两种肺腺癌移植瘤放射后残留细胞生长、凋亡及干细胞变化的比较性研究
发布时间：2021-06-27 09:54
[目的]建立普通肺腺癌A549细胞和云南宣威女性肺腺癌XWLC-05细胞裸鼠皮下移植瘤和放射后残余瘤模型,通过体内实验探究两种肺腺癌放射后残余瘤组织细胞生长、凋亡、周期分布和肿瘤干细胞变化,研究比较两种肺腺癌放射后残留细胞生物学行为的改变和差异。[方法]将A549细胞和XWLC-05细胞种植于3-4周鼠龄的BALB/C-nu裸鼠左腋下构建移植瘤模型,待肿瘤体积至1cm3后对肿瘤组织进行20Gy的局部单次剂量X线放射,待放射后的残存肿瘤组织体积缩小至一定大小体积时,取残存肿瘤组织块重新种植于3-4周鼠龄的BALB/C-nu裸鼠左腋皮下构建移植性残余瘤模型。定期监测肿瘤体积变化,绘制移植瘤生长曲线;分别于残余肿瘤组织生长至0.5cm3后0天、7天、14天、21天、28天处死裸鼠取移植瘤组织,HE染色观察移植瘤组织形态变化,流式检测细胞凋亡、细胞周期分布和CD44和CD133标记的肿瘤干细胞比例。比较各组之间的变化和差异。[结果]1.经HE肿瘤组织染色后显微镜下观察组织形态符合肿瘤细胞镜下特点。放射后残余瘤内的细胞间质较放射前移植瘤明显增加,且残余瘤内的细胞间质随时间逐渐增加。2.两种肺腺癌...
【文章来源】：昆明医科大学云南省
【文章页数】：55 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
图１裸鼠左腋皮下ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤模型??（移植瘤及残余瘤模型建立成功）??
织生长情况并按计划处死。肉眼可见裸鼠左腋下移植瘤包括残余瘤一开始都有明??显凸起，随时间增加，可逐渐触及质軔的瘤核，后肿瘤组织体积逐渐长大，时间??不同剥离下来的肿瘤组织大小不同（见图卜图２）。??取成瘤组、照射组、残余瘤成瘤后０天、７天、１４天、２１天、２８天的裸鼠??处死后剥离肿瘤组织进行固定、包埋等，制备石蜡切片，进行ＨＥ染色，镜下观??察肿瘤组织结构和细胞形态。镜下可见细胞核增大深染、胞质染色加深、核质比??增加、细胞极性不明显、分裂相增多，符合肿瘤细胞镜下特点。放射后残余瘤内??的细胞间质较放射前移植瘤明显增加，可见增粗粉染的胶原纤维，且残余瘤内的??细胞间质随时间逐渐增加。ＸＷＬＣ－０５裸鼠移植瘤成瘤组较Ａ５４９裸鼠移植瘤成??瘤组细胞间质差异不大；放射后残余瘤中ＸＷＬＣ－０５较Ａ５４９细胞组胶原组增多??（图?３）。??ｌｌｌｌｌｌｉ??Ａ５４９成瘤组?Ａ５４９照射组?Ａ５４９残余瘤成Ａ５４９残余搢成Ａ５４９残余瘤成Ａ５４９残余瘤成Ａ５４９残余瘤成??擂０天组?瘤７天组?瘤１４天组?瘤２１天组?瘤２８天组??國＿補１＿??ＸＷＬＣ?＞０５?成瘤组?ＸＷＬＣ－０５?照射?ＸＷＬＣ－０５?残余?ＸＷＬＣ＊０５?残余?ＸＷＬＣ－０５?残余?ＸＷＬＣ－０５?残余?ＸＷＬＣ＊０５?残余??组?瘤成瘤０天组?瘤成瘤７天组瘤成搢１４天组瘤成瘤２１
取成瘤组、照射组、残余瘤成瘤后０天、７天、１４天、２１天、２８天的裸鼠处死??后剥离肿瘤组织，秤取肿瘤组织重量，绘制ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余??瘤模型不同时间点重量图（图４），ＸＷＬＣ－０５裸鼠移植瘤和Ａ５４９裸鼠移植瘤重量??随时间逐渐增加，放射后较放疗前减小；残余瘤质量随时间重量逐渐增加；经独??立样本Ｔ检验可以发现，ＸＷＬＣ－０５及Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量无明显差异??（表?１）。??４１?画Ａ５４９细胞??ＥＤ?ＸＷＬＣ－０５?细胞??ｓ２＇?｜｜?Ｉ?圖ｎ?＿ｒ??Ｊｉｌｌ?ａｊｕｎｊｌｌｌｌｌｊｊ??＂／／／／／??图４?ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量??（同组别ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量差异不具有统计学意义）??表１?ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量变化??成瘤组?照射组?残余瘤成残余瘤成残余瘤成残
【参考文献】：
期刊论文
[1]Research on human glioma stem cells in China[J]. Yao-dong Zhao,Quan-bin Zhang,Hua Chen,Xi-feng Fei,Yun-tian Shen,Xiao-yan Ji,Jia-wei Ma,Ai-dong Wang,Jun Dong,Qing Lan,Qiang Huang. Neural Regeneration Research. 2017(11)
[2]X线辐射对A549肺腺癌细胞周期和增殖的影响[J]. 王溪,佟志敏,胡媛媛,金鹏,李宁,李诗扬,崔营营,张红梅. 中国实验诊断学. 2017(10)
[3]肺癌肿瘤干细胞表面标志物的研究[J]. 于鸿. 中国组织工程研究. 2012(36)
[4]PI3K/AKT通路在肺癌转移和耐药中的研究[J]. 祝冰晶,周向东. 中国肺癌杂志. 2011(08)
[5]宣威肺腺癌xwlc-05和肺腺癌A549细胞株体外培养细胞活力的比较研究[J]. 张云辉,谭燕,袁兵,王盛兰,赵珊,王廷华. 昆明医学院学报. 2011(07)
[6]PI3K/Akt/mTOR信号转导通路与非小细胞肺癌[J]. 祁慧薇,范理宏. 中国肺癌杂志. 2010(12)
[7]X射线对人肺腺癌细胞及其耐药细胞株的影响[J]. 任尧尧,张鹏,曹永珍,马力,周清华. 生物医学工程与临床. 2009(02)
博士论文
[1]MET-PI3K-Akt信号通路介导miRNA-31调控肺腺癌肿瘤干细胞功能[D]. 侯春英.北京协和医学院 2016
硕士论文
[1]两种肺腺癌细胞体外放射后残留细胞增殖迁移及干细胞变化的比较性研究[D]. 杜小双.昆明医科大学 2017
[2]循环中Hsa-miR-9、Hsa-miR-21、Hsa-miR-501的表达水平与非小细胞肺癌的相关性研究[D]. 陈凯.昆明医科大学 2017
[3]新一代测序技术对宣威肺癌全基因组和全外显子组的研究[D]. 王潇.昆明医科大学 2015
[4]宣威肺腺癌患者放疗前后免疫功能的变化[D]. 李国苗.昆明医科大学 2013
[5]PI3K/AKT通路及DNA损伤修复对XWLC-05与A549肺腺癌细胞放射敏感性影响的研究[D]. 李田芊.昆明医科大学 2012
[6]宣威肺腺癌XWLC-05细胞和A549细胞放射敏感性与细胞周期分布及凋亡的相关性研究[D]. 于书慧.昆明医科大学 2012
本文编号：3252628
【文章来源】：昆明医科大学云南省
【文章页数】：55 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
图１裸鼠左腋皮下ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤模型??（移植瘤及残余瘤模型建立成功）??
织生长情况并按计划处死。肉眼可见裸鼠左腋下移植瘤包括残余瘤一开始都有明??显凸起，随时间增加，可逐渐触及质軔的瘤核，后肿瘤组织体积逐渐长大，时间??不同剥离下来的肿瘤组织大小不同（见图卜图２）。??取成瘤组、照射组、残余瘤成瘤后０天、７天、１４天、２１天、２８天的裸鼠??处死后剥离肿瘤组织进行固定、包埋等，制备石蜡切片，进行ＨＥ染色，镜下观??察肿瘤组织结构和细胞形态。镜下可见细胞核增大深染、胞质染色加深、核质比??增加、细胞极性不明显、分裂相增多，符合肿瘤细胞镜下特点。放射后残余瘤内??的细胞间质较放射前移植瘤明显增加，可见增粗粉染的胶原纤维，且残余瘤内的??细胞间质随时间逐渐增加。ＸＷＬＣ－０５裸鼠移植瘤成瘤组较Ａ５４９裸鼠移植瘤成??瘤组细胞间质差异不大；放射后残余瘤中ＸＷＬＣ－０５较Ａ５４９细胞组胶原组增多??（图?３）。??ｌｌｌｌｌｌｉ??Ａ５４９成瘤组?Ａ５４９照射组?Ａ５４９残余瘤成Ａ５４９残余搢成Ａ５４９残余瘤成Ａ５４９残余瘤成Ａ５４９残余瘤成??擂０天组?瘤７天组?瘤１４天组?瘤２１天组?瘤２８天组??國＿補１＿??ＸＷＬＣ?＞０５?成瘤组?ＸＷＬＣ－０５?照射?ＸＷＬＣ－０５?残余?ＸＷＬＣ＊０５?残余?ＸＷＬＣ－０５?残余?ＸＷＬＣ－０５?残余?ＸＷＬＣ＊０５?残余??组?瘤成瘤０天组?瘤成瘤７天组瘤成搢１４天组瘤成瘤２１
取成瘤组、照射组、残余瘤成瘤后０天、７天、１４天、２１天、２８天的裸鼠处死??后剥离肿瘤组织，秤取肿瘤组织重量，绘制ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余??瘤模型不同时间点重量图（图４），ＸＷＬＣ－０５裸鼠移植瘤和Ａ５４９裸鼠移植瘤重量??随时间逐渐增加，放射后较放疗前减小；残余瘤质量随时间重量逐渐增加；经独??立样本Ｔ检验可以发现，ＸＷＬＣ－０５及Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量无明显差异??（表?１）。??４１?画Ａ５４９细胞??ＥＤ?ＸＷＬＣ－０５?细胞??ｓ２＇?｜｜?Ｉ?圖ｎ?＿ｒ??Ｊｉｌｌ?ａｊｕｎｊｌｌｌｌｌｊｊ??＂／／／／／??图４?ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量??（同组别ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量差异不具有统计学意义）??表１?ＸＷＬＣ－０５和Ａ５４９裸鼠移植瘤及残余瘤重量变化??成瘤组?照射组?残余瘤成残余瘤成残余瘤成残
【参考文献】：
期刊论文
[1]Research on human glioma stem cells in China[J]. Yao-dong Zhao,Quan-bin Zhang,Hua Chen,Xi-feng Fei,Yun-tian Shen,Xiao-yan Ji,Jia-wei Ma,Ai-dong Wang,Jun Dong,Qing Lan,Qiang Huang. Neural Regeneration Research. 2017(11)
[2]X线辐射对A549肺腺癌细胞周期和增殖的影响[J]. 王溪,佟志敏,胡媛媛,金鹏,李宁,李诗扬,崔营营,张红梅. 中国实验诊断学. 2017(10)
[3]肺癌肿瘤干细胞表面标志物的研究[J]. 于鸿. 中国组织工程研究. 2012(36)
[4]PI3K/AKT通路在肺癌转移和耐药中的研究[J]. 祝冰晶,周向东. 中国肺癌杂志. 2011(08)
[5]宣威肺腺癌xwlc-05和肺腺癌A549细胞株体外培养细胞活力的比较研究[J]. 张云辉,谭燕,袁兵,王盛兰,赵珊,王廷华. 昆明医学院学报. 2011(07)
[6]PI3K/Akt/mTOR信号转导通路与非小细胞肺癌[J]. 祁慧薇,范理宏. 中国肺癌杂志. 2010(12)
[7]X射线对人肺腺癌细胞及其耐药细胞株的影响[J]. 任尧尧,张鹏,曹永珍,马力,周清华. 生物医学工程与临床. 2009(02)
博士论文
[1]MET-PI3K-Akt信号通路介导miRNA-31调控肺腺癌肿瘤干细胞功能[D]. 侯春英.北京协和医学院 2016
硕士论文
[1]两种肺腺癌细胞体外放射后残留细胞增殖迁移及干细胞变化的比较性研究[D]. 杜小双.昆明医科大学 2017
[2]循环中Hsa-miR-9、Hsa-miR-21、Hsa-miR-501的表达水平与非小细胞肺癌的相关性研究[D]. 陈凯.昆明医科大学 2017
[3]新一代测序技术对宣威肺癌全基因组和全外显子组的研究[D]. 王潇.昆明医科大学 2015
[4]宣威肺腺癌患者放疗前后免疫功能的变化[D]. 李国苗.昆明医科大学 2013
[5]PI3K/AKT通路及DNA损伤修复对XWLC-05与A549肺腺癌细胞放射敏感性影响的研究[D]. 李田芊.昆明医科大学 2012
[6]宣威肺腺癌XWLC-05细胞和A549细胞放射敏感性与细胞周期分布及凋亡的相关性研究[D]. 于书慧.昆明医科大学 2012
本文编号：3252628
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