当前位置:主页 > 医学论文 > 肿瘤论文 >

新维A酸化合物ECPIRM对皮肤T细胞淋巴瘤细胞HUT78增殖、凋亡和免疫调节作用及分子机制研究

发布时间:2018-03-14 15:07

  本文选题:ECPIRM 切入点:皮肤T细胞淋巴瘤 出处:《北京协和医学院》2017年博士论文 论文类型:学位论文


【摘要】:皮肤T细胞淋巴瘤(CTCL)是一组异质性的T淋巴细胞来源的非霍奇金淋巴瘤,蕈样肉芽肿(MF)和Sezary Syndome综合征(SZS)是其最常见的两种类型。CTCL的病因及发病机制复杂多样。一方面,CTCL的疾病过程中存在明显免疫抑制特点,Th1细胞因子、Th2细胞因子及调节性T细胞(Treg)细胞因子分泌失衡的微环境有利于恶性T细胞的增殖,使其活力增强。另一方面,恶性T细胞对凋亡耐受,机体清除异常细胞能力降低为肿瘤形成创造了条件。CTCL的治疗方法多样,近年来多项临床研究报道维A酸类化合物治疗CTCL有效且是CTCL各阶段治疗中外用或口服,单用或联合治疗的首选药物。维A酸类化合物属于维生素A衍生物,包括天然维生素A、其代谢物及合成类似物,具有调控多种细胞生物过程的作用,包括胚胎发育、视力、生殖、骨骼形成及细胞增殖、凋亡、分化及恶性转化等。维A酸类化合物常用于多种肿瘤的治疗,尤其在血液肿瘤中疗效确切。全反式维A酸(ATRA)治疗急性粒细胞性白血病(APL)有效率为40%-90%。体内外实验研究证实维A酸类药物均通过维A酸受体进行基因转录从而抑制肿瘤细胞增殖、促进肿瘤细胞凋亡,发挥抗肿瘤作用。但维A酸类药物治疗过程中存在的多种不良反应及药物耐受也与维A酸受体相关,这很大程度限制了维A酸类化合物在临床中的应用。ECPIRM是本实验室合成的新维A酸衍生物,具有抑制皮肤鳞癌细胞SCL-1增殖,促进SCL-1凋亡、诱导SCL-1分化为正常或接近正常细胞的作用,同时对小鼠皮肤刺激作用明显弱于ATRA。在对SCL-1的作用中,ECPIRM的作用特点有别于传统维A酸类药物,其不依赖于维A酸受体。由于维A酸类化合物的不良反应及耐药均与维A酸受体有关,因此推测ECPIRM在不良反应及耐药性方面要优于传统维A酸类药物,具有潜在的临床应用前景。由于ECPIRM在皮肤鳞癌细胞的研究结果体现了其自身的治疗优势,本研究拟探讨其在淋巴瘤细胞中的作用、分子机制及其生物学效应与维A酸受体的关系。HUT78细胞来源于SZS,属于恶性T细胞,具有T细胞的特点。与以往研究的SCL-1细胞不同,SCL-1细胞表达的维A酸受体主要为维A酸受体α(RARα)及维A酸受体γ(RARγ),而T细胞表达了除维A酸X受体γ(RXRγ)以外的所有维A酸受体,可见两者在来源、性状等方面的差异显著,故本实验以HUT78细胞为研究对象。具体研究内容分为三个部分:1)ECPIRM对CTCL细胞增殖、凋亡及细胞周期的影响及其作用机制探讨;2)ECPIRM对CTCL细胞HUT78免疫调节的作用及其作用机制探讨;3)ECPIRM对CTCL细胞HUT78表达的维A酸受体活性的影响。第一部分ECPIRM对CTCL细胞HUT78增殖、凋亡、细胞周期的影响及作用机制研究目的观察新维A酸化合物ECPIRM对CTCL细胞的增殖、凋亡及细胞周期生物学效应,并探讨其作用机制,为ECPIRM的成药性提供依据。1、ECPIRM对CTCL细胞增殖的影响方法用MTT法、台盼蓝拒染法检测浓度为5μM、1OμM、20μM和40μM的ECPIRM分别作用HUT78细胞、Myla细胞(初始浓度:3.5×104)及正常人淋巴细胞(初始浓度:5.0×104)24h、48h、72h及96h后对其增殖的影响。并对比ECPIRM、ATRA、13-cisRA和贝扎罗汀对HUT78细胞增殖作用影响。结果(1)ECPIRM明显抑制HUT78细胞增殖活性:实验显示40μM的ECPIRM作用24h后,HUT78细胞增殖被明显抑制,作用48h后,10μM及以上浓度ECPIRM明显抑制HUT78细胞增殖,抑制率在96h达最高峰(P0.01)。与传统维A酸相比,HUT78细胞增殖的作用,明显强于等摩尔浓度的贝扎罗汀。20μM及以上浓度的ECPIRM对HUT78细胞增殖抑制作用显著强于等摩尔浓度的ATRA及13-cis RA。(2)ECPIRM明显抑制Myla细胞增殖活性:实验显示20μM的ECPIRM作用72h后明显抑制Myla细胞增殖,40μM的ECPIRM作用后抑制率增加,作用96h后抑制率最大(P0.01)。(3)ECPIRM对于正常人淋巴细胞增殖活性影响:实验显示5μM、10μM、20μM和40μM的ECPIRM作用正常人淋巴细胞24h、48h、72h及96h后对正常人淋巴细胞增殖最大抑制率为8.37。结论ECPIRM显著抑制CTCL细胞HUT78及Myla的增殖。对正常人淋巴细胞增殖无明显影响。2、ECPIRM对CTCL细胞凋亡的影响方法(1)利用荧光显微镜观察浓度分别为5μM、10μM和20μM的ECPIRM作用HUT78细胞24h、48h及72h后,HUT78细胞的形态变化。用相同的方法处理HUT78细胞及正常人淋巴细胞后,采用流式细胞术(AnnexinV/PI双染法)检测凋亡率。(2)利用流式细胞术(PI染色)检测浓度分别为5μM、10μM和20μM的ECPIRM作用HUT78细胞24h、48h及72h后,HUT78细胞的周期分布变化。(3)用 western blot 检测浓度分别为 5μM、10μM 和 20μM 的 ECPIRM 作用 HUT78细胞72h后增殖、凋亡蛋白(BCL-xl、c-myc)表达的变化。结果(1)ECPIRM明显诱导HUT78细胞凋亡:显微镜观察ECPIRM作用后HUT78细胞的形态变化,与未处理的HUT78细胞相比,作用24h后,HUT78细胞形态无明显改变;作用48h后,可观察到ECPIRM处理后的细胞数量较未处理细胞稀疏,有部分凋亡细胞及细胞核碎片。作用72h后,可见更多浓缩的细胞核,细胞碎片及凋亡小体流式细胞术检测不同浓度ECPIRM作用HUT78细胞24h、48h及72h后,对HUT78细胞凋亡的影响。结果作用24h后,HUT78细胞凋亡不明显。作用48h后,HUT78细胞凋亡明显增加(P0.01),作用72h后,20μM的ECPIRM促进75.04%的HUT78细胞凋亡。对正常人淋巴细胞凋亡的研究结果表明ECPIRM对其影响不明显。(2)ECPIRM明显细胞增殖及凋亡蛋白表达:western bolt法检测ECPIRM对细胞增殖及凋亡蛋白表达影响。结果表明BCL-xl和c-myc的相对表达量均随着ECPIRM浓度的增加而逐渐降低(p0.01)。结论ECPIRM具有明显促进HUT78细胞凋亡的作用,对正常人淋巴细胞凋亡无明显影响。ECPIRM的增殖、凋亡作用通过抑制BCL-xl和c-myc表达实现。3、ECPIRM对CTCL细胞细胞周期的影响方法(1)利用流式细胞术(PI染色)检测浓度分别为5μM、10μM和20μM的ECPIRM作用HUT78细胞24h、48h及72h后,HUT78细胞的周期分布变化。(2)用western blot检测浓度分别为5μM、10μM和20μM的ECPIRM作用HUT78细胞72h后细胞周期蛋白(Cyclin)、周期蛋白依赖激酶(CDK)及细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂(CKI)表达的变化。结果(1)ECPIRM具有明显阻滞HUT78细胞的细胞周期作用:流式细胞术检测ECPIRM对HUT78细胞细胞周期的影响。作用24h后,ECPIRM对HUT78细胞的细胞周期无影响。作用48h后G0/G1期的细胞比率随浓度增加而递增(P0.01)。作用72h后,HUT78细胞G0/G1期比率最大达71.70±2.48。S期和G2/M期的百分比则相应降低。(2)ECPIRM影响细胞周期相关蛋白表达western bolt法检测ECPIRM对细胞周期相关蛋白表达影响。结果表明CDK2、CDK4、CyclinD1和CyclinE的相对表达量均随着ECPIRM浓度的增加而逐渐降低(P0.01),p21及p27的相对表达量则随着药物浓度的增加而逐渐增加(P0.01)。结论ECPIRM通过影响细胞周期蛋白使HUT78细胞周期阻滞于G0/G1期。4、ECPIRM抑制JAK/STAT通路活性方法用western blot检测浓度分别为5μM、10μM和20μM的ECPIRM作用HUT78细胞72h后,JAK/STAT通路蛋白变化。结果通过westernblot检测JAK/STAT通路蛋白的表达变化,结果表明JAK1、STAT3 及 STAT5 表达无变化,pJAK1、pSTAT3 及 pSTAT5 表达量随 ECPIRM剂量增大逐渐下降。结论 ECPIRM具有抑制JAK/STAT通路活性的作用,推测ECPIRM对HUT78细胞增殖抑制、促凋亡及周期改变与此相关。第二部分ECPIRM对CTCL细胞免疫调节作用及机制研究目的探讨新维A酸化合物ECPIRM对CTCL细胞的免疫调节作用,并探讨其可能的作用机制。1、ECPIRM对CTCL细胞免疫调节的浓度选择方法用MTT法检测浓度分别为0.01μM、0.1μM、11μM和10μM的ECPIRM作用HUT78细胞(初始浓度5×104)24h、48h、72h及96h后对其增殖的影响结果浓度分别为0.01μM、0.11μM及1μM的ECPIRM分别作用24h、48h、72h及96h后均不能明显抑制HUT78细胞的增殖,10μM的ECPIRM作用HUT78细胞48h后明显抑制HUT78细胞增殖。结论本实验可选择0.01μM、0.1μM及1μM的ECPIRM作用HUT78细胞96h为后续试验的条件。2、ECPIRM对CTCL细胞免疫调节的影响方法用RT-qPCR及流式细胞术检测浓度分别为0.01μM、0.1μM和1μM的ECPIRM 作用 HUT78 细胞 96h 后,对 IL-2、IL-12、IFGγ、IL-4、IL-5、IL-10 及TGF-β表达变化结果(1)RT-qPCR 结果表明 IL-2、IL-12、IFN-γ、IL-4 和 IL-5 在 HUT78 细胞中表达量低。ECPIRM可低水平增加IL-2、IL-12及IFN-γ的mRNA水平,明显降低IL-10及TGF-β的mRNA水平,对IL-4和IL-5无影响。(2)流式细胞术检测 ECPIRM 对 IL-2、IL-12、IFN-γ、IL-4、IL-5、IL-10 及TGF-β的蛋白水平变化,其结果与RT-qPCR结果一致。结论 ECPIRM可通过降低IL-10及TGF-β表达来调节CTCL细胞的免疫。3、ECPIRM对CTCL细胞免疫调节作用机制的初步探讨方法用RT-qPCR及western bolt法检测浓度分别为0.01 μM、0.1 μM和1 μM的ECPIRM作用HUT78细胞96h后,对NF-KB通路P65及IkBα的mRNA水平变化及P65、IkBα及pIkBα蛋白表达变化。结果 RT-qPCR结果显示1μM的ECPIRM作用后P65及IkBα的mRNA水平明显下降。P65和IkBα蛋白表达变化与mRNA水平一致,pIkBα蛋白表达水平随ECPIRM作用逐渐下降,具有剂量依赖性。结论 ECPIRM能抑制NF-KB通路活性。NFKB通路活性被抑制是ECPIRM抑制IL-10及TGF-β分泌的机制之一。第三部分ECPIRM对HUT78细胞表达的维A酸受体活性的影响目的探讨ECPIRM对T细胞淋巴瘤细胞表达的维A酸受体的影响。1、ECPIRM对维A酸类受体及其下游基因mRNA水平和蛋白水平表达的影响方法利用RT-qPCR和western blot分别检测浓度为0.1μM、1μM和10μM的ECPIRM和ATRA作用HUT78细胞96h后,其表达的RAR、RXR及下游基因他扎罗汀诱导基因1(TIGI),细胞色素P450家族成员26A1(CYP26A1)和STAT1的mRNA水平及CYP26A1、STAT1及TIGI蛋白表达变化。结果 ECPIRM 对 RARα、RARβ、RARγ、RXRα、RXRβ 及其下游基因 CYP26A1、TIG1和STAT1蛋白和mRNA均无明显影响。而阳性对照药ATRA可明显增加RARα、TIG1、CYP26A1及STAT1蛋白和mRNA水平的表达。结论在HUT78细胞中,ECPIRM不激活维A酸受体信号通路。2、比较维A酸受体抑制剂ECPIRM、ATRA及贝扎罗汀单用及联合维A酸类受体抑制剂对HUT78细胞增殖的影响。方法(1)用MTT法比较单用浓度为0.1μM、1μM和10μM的ECPIRM、ATRA及0.1μM、1μM 和 10μM 的 ECPIRM、ATRA 联合 1μM 或 10μM 的 AGN193109 作用HUT78细胞24、48、72及96h后,四组药物对HUT78细胞的增殖抑制作用,并比较四组药物作用24h及96h后的IC50。(2)用MTT法比较单用浓度为0.1μM、1μM和10μM的ECPIRM、贝扎罗汀及O.1μM、1μM和10μM的ECPIRM、贝扎罗汀联合1μM或10μM的单蒽醌作用HUT78细胞24、48、72及96h后,四组药物对HUT78细胞的增殖抑制作用并比较四组药物作用24h及96h后的IC50。结果维A酸RAR拮抗剂(AGN193109)及维A酸RXR拮抗剂(单蒽醌)均不影响ECPIRM对HUT78细胞的增殖活性;而维A酸RAR拮抗剂(AGN193109)明显影响维A酸RAR激动剂ATRA对HUT78细胞的增殖抑制作用;维A酸RXR拮抗剂明显影响维A酸RXR选择剂贝扎罗汀对HUT78细胞的增殖抑制作用。结论ECPIEM对HUT78细胞增殖的抑制作用均不受维A酸受体抑制剂的影响。进一步表明,ECPIRM对HUT78细胞增值的抑制是非维A酸受体途径的。小结1、ECPIRM对CTCL细胞HUT78具有明确的抑制增殖、促进凋亡和阻滞细胞周期的作用,其对HUT78细胞增殖抑制作用显著优于ATRA、13-cisRA及贝扎罗汀(p0.01)。同时,ECPIRM对正常人淋巴细胞无明显抑制增殖及促进凋亡的作用。2、ECPIRM具有阻滞CTCL细胞HUT78于G0/G1期的作用,其机制通过增加p21和p27的蛋白表达,抑制CyclinD1、CyclinE、CDK2及CDK4的蛋白表达,抑制细胞由G1期向S期转化。3、ECPIRM促进HUT78细胞凋亡,发生G0/G1期的阻滞可能与JAK/STAT通路被抑制有关。4、ECPIRM具有调节恶性T细胞分泌Th1/Th2细胞因子的作用,其机制与抑制NF-KB通路活性有关。5、ECPIRM 不影响 HUT78 细胞 RARα、RARβ、RARγ、RXRα、RXRβ 及其下游基因CYP26A1、STAT1、TIGI的表达,其对HUT78细胞的抗增殖作用也不受维A酸受体抑制剂的影响。表明ECPIRM对HUT78的生物学效应是非维A酸受体途径依赖。推测ECPIRM在肿瘤治疗中可能具有一定治疗学优势。
[Abstract]:......
【学位授予单位】:北京协和医学院
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R739.5

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 肖东杰,汪运山;T细胞主动凋亡的研究进展[J];国外医学.临床生物化学与检验学分册;1997年03期

2 丁志山,,沃兴德;细胞调亡与动脉粥样硬化[J];中国动脉硬化杂志;1998年01期

3 李妍;纪朋艳;张巍;彭顺利;吕士杰;;柴胡皂苷d对SH-SY5Y细胞ERK蛋白表达及凋亡的影响[J];中国医科大学学报;2013年12期

4 严银芳,陈晓,杨小清,闫远芳;流行性腮腺炎病毒减毒株S_(79)在几株肿瘤细胞和正常细胞中增殖的比较研究[J];肿瘤;2003年06期

5 刘功让;管培中;宋淑亮;逯素梅;冯玉新;辛华;;绞股蓝多糖对四氯化碳损伤HepG2细胞的保护作用[J];山东医药;2007年31期

6 肖东杰,汪运山;B细胞被动凋亡的研究进展[J];国外医学(临床生物化学与检验学分册);1998年05期

7 张运涛,刘凡,姜茹,谷仲平,汪涌,张顺,刘荣福,李玉梅;外源性p27与GRC-1细胞端粒酶活性及细胞凋亡关系的实验研究[J];中国现代医学杂志;2002年09期

8 石和元;王平;胡永年;邱幸凡;田代志;;温胆汤改良方对Aβ_(25-35)诱导AD细胞模型bcl-2、bax蛋白表达的影响[J];世界科学技术;2005年06期

9 孟威宏;王强;王虹蛟;颜炜群;;牛胰蛋白酶抑制剂研究进展[J];国外医学(老年医学分册);2008年04期

10 钟民涛;王晓丽;李星云;刘磊;刘颖丽;张伟;黄敏;;香菇C91-3菌丝发酵蛋白对H22肿瘤细胞体内外抗肿瘤机制的初探[J];中国微生态学杂志;2011年09期

相关会议论文 前10条

1 邹萍;;血液系统恶性肿瘤细胞来源膜微粒的特征及生物学作用研究[A];第13届全国实验血液学会议论文摘要[C];2011年

2 蒋争凡;卞婕;翟中和;;非细胞体系诱导小鼠肝细胞核凋亡的超微观察[A];第十次全国电子显微学会议论文集(Ⅰ)[C];1998年

3 陈卫银;祝彼得;刘福友;冯雪梅;;参芎滴丸对急性脑梗死模型大鼠神经细胞调亡的影响[A];中华医学会第十三次全国神经病学学术会议论文汇编[C];2010年

4 谢晶日;李威;梁国英;杨丰源;;胃灵颗粒对胃癌前病变细胞调亡基因影响的实验研究[A];中华中医药学会脾胃病分会第十八次学术交流会论文汇编[C];2006年

5 綦淑芬;万瑞香;姚如勇;;扇贝多肽对Hela细胞在紫外线损伤下的保护作用[A];第五届全国自由基生物学与自由基医学学术讨论会论文摘要汇编[C];2000年

6 吴李君;裴蓓;王顺昌;王军;汤明礼;;砷和镉暴露诱导秀丽小杆线虫生殖腺细胞调亡及其信号通路研究[A];中国毒理学会第二届全国中青年学者科技论坛会议论文集[C];2007年

7 余珂;王敬贤;周炳升;;多溴联苯醚诱导人神经SK-N-SH细胞调亡的机理[A];湖北省暨武汉市生物化学与分子生物学学会第八届第十七次学术年会论文汇编[C];2007年

8 冉新泽;郑怀恩;王艾平;王锋超;韩京;;他汀对内皮细胞辐射损伤组织因子与细胞调亡的影响[A];中国毒理学会放射毒理专业委员会第七次、中国毒理学会免疫毒理专业委员会第五次、中国环境诱变剂学会致突专业委员会第二次、中国环境诱变剂学会致畸专业委员会第二次、中国环境诱变剂学会致癌专业委员会第二次全国学术会议论文汇编[C];2008年

9 崔承彬;闫少羽;蔡兵;赵庆春;姚新生;曲戈霞;;黑果黄皮Clausena dunniana Levl中咔唑生物碱类新细胞周期抑制剂及细胞调亡诱导剂的核磁共振研究[A];第十一届全国波谱学学术会议论文摘要集[C];2000年

10 吴耀辉;邹萍;;Sunrivin基因沉默对K562细胞调亡影响的研究[A];第11次中国实验血液学会议论文汇编[C];2007年

相关重要报纸文章 前1条

1 张田勘;细胞调亡的意义[N];中国人口报;2002年

相关博士学位论文 前10条

1 罗晓明;载药聚合物超细纤维作为肿瘤局部制剂的研究[D];西南交通大学;2014年

2 王石;黄芪甲苷促进血管新生的分子机制研究[D];南京中医药大学;2013年

3 宋杨;抗CD25单抗对肾移植患者调节性T细胞生存和功能改变影响的研究[D];复旦大学;2014年

4 罗忠光;CRL E3泛素连接酶靶向新药MLN4924在体内外杀伤肝癌细胞的作用及机制研究[D];复旦大学;2014年

5 肖林林;巨噬细胞对血管细胞的辐射旁效应及其分子机制研究[D];复旦大学;2014年

6 张峰;戊型肝炎病毒基因4型在PLC/PRF/5细胞中的培养及其特征研究[D];北京协和医学院;2014年

7 陈凤华;Tat-SmacN7融合肽对肿瘤细胞辐射增敏作用的研究[D];北京协和医学院;2013年

8 虞志新;Th17/Treg失衡及其与中性粒细胞相互影响在ARDS发病中的作用和机制研究[D];江苏大学;2015年

9 黄凌燕;STK33基因在下咽鳞状细胞癌发生发展中的作用机制研究[D];山东大学;2015年

10 袁媛;let-7c介导c-Myc基因调控逆转肝癌细胞多药耐药的机制研究[D];兰州大学;2015年

相关硕士学位论文 前10条

1 王帅帅;Marc-145细胞中猪繁殖与呼吸综合症病毒粒子与胞外体的分离与鉴定[D];山西农业大学;2015年

2 杜文娟;NK-lysin通过Wnt/β-catenin信号通路抑制肝癌细胞侵袭与转移的研究[D];山西农业大学;2015年

3 张晓娇;天然抗氧化剂对乳腺癌MCF-7/ADM细胞的耐药逆转作用及机制研究[D];河北联合大学;2014年

4 吕超绍;重组人干扰素γ(rhIFN-γ)对白血病K562细胞免疫逃逸的影响[D];昆明理工大学;2015年

5 汪建阳;Ang-(1-7)通过G蛋白偶联受体Mas对人肝癌HepG2细胞的影响研究[D];广西医科大学;2015年

6 任志涛;小檗碱对TGF-β1诱导A549细胞上皮间质转化和MRC-5细胞转分化及细胞信号通路相关蛋白的影响[D];北京协和医学院;2015年

7 杨晓姗;重组人p66Shc腺病毒和赖氨藤黄酸盐对肿瘤细胞的抑制作用及机制[D];北京协和医学院;2015年

8 万爱英;大分割照射生物效应实测数据与LQ公式计算数据的比较研究[D];北京协和医学院;2015年

9 邢晓萌;白藜芦醇对肺癌A549细胞的放射增敏作用及其机制研究[D];北京协和医学院;2015年

10 曹曰针;胞外泛素对Treg细胞免疫抑制活性的影响[D];复旦大学;2014年



本文编号:1611737

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zlx/1611737.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户b6768***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com