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利用RNAi技术进行中国野生葡萄SBP转录因子功能研究

发布时间:2016-10-25 20:43

  本文关键词:GH-DREB基因转化小麦及转基因植株后代的抗旱生理指标鉴定,由笔耕文化传播整理发布。


《西北农林科技大学》 2009年

利用RNAi技术进行中国野生葡萄SBP转录因子功能研究

侯鸿敏  

【摘要】: 葡萄白粉病(Uncinula necator)是严重危害欧洲葡萄的真菌病害之一。本课题组采用mRNA差异显示和RACE技术(mRNA differential display reverse transcription-PCR, DDRT-PCR)获得了中国野生葡萄华东葡萄(V. pseudoreticulata)白河-35-1在白粉病病原菌侵染后诱导表达的SBP(SQUAMOSA promoter binding protein, SBP)转录因子cDNA。本研究就是通过对中国野生葡萄SBP转录因子cDNA序列进行分析,根据其保守区、非保守区设计引物,分别构建以保守区和非保守区为目的基因的RNAi植物表达载体,通过花序浸润法转化拟南芥,初步了解SBP家族基因的功能。获得以下主要结果: 1.分别构建了中国野生葡萄SBP转录因子cDNA保守区和非保守区的RNAi植物表达载体。通过对中国野生葡萄SBP转录因子cDNA进行结构分析,预测基因保守和非保守区域。根据其保守和非保守区序列以及pENTRTMTOPO vector要求设计合成两对特异引物:SBPb-F5’CAC CGC AGG TTT GAC TCC CCT TCA CAT AG 3’, SBPb-R5’AGA GCC ACA CAT ACG CAG ACA GC 3’, SBPf-F5’CAC CGA AAA ATG CAA GCC AAG TAT CAA 3’, SBPf-R5’TCT CAA GAG GAG TTC CAC CAT AG 3’,并进行PCR扩增,将获得的目的片段定向连接到pENTRTM/D-Topo载体,经过PCR检测和测序分析得到正确入门克隆载体后,分别与目的载体pHellsgate8进行LR反应,利用PCR扩增和XHoI、XBaI单酶切检测鉴定,获得SBP转录因子保守区和非保守区的RNAi植物表达载体pHellsgate8-SBPb和pHellsgate8-SBPf。 2.获得了具有卡那霉素抗性的转基因拟南芥植株。通过农杆菌介导的花序浸润法转化拟南芥,在含卡那霉素40mg/L的MS培养基中对T0代转化植株的种子进行抗性筛选,获得了48株pHellsgate8-SBPb转基因拟南芥和63株pHellsgate8-SBPf转基因拟南芥。分别提取T1代转基因拟南芥的DNA,经PCR检测初步证明目的基因已导入拟南芥。 3.中国野生葡萄SBP转录因子功能分析。将野生拟南芥和转基因拟南芥转入基质中生长两个月后,对获得的抗性植株表型进行观察,在pHellsgate8-SBPb的转基因植株中发现一株不抽薹不开花的转基因突变体植株。与野生型拟南芥相比,其叶色浓绿且叶缘缺刻明显,营养生长旺盛,而其他抗性植株与野生型拟南芥相比,表现出生长势较弱,抽薹分枝数和角果数都较少。初步证明中国野生葡萄SBP转录因子可能与植株抽薹开花有关。

【关键词】:
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2009
【分类号】:S663.1
【目录】:

  • 摘要5-7
  • ABSTRACT7-11
  • 第一章 文献综述11-23
  • 1.1 RNA 干扰技术11-16
  • 1.1.1 RNAi 的发现11-12
  • 1.1.2 RNA 干扰技术原理12-13
  • 1.1.3 RNAi 作用的特点13-14
  • 1.1.4 RNAi 技术在植物研究中的应用14-16
  • 1.2 植物转录因子16-20
  • 1.2.1 转录因子的结构17
  • 1.2.2 DNA 结合区17
  • 1.2.3 转录调控区17-18
  • 1.2.4 与植物抗病反应有关的转录因子18-20
  • 1.3 SBP 转录因子的研究进展20-22
  • 1.3.1 SBP 转录因子的发现20-21
  • 1.3.2 SBP 家族的功能21-22
  • 1.4 本研究目的意义22-23
  • 第二章 材料和方法23-31
  • 2.1 材料23-24
  • 2.1.1 植物材料23
  • 2.1.2 质粒和菌株23
  • 2.1.3 酶和主要试剂23
  • 2.1.4 主要仪器设备23
  • 2.1.5 常用抗生素贮存液23-24
  • 2.1.6 培养基及缓冲液24
  • 2.2 方法24-31
  • 2.2.1 中国野生葡萄SBP 转录因子RNAi 载体的构建24-28
  • 2.2.2 冻融法导入农杆菌28-29
  • 2.2.3 转基因植株的获得及初步筛选29-30
  • 2.2.4 SBP 转录因子功能分析30-31
  • 第三章 结果和分析31-39
  • 3.1 中国野生葡萄SBP 转录因子RNAI 载体构建31-37
  • 3.1.1 SBP 转录因子cDNA 片段的扩增31
  • 3.1.2 入门克隆载体pENTR~(TM)/D-SBP 的构建及PCR 鉴定31-35
  • 3.1.3 植物干扰表达载体pHellsgate8-SBPb/f 的PCR 和酶切鉴定35
  • 3.1.4 农杆菌EHA105 转化pHellsgate8-SBP 后的PCR 鉴定35-37
  • 3.2 转基因植株的获得及初步筛选37
  • 3.2.1 抗卡那霉素(kan)转基因植株的获得37
  • 3.2.2 转基因拟南芥的PCR 检测37
  • 3.3 SBP 转录因子功能分析37-39
  • 第四章 讨论39-41
  • 4.1 花序浸润法转化拟南芥应注意的问题39
  • 4.2 LR 反应中出现的问题39-40
  • 4.3 关于SBP 转录因子功能40-41
  • 第五章 结论41-42
  • 参考文献42-48
  • 致谢48-49
  • 作者简介49
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    本文编号:153463

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