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靶向沉默VDR对PC-3细胞迁移能力和侵袭性的影响及对GLi1的作用

发布时间:2022-01-26 18:02
  [目的]研究维生素D受体(VDR)在PC-3细胞(前列腺癌细胞株)中的表达及其意义和通过短发夹RNA(short hairpin RNA,s RNA)沉默靶基因的方式来探究VDR基因对PC-3细胞迁移能力和侵袭性的影响,并且探讨VDR与脑胶质瘤相关癌基因1(GLi1)相关性。[方法]1、依照PC-3细胞培养条件培养细胞;采用荧光定量PCR法在mRNA水平检测PC-3细胞中VDR基因表达和转录水平;2、通过细胞免疫荧光法在蛋白水平检测PC-3细胞中VDR蛋白表达;3、质粒和慢病毒包装由上海生工生物工程股份有限公司设计并合成,选用针对VDR基因干扰效率最佳的 VDR-homo-433:5’GGAGTTCATTCTGACAGATGA3’作为干扰序列;4、把PC-3细胞分成空白对照组,阴性对照组和实验组三组,培养液中不加入维生素D及维生素D类似物。构建VDR-shRNA(+)慢病毒载体侵染实验组,VDR-shRNA(-)慢病毒组侵染阴性对照组,空白对照组不做处理,利用RT-PCR和Western Blot法分别在mRNA和蛋白水平检测以上三细胞组VDR转录和表达情况;5、通过细胞划痕愈合实验和... 

【文章来源】:昆明医科大学云南省

【文章页数】:69 页

【学位级别】:硕士

【部分图文】:

靶向沉默VDR对PC-3细胞迁移能力和侵袭性的影响及对GLi1的作用


图2.电泳结果??

细胞培养,图片,电泳


图1细胞培养图片(100X)??;BPC-3细胞传代后Id;?CPC-3细胞传胞传代后3d;?E?PC-3细胞传代后4d??A电泳结果??RNA进行电泳纯度检测(1.5%琼脂糖,IXRNA电泳28s?rRNA、18s?rRNA两条带清带,各组细胞提取的总RNA没有明显污染rker,其只为检测基因组污染,并不代表R

电泳图,电泳,细胞,基因转录


1.1.2?PCR产物电泳??把各组提取的样本在1.5%琼脂糖(150V、100mA20min)电泳下观察,见??图3,?PC-3细胞和阳性对照组细胞HK-2细胞均发现VDR基因转录mRNA,而??且转录水平差异不明显。??14??

【参考文献】:
期刊论文
[1]小干扰RNA沉默HK-2细胞VDR及其对低枸橼酸尿症的意义[J]. 李康健,罗钰辉,莫茵,申吉泓,刘孝东,李颢.  昆明医科大学学报. 2017(10)
[2]Loss of the vitamin D receptor in human breast and prostate cancers strongly induces cell apoptosis through downregulation of Wnt/β-catenin signaling[J]. Yu Zheng,Trupti Trivedi,Ruby CY Lin,Colette Fong-Yee,Rick Nolte,Jeline Manibo,Yunzhao Chen,Musharraf Hossain,Konstantin Horas,Colin Dunstan,Hong Zhou,Markus J Seibel.  Bone Research. 2017(03)
[3]维生素D受体和P-糖蛋白在胃癌组织中的表达及意义[J]. 房栋,李成军,胡萍萍,陈淼.  疑难病杂志. 2016(10)
[4]VDR和NaDC1在HK-2细胞中的表达及其对低枸橼酸尿症的意义[J]. 李康健,莫茵,申吉泓,罗钰辉,刘孝东,李颢.  昆明医科大学学报. 2016(01)
[5]Gli-1 siRNA对PANC-1增殖及凋亡的影响[J]. 王伟,张炳太,李茂岚,林镇海.  中国医疗前沿. 2010(23)



本文编号:3610933

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