂志;2000年05期
2 王继营,高珊,崔黎,黄丽春,宋立友;“双异”联合治疗晚期非小细胞肺癌37例[J];中国肺癌杂志;2000年02期
3 田静,李蓓兰;老年晚期非小细胞肺癌的化疗:一种新趋势[J];中国肺癌杂志;2000年05期
4 张世雯,周清华;不同的分割方案与化疗联合治疗非小细胞肺癌[J];中国肺癌杂志;2000年05期
5 胡发明,华波;血清白介素-10水平是晚期非小细胞肺癌病人的一项预后因素[J];国外医学(内科学分册);2000年11期
6 于亮,王梅,张灿灼;微血管在非小细胞肺癌中的表达及临床意义[J];泰山医学院学报;2000年04期
7 朱建英;预计2009年非小细胞肺癌药物市场将达20亿美元[J];国外医药(合成药 生化药 制剂分册);2001年02期
8 张利伟,刘树秋,陈海英,万锦华;立体定向适形放疗配合常规放疗治疗非小细胞肺癌近期疗效分析[J];黑龙江医药科学;2001年05期
9 王肇炎;晚期非小细胞肺癌的解救化疗[J];肿瘤研究与临床;2001年01期
10 朱尧武,杨宇飞;非小细胞肺癌的术后辅助治疗[J];中国临床医生;2001年12期
相关会议论文 前10条
1 张新民;唐蜜;李代强;;磷酸化酪氨酸蛋白在非小细胞肺癌中的表达及其意义[A];中华医学会病理学分会2006年学术年会论文汇编[C];2006年
2 胡旭东;杨国仁;霍宗伟;方永存;陈鸣陆;;~(99m)Tc-MIBI SPECT显像观察非小细胞肺癌多药耐药的研究[A];首届全国肿瘤核医学新技术研讨会论文集[C];2007年
3 秦庆亮;熊海健;王爱;边海蓉;卢振国;杨培英;朱斌耀;王芸;;立体定向放射治疗放疗后复发非小细胞肺癌[A];2007第六届全国放射肿瘤学学术年会论文集[C];2007年
4 冯耘;万欢英;高蓓莉;项轶;刘嘉琳;;血管紧张素转换酶二在非小细胞肺癌肿瘤生长和血管生成中的作用[A];中华医学会第五届全国胸部肿瘤及内窥镜学术会议论文汇编[C];2011年
5 ;非小细胞肺癌术后辅助治疗及一线治疗[A];天津市抗癌协会肺癌专业委员会2011年学术年会论文集[C];2011年
6 蒋峰;许林;史美祺;;1560例非小细胞肺癌患者多因素预后分析[A];第13届全国肺癌学术大会论文汇编[C];2013年
7 张华;;术前中性粒细胞和淋巴细胞比值对非小细胞肺癌患者预后的影响[A];第13届全国肺癌学术大会论文汇编[C];2013年
8 王子平;;老年晚期非小细胞肺癌治疗思考[A];第三届中国肿瘤内科大会教育集暨论文集[C];2009年
9 张沂平;;非小细胞肺癌个体化化疗[A];2009年浙江省肿瘤学术年会暨肿瘤诊治新进展学习班论文汇编[C];2009年
10 刘嘉湘;施志明;李和根;徐振晔;朱晏伟;赵丽红;高虹;刘苓霜;朱惠蓉;张晖;;益肺抗瘤饮治疗271例非小细胞肺癌临床观察[A];中医药优秀论文选(下)[C];2009年
相关重要报纸文章 前10条
1 记者 李颖;特罗凯对中国非小细胞肺癌患者效果佳[N];科技日报;2007年
2 晓白;非小细胞肺癌研究获重大进展[N];人民日报;2008年
3 记者 张文天;非小细胞肺癌中医药综合医疗方案研究进展顺利[N];科技日报;2009年
4 辛勇 张先稳;早期非小细胞肺癌的治疗进展[N];中国中医药报;2004年
5 记者高新军;专家提出 建非小细胞肺癌中医临床指南[N];中国中医药报;2009年
6 上海长海医院呼吸科 夏阳 整理 邱志涛;非小细胞肺癌放虎归山还是乘胜追击[N];健康报;2013年
7 记者 王丹;新研究揭示炎症促非小细胞肺癌发生机制[N];健康报;2014年
8 记者 李颖;凯美纳成晚期非小细胞肺癌治疗优选方案[N];科技日报;2014年
9 白京丽;非小细胞肺癌最佳治疗方案[N];中国医药报;2000年
10 ;表皮生长因子受体抑制剂在治疗非小细胞肺癌中的作用[N];医药经济报;2005年
相关博士学位论文 前10条
1 白艳(Bai Sally);整合素αvβ5合并EGFR检测用于非小细胞肺癌转移及预后评估的研究[D];复旦大学;2013年
2 王筱恬;PLZF和DACH1的异常表达影响非小细胞肺癌发生与发展的分子机制[D];复旦大学;2012年
3 洪专;木犀草素治疗EGF受体继发性突变的非小细胞肺癌的实验研究[D];南京大学;2014年
4 张沛;ILT4在非小细胞肺癌中的作用及分子机制研究[D];山东大学;2015年
5 王世坤;RBP2诱导非小细胞肺癌和食管鳞癌表皮间质化[D];山东大学;2015年
6 赵世俊;~(18)F-FDG PET/CT在非小细胞肺癌预后评估中的应用研究[D];北京协和医学院;2013年
7 邱晨;影响非小细胞肺癌手术后远期生存的相关因素分析[D];山东大学;2015年
8 姜远瞩;术前血液学指标与淋巴结转移阴性非小细胞肺癌患者预后关系的研究[D];山东大学;2015年
9 朱良明;STAT3及其靶基因对非小细胞肺癌生物学行为调控机制的初步实验研究[D];山东大学;2015年
10 周菊;HPV-16感染对非小细胞肺癌和A549细胞的影响及miRNAs表达改变的研究[D];昆明医科大学;2015年
相关硕士学位论文 前10条
1 王勇;诱导型一氧化氮合酶在非小细胞肺癌中表达的临床意义[D];中国医科大学;2006年
2 陈婷;非小细胞肺癌调强放射治疗预后因素分析[D];福建医科大学;2015年
3 王波;单向式全胸腔镜下解剖性肺叶切除术治疗早期非小细胞肺癌的学习曲线[D];福建医科大学;2015年
4 施桂清;血管内皮抑制素联合放化疗治疗非小细胞肺癌的疗效及安全性研究[D];福建医科大学;2015年
5 王静;Eg5、Ki-67在非小细胞肺癌中的表达及临床意义[D];河北医科大学;2015年
6 覃建颖;IL-21和Tc1细胞在非小细胞肺癌患者外周血及癌灶中的变化及相互作用[D];广西医科大学;2015年
7 张瑞;ⅢA-N2期非小细胞肺癌手术治疗和放射治疗的疗效对比及相关预后因素的分析[D];河北医科大学;2015年
8 石姣姣;基于多肽构建抗肿瘤靶向药物的应用研究[D];北京协和医学院;2015年
9 胡世霖;非小细胞肺癌中医辨证分型与Napsin A、TTF-1在肺癌组织中表达的相关性研究[D];福建中医药大学;2015年
10 王婷婷;细胞因子活化杀伤细胞治疗非小细胞肺癌临床研究[D];河北医科大学;2015年
,本文编号:1482521
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zlx/1482521.html