MY06在肝癌细胞增殖及侵袭转移中的作用及机制研究
【图文】:
图 1 细胞内信号通路检测试剂盒抗体列阵4.2 蛋白电泳(Western blot)法①蛋白提取及样品制备各种处理的细胞待孵育结束后细胞刮刀刮下细胞,2000 rpm离心5 min收集细胞。预冷的 PBS 重悬洗涤细胞后 2000 rpm 离心 5 min,重复两次后弃 PBS,根据沉淀细胞的量加入相应体积的细胞裂解液,吹打混匀,冰浴 15 min 后用超声波细胞破碎仪在冰浴中短暂多次超声细胞,直至裂解液不粘稠。4 ℃ 12000 rpm离心 10 min,吸取上清。采用 BCA 蛋白定量试剂盒测定以上所提取蛋白的浓度,调整上样量使各组蛋白终浓度一致,在样品中按 4:1 加入 5 x 上样缓冲液,100℃煮沸 5 min 使蛋白质变性,样品经变性后可直接跑电泳或储存于-80℃冰箱待用。② SDS-PAGE 凝胶电泳1) 将玻璃板洗净后无水乙醇冲洗晾干,按长板对短板安装于架子上;
图 2 A 为 Transwell 迁移模型;B 为 Transwell 侵袭模型① Transwell 迁移实验(如图 2 A):(1) HepG2 细胞培养及慢病毒感染步骤同前。转染前 HepG2 细胞分组情况如下:Control 组,Lv-shCon 组,Lv-shMYO6 组。(2) 从培养箱中取出 6 孔板,放入超净工作台,吸弃上清液,用 PBS 液清洗 2-3次,每孔加入 0.5ml 的 0.25%胰蛋白酶,静置 1-2 min,在倒置显微镜下观察细胞形态逐渐变圆时,弃胰蛋白酶,分别加入 1ml 含 10%胎牛血清的完全培养基终止消化,,然后用移液枪反复地轻轻吹打,使贴壁细胞成单细胞悬液,移入1.5mlEp 管中,1500rpm×5min 离心,弃去培养液,加 1mL PBS 重悬,1500rpm×5min 离心后,去上清液,再用含 0.2%BSA 的无血清培养基重悬细胞。(3) 细胞计数:用移液管将细胞重悬液轻轻吹打均匀,吸取细胞悬液滴入细胞计数
【学位授予单位】:苏州大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R735.7
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本文编号:2518964
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