RKIP在胃癌细胞中的作用及其机制的研究
本文选题:胃癌 切入点:RKIP 出处:《中国人民解放军医学院》2016年博士论文
【摘要】:第一部分RKIP通过microRNA-224调控抑制胃癌细胞增殖迁移,促进凋亡背景:胃癌的发病率居恶性肿瘤的第四位,死亡率居第二位,是最常见的恶性肿瘤之一。而胃癌患者的5年生存率并不高,要改变目前的状态,阐明其发病机制显得尤为重要。胃癌的发生与肠上皮化生、慢性萎缩性胃炎、不典型增生等癌前病变密切相关,涉及多种基因的异常。而miRNA在其过程中起重要作用,miRNA能在转录后水平调控各种关键基因。Raf激酶抑制蛋白(RKIP)是磷脂酰乙醇胺结合蛋白(PEBP)家族成员之一。RKIP能阻断MAPK信号传导通路的活性,抑制Raf-1介导的MEK的活化,进而抑制肿瘤细胞的增殖和转移,已成为肿瘤领域的一个新的热点。本研究检测RKIP在人胃癌细胞中的表达情况,和对胃癌细胞SGC-7901生物学特性的影响,并观察microRNA-224(miR-224)对靶基因RKIP表达调控作用,为胃癌治疗提供新的治疗方法和策略。方法:定量实时PCR检测RKIP在胃癌细胞系(SGC-7901、MGC80-3、MKN45)中的表达情况。构建RKIP真核表达载体pcDNA3.1-RKIP,并在SGC-7901细胞中转染pcDNA3.1-RKIP48h后,用Western blot检测SGC-7901细胞中RKIP蛋白表达变化;MTT检测RKIP过表达对SGC-7901细胞活力的影响。流式细胞仪分析RKIP过表达对SGC-7901细胞增殖、凋亡的影响。采用transwell侵袭小室实验方法检测RKIP过表达对SGC-7901细胞迁移的影响。利用荧光报告酶系统检验RKIP是miR-224调控靶基因,并采用Western blot方法检测miR-224对细胞中RKIP蛋白表达的影响。利用MTT,流式细胞仪和transwell侵袭小室检测miR-224对RKIP生物学特性的调控作用。结果:定量实时PCR显示:RKIP在胃癌细胞系较正常胃粘膜上皮细胞系中的表达呈下降趋势(p0.01).在SGC-7901中转染pcDNA3.1-RKIP 48h后,细胞中RKIP的表达与对照组相比显著上升(p0.01)。MTT,流式细胞仪和transwell侵袭小室检测结果显示:在SGC-7901细胞中过表达RKIP后,细胞凋亡数增加(p0.01),细胞活力和S期细胞比例下降(p0.05),穿过transwell小室的细胞数降低(p0.05)。荧光素酶报告基因系统的检测结果:与对照组相比,经转染miR-224 mimic组的荧光素酶活力显著降低(p0.05)。用Western blot检测的结果显示:与非转染组相比,SGC-7901转染miR-224 mimic48h后,细胞中RKIP蛋白的表达量显著下降(p0.05)。MTT,流式细胞仪和transwell侵袭小室检测结果显示:在SGC-7901中转染miR-224 mimic后,可抑制因过表达RKIP后导致的细胞生物学特性的改变。结论:RKIP在人胃癌细胞系表达下调,miR-224可负调节RKIP蛋白的表达,进而促进肿瘤的活性,RKIP可抑制胃癌细胞的增殖和侵袭。增强RKIP表达的治疗策略有望使胃癌患者受益。第二部分RKIP通过NF-KB/Snail信号通路促进顺铂诱导的胃癌细胞的死亡背景:胃癌化疗的有效率因化疗耐药而明显受限,多数研究者认为肿瘤细胞的凋亡程度是化疗疗效判定的重要指标,肿瘤细胞的凋亡与化疗药物的疗效呈时间、剂量的依赖关系。2013年Martinho O等研究报道了RKIP与子宫颈癌的顺铂化疗敏感性相关。顺铂是目前胃癌术后辅助化疗及术前新辅助化疗中最常用的药物之一,也是目前利用体外培养胃癌组织进行药敏实验的常用药物。研究表明顺铂可以通过结合DNA形成交联进而抑制DNA合成,抑制细胞分裂,最终诱导细胞凋亡,但肿瘤细胞耐药性的存在,极大地降低了顺铂的疗效。本研究通过检测RKIP在人胃癌细胞系SGC-7901中以及顺铂耐药的细胞株SGC-7901/DDP中表达的情况,探讨RKIP在胃癌细胞中对顺铂化疗敏感性的关系以及其作用的信号通路,为胃癌的治疗提供新的方法和策略。方法:分别体外培养人胃癌细胞系SGC-7901及顺铂的耐药细胞株SGC-7901/DDP,用Western blot检测RKIP蛋白在两种细胞中表达的情况。用转染RKIP siRNA的胃癌细胞SGC-7901,经培养48h后,Western blot检测转染后细胞中RKIP蛋白表达量的变化,用MTT检测经转染RKIP siRNA的胃癌细胞细胞活力的变化,以及用MTT和流式细胞仪检测RKIP的异位表达对顺铂诱导的耐药胃癌细胞活力和对细胞凋亡的影响。采用Western blot方法检测RKIP异位表达对顺铂诱导的胃癌细胞中NF-κB和Snail表达的影响。结果:Western blot检测结果表明:RKIP在顺铂耐药细胞株SGC-7901/DDP中的表达量较胃癌细胞SGC-7901明显下降(p0.05)。与对照组相比,在SGC-7901细胞中转染RKIP siRNA48h后,细胞中RKIP的表达显著下降(p0.01). MTT检测结果显示:在SGC-7901细胞中转染RKIP siRNA后,细胞活力明显上升(p0.05),在SGC-7901/DDP细胞中转染RKIP重组表达质粒后,细胞的活力明显下降(p0.05)。流式细胞仪和MTT的结果显示:胃癌细胞SGC-7901抑制RKIP表达后,即使在顺铂作用下,肿瘤细胞凋亡的数量明显减少(p0.05),细胞的活力也明显上升(p0.05);顺铂的耐药细胞株SGC-7901/DDP细胞过表达RKIP后,即使在顺铂作用下,细胞的凋亡也显著增加(p0.05),细胞的活力下降(p0.05)。Western blot检测结果显示:在SGC-7901细胞中,抑制RKIP的表达,可明显促进NF-κB表达的升高(p0.05);而在SGC-7901/DDP细胞中,促进RKIP的表达,可明显抑制Snail的表达(p0.05)。结论:RKIP蛋白在SGC-7901/DDP细胞株中表达下调,过表达RKIP可使胃癌细胞对顺铂的敏感性增强,其作用机制可能是通过NF-κB/Snail信号通路。第三部分RKIP通过调控1HMGA2和OPN的表达来抑制胃癌细胞的存活和迁移背景:高迁移率族蛋白A2(HMGA2),在多种恶性肿瘤中发挥重要作用。Sugiko等发现,在人类胰腺癌中,HMGA2是MEK的间接靶基因,可以与Snaill基因启动子区域结合,抑制E-cadherin的转录,从而促进了胰腺癌细胞上皮间质转化。我们前期的研究结果显示了,RKIP在人胃癌细胞系的表达下调,并可抑制胃癌细胞增殖和侵袭。关于RKIP抑制胃癌细胞增殖、侵袭和促进凋亡的机制,已有的研究显示,HMGA2是MEK的间接靶基因,由此推断,RKIP可能通过抑制MEK的活化来抑制HMGA2的生物学作用,从而发挥其抑制胃癌细胞增殖、侵袭和促进凋亡的生物学作用。本研究探讨RKIP抑制胃癌细胞存活,侵袭和促进凋亡的机制,为RKIP应用于胃癌治疗提供理论依据。方法:构建RKIP和HMGA2重组表达质粒pcDNA3.1-RKIP和pcDNA3.1-HMGA2,利用脂质体将重组质粒pcDNA3.1-RKIP或RKIP-shRNA转染进胃癌细胞系SGC-7901细胞中,实时定量PCR或Western blot检测RKIP在SGC-7901细胞中异位表达后,细胞中RKIP、HMGA2和OPN mRNA和蛋白表达变化。将重组质粒pcDNA3.1-HMGA2或HMGA2-shRNA转染进胃癌细胞系SGC-7901细胞后,Western blot检测HMGA2在SGC-7901细胞中表达变化。并利用流式细胞仪和transwell分析法检测,在胃癌细胞SGC-7901中异位表达HMGA2后,HMGA2对SGC-7901细胞的增殖、凋亡和侵袭的影响。为了进一步探讨RKIP对HMGA2生物活性的调控作用,在SGC-7901细胞中同时过表达RKIP和HMGA2,或同时干扰RKIP和HMGA2,并利用流式细胞仪和transwell分析法检测其对SGC-7901细胞增殖、凋亡和侵袭的影响。结果:实时定量PCR和Western blot检测结果显示:在SGC-7901细胞中转染pcDNA3.1-RKIP后,RKIP mRNA和蛋白表达显著增高(p0.01),而HMGA2和OPN mRNA和蛋白表达则显著降低p0.01);而在SGC-7901细胞中转染RKIP-shRNA后,结果则相反。在SGC-7901细胞中转染pcDNA3.1-HMGA2后,细胞中HMGA2蛋白表达显著增高(p0.01),而细胞中转染HMGA2-shRNA后,HMGA2蛋白表达显著降低(p0.01)。流式细胞仪和transwell分析结果显示:在SGC-7901细胞中,过表达HMGA2后,细胞(G2+S)比例[(G2+S) phase fraction]显著升高(p0.01),凋亡细胞比例明显降低(p0.05),侵袭细胞数明显增多(p0.05);而干扰HMGA2表达后,以上结果则相反。在SGC-7901细胞中同时过表达RKIP和HMGA2,或同时干扰RKIP和HMGA2,同时过表达或同时干扰组的细胞(G2+S)比例、凋亡细胞比例和侵袭细胞数,与对照组相比,差异不显著(p0.05)。结论:RKIP可能通过其调节HMGA2或OPN的表达抑制胃癌细胞的生物学活性。
[Abstract]:......
【学位授予单位】:中国人民解放军医学院
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R735.2
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 于成功,李敏,莫剑忠,萧树东;胃癌细胞垂体腺苷环化酶激活肽相关受体分析[J];胃肠病学;2000年02期
2 薛英威,耿敬姝,刘晓民,刘立人,高小敏,陈国林,张岂凡,赵家宏;胃癌细胞的流式分析及临床意义[J];肿瘤防治研究;2000年03期
3 陈坚,林庚金,钱立平,程建,施冬云,张亚东,刘珊林;内源性活性氧水平及锰型超氧化物歧化酶的表达与胃癌细胞分化、增殖相关[J];生物物理学报;2003年02期
4 李莹,药立波,韩炯,王立峰,韩月恒,刘新平,林树新,俞强;胃癌细胞抗脱落凋亡的分子机制[J];医学分子生物学杂志;2004年02期
5 罗和生,王维,包鹏辉,张翼;核因子-κB活性增强参与胃癌细胞长春新碱耐药[J];中华消化杂志;2004年08期
6 刘冀红,曹伟新,纪玉宝,张轶,刘炳亚,朱正纲,燕敏,林言箴;右旋甲硫氨酸对胃癌细胞作用初探[J];肠外与肠内营养;2005年01期
7 齐元玲;于皆平;刘启胜;邓全军;曹俊;于红刚;;抑癌基因PTEN在胃癌细胞中的表达及意义[J];广东医学;2006年03期
8 何必立;吕宾;徐毅;苗青;范一宏;;温郁金对胃癌细胞的抑制作用及其对血管内皮生长因子表达的影响[J];中医药学刊;2006年09期
9 郭强;李荣;李庆芳;夏绍友;杜晓辉;王立生;;高表达鞘氨醇激酶对胃癌细胞生物学特性的影响[J];解放军医学杂志;2006年12期
10 陈先来;肖晓旦;杨荣;刘建平;;基于误差反向传播神经网络的胃癌细胞识别研究[J];中国循证医学杂志;2007年09期
相关会议论文 前10条
1 韩霜;雷婷;韩者艺;刘杰;郭雪艳;丁睿;吴开春;丁杰;樊代明;;分化抑制因子1对胃癌细胞恶性生物学行为的影响[A];中华医学会第七次全国消化病学术会议论文汇编(下册)[C];2007年
2 陈韶华;吴灵娇;吴鸿儒;吴雅春;厉有名;;低浓度酒精对胃癌细胞活性及周期抑制[A];中华医学会第12次全国内科学术会议论文汇编[C];2009年
3 陈韶华;吴灵娇;吴鸿儒;吴雅春;厉有名;;低浓度酒精对胃癌细胞活性及周期抑制[A];第二届浙江省消化病学术大会论文汇编[C];2009年
4 李娜;郭瑞芳;李文梅;邵建敏;汪浩;赵康;李书婷;王敬强;王融;徐宁志;刘斯奇;吕有勇;;大蒜素处理在胃癌细胞中引发的蛋白质表达响应[A];中国蛋白质组学第二届学术大会论文摘要论文集[C];2004年
5 ;多西紫杉醇对胃癌细胞作用及其机制的研究[A];第四届中国肿瘤大会中国药理学会肿瘤药理专业委员会分会场学术会议论文摘要[C];2006年
6 楼俪泓;;15-羟基前列腺素脱氢酶对胃癌细胞周期影响的试验研究[A];中华医学会第七次全国消化病学术会议论文汇编(下册)[C];2007年
7 朗玮;;中药方剂1号对胃癌细胞体外生长及细胞粘附分子的影响[A];浙江省中西医结合学会消化专业第八次学术年会暨省中西医结合消化系疾病新进展学习班论文汇编[C];2007年
8 巩龙静;马君;周涵婧;郑荣儿;;胃癌细胞的表面增强拉曼光谱研究[A];中国光学学会2011年学术大会摘要集[C];2011年
9 谢少茹;沈洪;赵崧;张国新;郝波;刘增巍;施瑞华;;黄芪多糖对胃癌细胞的抑制作用及其机制[A];中华中医药学会脾胃病分会第十九次全国脾胃病学术交流会论文汇编[C];2007年
10 刘文超;任军;张学庸;刘智广;张晓楠;;防御素对胃癌细胞杀伤的体外实验研究[A];2000全国肿瘤学术大会论文集[C];2000年
相关重要报纸文章 前8条
1 记者 陆叶清;发现抑制胃癌细胞的重要基因[N];上海科技报;2010年
2 衣晓峰 乔蕤琳 记者 赵宇清;抑制胃癌细胞生长研究有新发现[N];黑龙江日报;2010年
3 记者 衣晓峰 通讯员 乔蕤琳;维生素E衍生物能抑制胃癌细胞生长[N];健康报;2010年
4 王振岭;我国抑制胃癌细胞生长研究有重要发现[N];中国医药报;2002年
5 王振岭;抗癌药抑制胃癌细胞生长研究获重要发现[N];中国中医药报;2002年
6 王振岭;7种抗癌药体外抑制胃癌细胞的研究有新发现[N];医药经济报;2002年
7 张中桥;胃癌细胞MDR机制研究取得新进展[N];中国医药报;2007年
8 吴一福 苏玉军;白藜芦醇可诱导胃癌细胞脱落凋亡[N];中国医药报;2005年
相关博士学位论文 前10条
1 李双玲;IGF-1通过抑制Fox01核保留促进胃癌细胞生长机制的研究[D];山东大学;2015年
2 胡伟国;肿瘤相关成纤维细胞中Thy-1激活诱导上皮间质转化促进胃癌细胞侵袭转移的研究[D];上海交通大学;2014年
3 周韵斓;应激条件下胃癌细胞高表达线粒体活性氧和前梯度蛋白2促进肿瘤进展的研究[D];上海交通大学;2014年
4 徐同鹏;SP1诱导的长非编码RNA TINCR通过调控KLF2 mRNA稳定性影响胃癌细胞的增殖与凋亡[D];南京医科大学;2015年
5 王畅;miR-34a通过miR-34a-c-myc/Bmi-1负反馈通路负调控胃癌干细胞样特性[D];复旦大学;2014年
6 罗贯虹;MGr1-Ag/37LRP参与PrP~C介导的胃癌细胞多药耐药[D];第四军医大学;2014年
7 默董亮;人类解旋酶RecQL4调控胃癌细胞耐药性分子机制研究[D];中国科学院北京基因组研究所;2016年
8 刘皎婧;PI3K/Akt/GSK3β/p190ARhoGAP/RhoA信号通路在Wnt5a诱导胃癌细胞迁移中作用的研究[D];南京医科大学;2014年
9 Muhammad Kamran(卡姆拉);[D];大连医科大学;2015年
10 王瑛;PKGⅡ对LPA诱导的胃癌细胞徖移及RhoA和Rac1激活的影响[D];江苏大学;2015年
相关硕士学位论文 前10条
1 蔡洙哲;p12-LOX对胃癌细胞MKN-28的增殖和迁移的影响[D];延边大学;2015年
2 李龙;Her-2高表达对胃癌细胞侵袭、迁移的影响[D];长江大学;2015年
3 李亚;新加良附方抑制人胃癌细胞增殖的分子机制研究[D];北京中医药大学;2016年
4 陈璐;螺旋流道惯性迁移力芯片分选模拟血液中胃癌细胞的实验研究[D];东南大学;2015年
5 黄辞;MS-275对MKN-45细胞作用机制的研究[D];第四军医大学;2014年
6 李正凯;miR-200c对胃癌细胞的影响及其在耐药性与上皮间质转化(EMT)间的研究[D];兰州大学;2016年
7 陈康;IL-6通过AKT信号通路促进胃癌细胞的侵袭和增殖[D];兰州大学;2016年
8 孙月;双酚A对胃癌细胞生长及侵袭影响的研究[D];兰州大学;2016年
9 赵英海;内质网应激介导的自噬和凋亡在重组新城疫病毒rL-RVG引起人胃癌细胞死亡中的作用[D];江苏大学;2016年
10 胡小霞;URI促进胃癌细胞阿霉素耐药性和细胞迁移[D];江苏大学;2016年
,本文编号:1709378
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zlx/1709378.html