上调ALDH2活性抑制肝癌细胞增殖的作用机制研究
发布时间:2021-02-09 05:49
背景和目的根据GLOBOCAN 2018统计数据,目前全球范围内癌症发病率和死亡率依然处于迅速增长阶段。无论是从发病率还是死亡率来看,肝癌都高居榜首,分别达到84万人、78万人。肝癌的发生和众多因素有关,包括乙型肝炎,丙型肝炎,酒精滥用等。众所周知,乙醇已被归类为致癌物质,其代谢产物乙醛是一种极具危险性物质。在乙醛代谢过程中,乙醛脱氢酶2(ALDH2)发挥着重要的作用。它能够将乙醛代谢为乙酸盐,乙酸盐经肠道排出体外,从而消除乙醛的毒性作用。rs671是ALDH2中最常见的突变位点,rs671位点的突变可以显著降低ALDH2的活性,从而减弱其代谢酒精的能力。其突变类型又细分为ALDH2杂合突变(ALDH2*1/*2)和纯合突变类型(ALDH2*2/*2),分别使其酶活降低至45%和5%。根据现有报道,ALDH2基因突变和肝细胞癌(Hepatocellular carcinoma cell,HCC)关系仍存在争议。慢性重度饮酒是导致HCC发病的最重要的环境因素之一。而ALDH2基因的突变与环境风险因素相互作用后,能够明显增加HCC的发病。据报道,ALDH2基因在东亚人群中的突变率较高。但是...
【文章来源】:郑州大学河南省 211工程院校
【文章页数】:86 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图3.1.1?ALDH2在正常肝组织中的表达情况
487Lys)???KTumar(no.muta)??.■s?I?■?Tumor(no-muta)?^?I?圈?Tumo『{Glu487Lys}??■?l??G??F?i5〇1?r^z:——??一?u〇i???■?Normal?之?????120J?丁?Tumortno-muta)?^?100<??.^i〇〇?|?■TumortGlu487Lys)?f??il-B??〇i—??■?-i?■?-?Control?Huh-1?HepG2??图3.1.2?:?ALDH2在肝癌组织和细胞中呈现出低表达和低酶活性。A-B.组织芯片检测??ALDH2蛋白表达情况。C-D.?Western?blot检测正常肝组织,ALDH2野生型肝癌组织和??ALDH2*2肝癌组织中ALDH2蛋白表达情况。E.?RT-PCR检测这三组中ALDH2?mRNA??水平。F.ALDH2试剂盒检测这三组标本中ALDH2酶活力情况。GALDH2试剂盒检??测肝癌细胞中ALDH2酶活性的表达(V?<0.05,?**尸<0.01,***尸<0.001?)。??3.1.3?ALDH2抑制肝癌细胞的增殖能力和克隆形成能力。??为了确定ALDH2对肝癌细胞的影响,我们运用基因编辑的技术成功构??建了稳定的ALDH2表达细胞株和ALDH2点突变细胞株(如图3.1.3.1A)。??接下来,我们进一步检测了?ALDH2酶活性,结果显示,过表达的ALDH2??细胞株ALDH2活性明显增强,对于ALDH2点突变的细胞株,ALDH2的活??性相对于过表达的细胞株明显减低(如图3.1.3.1B)。接下来,我们检测了??ALDH2对肝癌细胞
?实验结果???E?1401?I???1?酬?Mock????1?£?120-?_L_?ALDH2??l?100??HepG2?丁??p?i:H???,,?-MOCK???I?一120?丁?ALDH2(Glu487Lys)??-|3100-?BIALDH2??Huh-1?■si80?t??L——II?II?!!!:■_.??Mock?ALDH2(Glu487Lys)?ALDH2?J??图3.1.3.1?:过表达ALDH2对肝癌细胞增殖的影响。A.?Western?blot鉴定HepG2和??Huh-1细胞系的ALDH2过表达和点突变后稳定细胞株ALDH2的表达。B.?ALDH2过??表达和点突变后ALDH2酶活力的检测。C.?MTT检测过表达ALDH2后对肝癌细胞生??长存活的影响。D.平板克隆实验检测过表达ALDH2过表达后对细胞生长增殖的影响。??E.软琼脂克隆实验检测过表达基因后对肝癌细胞集落形成能力和增殖能力的影响??(*p<0.05;?**p<0.01;?***/?<0.001?)。??A?B??,S9RNA??/?\?^?\?Mock?#1?#2?M??[r?^?V)?_2瞻_…'??、?j?M^ctln?????C?D??HepG2?HepG2???t??0.8i??150-1??j??IHMock?”?+?Mock??1?H?-S9#1?I0-6'?A?::??I?1〇°'?m?l?f?^?ALDH2??IJ?;v??〇J-^H????OH?24H?48H?72H??图3.1.3.2?:敲除ALDH2
【参考文献】:
期刊论文
[1]p53和γ-H2AX作为乙醛引起DNA损伤早期生物标记物的实验研究[J]. 周学贤,Penny Jones,Paul Carmichael,郝卫东. 癌变.畸变.突变. 2014(02)
本文编号:3025154
【文章来源】:郑州大学河南省 211工程院校
【文章页数】:86 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图3.1.1?ALDH2在正常肝组织中的表达情况
487Lys)???KTumar(no.muta)??.■s?I?■?Tumor(no-muta)?^?I?圈?Tumo『{Glu487Lys}??■?l??G??F?i5〇1?r^z:——??一?u〇i???■?Normal?之?????120J?丁?Tumortno-muta)?^?100<??.^i〇〇?|?■TumortGlu487Lys)?f??il-B??〇i—??■?-i?■?-?Control?Huh-1?HepG2??图3.1.2?:?ALDH2在肝癌组织和细胞中呈现出低表达和低酶活性。A-B.组织芯片检测??ALDH2蛋白表达情况。C-D.?Western?blot检测正常肝组织,ALDH2野生型肝癌组织和??ALDH2*2肝癌组织中ALDH2蛋白表达情况。E.?RT-PCR检测这三组中ALDH2?mRNA??水平。F.ALDH2试剂盒检测这三组标本中ALDH2酶活力情况。GALDH2试剂盒检??测肝癌细胞中ALDH2酶活性的表达(V?<0.05,?**尸<0.01,***尸<0.001?)。??3.1.3?ALDH2抑制肝癌细胞的增殖能力和克隆形成能力。??为了确定ALDH2对肝癌细胞的影响,我们运用基因编辑的技术成功构??建了稳定的ALDH2表达细胞株和ALDH2点突变细胞株(如图3.1.3.1A)。??接下来,我们进一步检测了?ALDH2酶活性,结果显示,过表达的ALDH2??细胞株ALDH2活性明显增强,对于ALDH2点突变的细胞株,ALDH2的活??性相对于过表达的细胞株明显减低(如图3.1.3.1B)。接下来,我们检测了??ALDH2对肝癌细胞
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【参考文献】:
期刊论文
[1]p53和γ-H2AX作为乙醛引起DNA损伤早期生物标记物的实验研究[J]. 周学贤,Penny Jones,Paul Carmichael,郝卫东. 癌变.畸变.突变. 2014(02)
本文编号:3025154
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