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BioDeNO x 体系中Fe Ⅱ (EDTA)-NO的生物还原及N 2 O控逸研究

发布时间:2023-03-26 14:15
  BioDeNOx是一种新的烟气治理技术,综合了化学吸收和生物反硝化技术,具有投资少、费用低、流程短、操作简便等优点,已得到了越来越多的关注。在BioDeNOx烟气脱硝过程中,N20是一种主要的中间产物,研究表明N20能够加剧温室效应,破坏臭氧层,促进酸雨的形成等。因此研究BioDeNOx脱硝体系中FeⅡ(EDTA)-NO的生物还原及还原过程中N20的控逸,对于实现BioDeNOx的绿色应用具有重要意义。 本研究以驯化后的污泥为接种污泥,研究了FeⅡ(EDTA)-NO生物还原及还原过程中N2O的生成、累积和转化情况;同时利用PCR-DGGE技术研究分析FeⅡ(EDTA)-NO生物还原体系中微生物群落结构的变化情况,取得了以下主要研究结论: 1)基于FeⅡ(EDTA)-NO对微生物具有一定的毒性,采取分阶段驯化的方式,经驯化后的污泥具有良好的FeⅡ(EDTA)-NO生物还原特性,最大去除浓度为5mmol·L-1,当浓度超过5mmol·L-1, FeⅡ(EDTA)-NO去除率明显低;FeⅡ(EDTA)-NO降解过程中,污泥生物量基本保持不变,经研究发现其降解符合Michaels-menten...

【文章页数】:98 页

【学位级别】:硕士

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摘要
ABSTRACT
第一章 绪论
    1.1 NOx的排放现状及减排紧迫性
    1.2 NOx治理技术的研究现状
        1.2.1 气相反应脱硝技术
        1.2.2 吸附法
        1.2.3 等离子体法
        1.2.4 吸收法
        1.2.5 生物法
        1.2.6 络合吸收-生物还原法
    1.3 N2O危害及研究现状
    1.4 变性梯度凝胶电泳Bio-DGGE的原理和应用
        1.4.1 原理
        1.4.2 应用
    1.5 课题研究意义及研究内容
        1.5.1 课题研究意义与目的
        1.5.2 课题研究内容
        1.5.3 课题创新之处
        1.5.4 课题来源
第二章 实验材料与方法
    2.1 实验试剂与仪器
        2.1.1 实验试剂
        2.1.2 实验仪器
    2.2 分析测试方法
        2.2.1 F(EDTA)-NO浓度测定方法
        2.2.2 N2O的测定
        2.2.3 污泥生物量测定方法
    2.3 污泥驯化与培养
        2.3.1 污泥来源
        2.3.2 基础营养液配方
        2.3.3 污泥的驯化和培养实验
        2.3.4 Fe(EDTA)-NO溶液
        2.3.5 Fe(EDTA)-NO的生物还原实验
    2.4 微生物群落结构与优势菌属研究
        2.4.1 DNA提取
        2.4.2 PCR扩增
        2.4.3 DGGE分析
        2.4.4 割胶回收DNA片段和PCR扩增
        2.4.5 16S rDNA测序及同源性比较
第三章 Fe(EDTA)-NO的生物还原研究
    3.1 污泥驯化
        3.1.1 驯化第一阶段
        3.1.2 驯化第二阶段
    3.2 Fe(EDTA)-NO生物还原过程中污泥生物量变化研究
        3.2.1 污泥生物量随时间变化规律
    3.3 Fe(EDTA)-NO生物降解速率研究
        3.3.1 碳源对还原速率Vmax的影响
        3.3.2 pH对还原速率Vmax的影响
        3.3.3 温度对还原速率Vmax的影响
    3.4 Fe(EDTA)-NO生物还原中N2O产生途径研究
        3.4.1 Fe(EDTA)-NO生物还原过程中N2O变化图
        3.4.2 Fe(EDTA)-NO生物还原过程中氮素变化
    3.5 本章小结
第四章 Fe(EDTA)-NO生物还原过程中N2O的控逸研究
    4.1 碳源对N2O累积及转化率的影响
    4.2 C/N对N2O累积及转化率的影响
    4.3 pH值对N2O累积及转化率的影响
    4.4 温度对N2O累积及转化率的影响
    4.5 FEDTA浓度对N2O累积及转化率的影响
    4.6 SO3
2-对N2O累积及转化率的影响
    4.7 本章小结
第五章 Fe(EDTA)-NO生物还原过程中微生物群落结构鉴定与分析
    5.1 污泥驯化稳定期间微生物群落结构研究
        5.1.1 不同驯化时间段下样品的采集
        5.1.2 样品基因组DNA提取和PCR扩增
        5.1.3 样品DGGE分析
        5.1.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析
    5.2 不同碳源条件下微生物群落结构变化
        5.2.1 不同碳源条件下的污泥样品采集
        5.2.2 样品基因组DNA的提取和PCR扩增
        5.2.3 样品Bio-DGGE条带分析
        5.2.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析
    5.3 不同C/N比条件下微生物群落结构变化
        5.3.1 不同C/N条件下样品采集
        5.3.2 样品基因组DNA的提取和PCR扩增
        5.3.3 样品Bio-DGGE条带分析
        5.3.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析
    5.4 不同pH值条件下微生物群落结构变化
        5.4.1 不同pH条件下样品采集
        5.4.2 样品基因组DNA的提取和PCR扩增
        5.4.3 样品Bio-DGGE条带分析
        5.4.4 样品DGGE割胶条带测序结果分析
第六章 结论与建议
    6.1 结论
    6.2 建议和展望
参考文献
致谢
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本文编号:3771115

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