骨髓间充质干细胞对低转移肝癌细胞的影响
【图文】:
嗵4婷鞒⊥枷瘢囝鄓馔枷癫?用软件进行荧光强度分析。观察BMSCs与肝癌组织细胞融合图像发现BMSCs进入肿瘤组织。图中肿瘤组织细胞呈绿色,BMSCs细胞呈蓝色(图5)。图1肿瘤重量抑制率与转移因子相关性分析Figure1Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandtransferfactor图2肿瘤重量抑制率与凋亡因子相关性分析Figure2Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandapop-tosisfactor图3肿瘤体积抑制率与转移因子相关性分析Figure3Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandtransferfactor图4肿瘤体积抑制率与凋亡因子相关性分析Figure4Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandapoptosisfactor图5BMSCs对肝癌(MHCC97-H)干预情况的病理切片荧光成像(fluorescencestaining×200)Figure5Effectofbonemarrowmesenchymalstemcellsonlivercan-cer(MHCC97-L)detectedbyfluorescenceimaging(GFPlabelthetumorcellsingreencolor,Ex,488nm;Em,543nm;DAPImarktheBMSCsinblue,Ex,358nm;Em,461nm)(×200)3讨论手术切除仍为HCC治疗的首选方法,但经手术切除治疗后的患者仍具有较高的术后复发率和转移率[7]。开辟新疗法成为了肝癌研究领域的重要任务。1974年首次从骨髓中分离获得BMSCs[8],其具有对炎症和肿瘤发生位点的趋向性[9],容易在体外培养进行繁殖并维持自我更新能力,集中向炎症组织和重塑组织迁移,具有较低的免疫原性和抗感染特性[10],有助于器官和组织的快速修复,抑制免疫反应和抗肝纤维化。BMSCs抑制MHCC97-L动物模型肿瘤增长的作用机制可能通过以下途径进行。OPN通过结合其受体整合素αvβ3促进肝癌细胞株HepG膜型CD44v6表达,而CD44v6与透明质酸结合促
鲎橹?细胞呈绿色,,BMSCs细胞呈蓝色(图5)。图1肿瘤重量抑制率与转移因子相关性分析Figure1Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandtransferfactor图2肿瘤重量抑制率与凋亡因子相关性分析Figure2Correlationanalysisoftumorweightinhibitionrateandapop-tosisfactor图3肿瘤体积抑制率与转移因子相关性分析Figure3Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandtransferfactor图4肿瘤体积抑制率与凋亡因子相关性分析Figure4Correlationanalysisoftumorvolumeinhibitionrateandapoptosisfactor图5BMSCs对肝癌(MHCC97-H)干预情况的病理切片荧光成像(fluorescencestaining×200)Figure5Effectofbonemarrowmesenchymalstemcellsonlivercan-cer(MHCC97-L)detectedbyfluorescenceimaging(GFPlabelthetumorcellsingreencolor,Ex,488nm;Em,543nm;DAPImarktheBMSCsinblue,Ex,358nm;Em,461nm)(×200)3讨论手术切除仍为HCC治疗的首选方法,但经手术切除治疗后的患者仍具有较高的术后复发率和转移率[7]。开辟新疗法成为了肝癌研究领域的重要任务。1974年首次从骨髓中分离获得BMSCs[8],其具有对炎症和肿瘤发生位点的趋向性[9],容易在体外培养进行繁殖并维持自我更新能力,集中向炎症组织和重塑组织迁移,具有较低的免疫原性和抗感染特性[10],有助于器官和组织的快速修复,抑制免疫反应和抗肝纤维化。BMSCs抑制MHCC97-L动物模型肿瘤增长的作用机制可能通过以下途径进行。OPN通过结合其受体整合素αvβ3促进肝癌细胞株HepG膜型CD44v6表达,而CD44v6与透明质酸结合促进肝癌转移,BMSCs通过抑制OPN与IntegrinαⅤ的表达来阻止肝癌的增长与转移。Bax与Bcl-2基因是目前在凋亡调控中研究
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