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骨髓间充质干细胞对低转移肝癌细胞的影响

发布时间:2020-01-28 17:59
【摘要】:目的:观察人骨髓间充质干细胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)对植入低转移肝癌细胞动物模型生长的影响情况以及对转移潜能和凋亡趋势的影响。方法:制作人低转移肝癌细胞MHCC97-L动物模型,将动物随机分为模型实验组、对照组。实验组在接种肿瘤后第7 d开始尾静脉注射BMSCs 5×105/只,模型对照组相同时间尾静脉注射BMSCs培养液0.2 m L/只。于实验开始后每周用卡尺测一次皮下肿瘤体积,分别于肿瘤接种后第14d(2周)、21 d(3周)、28 d(4周)、35 d(5周)、42 d(6周)处死动物,完整剖取瘤块并称瘤重和体积,计算肿瘤抑制率。Real-time PCR法检测低转移肝癌动物模型标本中转移相关因子骨桥蛋白(osteopontin,OPN)、骨唾液蛋白(bone salivary protein,BSP)、整合素(integrinαⅤ)基因以及凋亡相关因子Bcl-2、Bax、caspase3基因的表达。结果:骨髓间充质干细胞对肿瘤重量和体积的抑制作用在第3周具有统计学意义,实验组肿瘤重量显著低于对照组。骨髓间充质干细胞对肿瘤的抑制作用在第2、3、5、6周均具有统计学意义,实验组肿瘤体积显著低于对照组。实验组肿瘤转移相关因子表达均低于对照组,骨髓间充质干细胞干预后肿瘤促凋亡因子Bax、caspase3的表达呈升高趋势,抗凋亡因子Bcl-2的表达逐渐下降。结论:骨髓间充质干细胞对低转移肝癌细胞MHCC97-L的生长具有抑制作用,且第3周时抑制效果最好,随着时间的延长,肿瘤抑制率逐渐下降。
【图文】:

相关性分析,抑制率


嗵4婷鞒⊥枷瘢囝鄓馔枷癫?用软件进行荧光强度分析。观察BMSCs与肝癌组织细胞融合图像发现BMSCs进入肿瘤组织。图中肿瘤组织细胞呈绿色,BMSCs细胞呈蓝色(图5)。图1肿瘤重量抑制率与转移因子相关性分析Figure1Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandtransferfactor图2肿瘤重量抑制率与凋亡因子相关性分析Figure2Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandapop-tosisfactor图3肿瘤体积抑制率与转移因子相关性分析Figure3Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandtransferfactor图4肿瘤体积抑制率与凋亡因子相关性分析Figure4Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandapoptosisfactor图5BMSCs对肝癌(MHCC97-H)干预情况的病理切片荧光成像(fluorescencestaining×200)Figure5Effectofbonemarrowmesenchymalstemcellsonlivercan-cer(MHCC97-L)detectedbyfluorescenceimaging(GFPlabelthetumorcellsingreencolor,Ex,488nm;Em,543nm;DAPImarktheBMSCsinblue,Ex,358nm;Em,461nm)(×200)3讨论手术切除仍为HCC治疗的首选方法,但经手术切除治疗后的患者仍具有较高的术后复发率和转移率[7]。开辟新疗法成为了肝癌研究领域的重要任务。1974年首次从骨髓中分离获得BMSCs[8],其具有对炎症和肿瘤发生位点的趋向性[9],容易在体外培养进行繁殖并维持自我更新能力,集中向炎症组织和重塑组织迁移,具有较低的免疫原性和抗感染特性[10],有助于器官和组织的快速修复,抑制免疫反应和抗肝纤维化。BMSCs抑制MHCC97-L动物模型肿瘤增长的作用机制可能通过以下途径进行。OPN通过结合其受体整合素αvβ3促进肝癌细胞株HepG膜型CD44v6表达,而CD44v6与透明质酸结合促

肝癌,病理切片,情况,相关性分析


鲎橹?细胞呈绿色,,BMSCs细胞呈蓝色(图5)。图1肿瘤重量抑制率与转移因子相关性分析Figure1Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandtransferfactor图2肿瘤重量抑制率与凋亡因子相关性分析Figure2Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandapop-tosisfactor图3肿瘤体积抑制率与转移因子相关性分析Figure3Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandtransferfactor图4肿瘤体积抑制率与凋亡因子相关性分析Figure4Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandapoptosisfactor图5BMSCs对肝癌(MHCC97-H)干预情况的病理切片荧光成像(fluorescencestaining×200)Figure5Effectofbonemarrowmesenchymalstemcellsonlivercan-cer(MHCC97-L)detectedbyfluorescenceimaging(GFPlabelthetumorcellsingreencolor,Ex,488nm;Em,543nm;DAPImarktheBMSCsinblue,Ex,358nm;Em,461nm)(×200)3讨论手术切除仍为HCC治疗的首选方法,但经手术切除治疗后的患者仍具有较高的术后复发率和转移率[7]。开辟新疗法成为了肝癌研究领域的重要任务。1974年首次从骨髓中分离获得BMSCs[8],其具有对炎症和肿瘤发生位点的趋向性[9],容易在体外培养进行繁殖并维持自我更新能力,集中向炎症组织和重塑组织迁移,具有较低的免疫原性和抗感染特性[10],有助于器官和组织的快速修复,抑制免疫反应和抗肝纤维化。BMSCs抑制MHCC97-L动物模型肿瘤增长的作用机制可能通过以下途径进行。OPN通过结合其受体整合素αvβ3促进肝癌细胞株HepG膜型CD44v6表达,而CD44v6与透明质酸结合促进肝癌转移,BMSCs通过抑制OPN与IntegrinαⅤ的表达来阻止肝癌的增长与转移。Bax与Bcl-2基因是目前在凋亡调控中研究

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