牦牛PLIN2基因的克隆及其在卵巢不同发情阶段的表达
本文选题:牦牛 + PLIN基因 ; 参考:《中国畜牧兽医》2017年03期
【摘要】:试验旨在研究牦牛PLIN2基因的序列特征和表达特性,并分析其表达与不同发情时期的卵巢的相关性。根据GenBank中已知的普通牛序列,设计克隆引物,经RT-PCR扩增得到牦牛PLIN2基因序列。RT-PCR检测PLIN2基因在各个组织中的表达量,实时荧光定量PCR分析卵巢不同发情时期的表达量。结果表明,牦牛PLIN2基因的编码区长为1 353bp,共编码450个氨基酸,为无跨膜结构的非分泌蛋白。与GenBank中已知的普通牛序列同源性达到99.4%,表明PLIN2基因在进化过程中相当保守。在牦牛的各个组织中PLIN2分布广泛,但不同组织中的表达有差异,卵巢、乳腺、胃和肾脏中相对较多,而肺脏中几乎没有表达。实时荧光定量PCR结果显示,在卵巢的不同发情时期PLIN2都有表达,且在黄体期的表达量最高,表明PLIN2基因在牦牛发情周期中起着不可忽视的作用。
[Abstract]:The aim of this study was to study the sequence and expression characteristics of yak PLIN2 gene, and to analyze the correlation between the expression of PLIN2 gene and ovary in different estrus. Based on the known common bovine sequences in GenBank, cloned primers were designed, and the yak PLIN2 gene sequence was amplified by RT-PCR. RT-PCR was used to detect the expression of PLIN2 gene in various tissues, and real-time fluorescence quantitative PCR was used to analyze the expression of PLIN2 gene in different estrus stages of ovary. The results showed that the coding region of yak PLIN2 gene was 1353 BP, encoding 450 amino acids, which was a non-secretory protein without transmembrane structure. The sequence homology of PLIN2 gene was 99.4 with the known common cattle sequence in GenBank, indicating that the PLIN2 gene was quite conserved in the course of evolution. PLIN2 was widely distributed in various tissues of yak, but the expression of PLIN2 was different in different tissues. The expression of PLIN2 in ovary, mammary gland, stomach and kidney was relatively high, but there was almost no expression in lung. The results of real-time fluorescence quantitative PCR showed that PLIN2 was expressed in different oestrus and the highest in luteal phase, indicating that PLIN2 gene plays an important role in yak estrus cycle.
【作者单位】: 西南民族大学生命科学与技术学院;西南民族大学青藏高原研究院;
【基金】:四川省科技支撑计划(2014NZ0114) 西南民族大学研究生“创新型科研项目”(CX2016SZ094)
【分类号】:S823.85
【共引文献】
相关期刊论文 前10条
1 张遥遥;张小莺;李新平;;猪圆环病毒2型Cap基因的原核表达及IgY多抗的制备[J];中国兽医科学;2017年06期
2 付远妨;赵尉丹;杨潇;林霜;胡庭俊;陈海兰;;鸡血藤总黄酮对猪圆环病毒2型感染小鼠脾脏氧化应激的影响[J];中国畜牧兽医;2017年05期
3 湛洋;胡意;王东亮;蔡杰;邓治邦;;PCV2a-ORF3基因缺失株感染性克隆的构建[J];中国预防兽医学报;2017年05期
4 李观辉;李勇发;沈淼优;;猪圆环病毒感染相关疾病及防控措施[J];畜牧兽医科学(电子版);2017年04期
5 蔡高峰;李凯;张黎;王伟松;何后军;;猪圆环病毒2型江西株的全基因组克隆和序列分析[J];中国畜牧兽医;2017年03期
6 李娇;王文秀;谢金文;李峰;沈志强;;我国猪圆环病毒病的流行现状分析[J];养猪;2016年06期
7 王立波;吴润生;闫超;吕暾;;不同佐剂对猪圆环病毒衣壳蛋白免疫原性的影响[J];中国畜牧兽医;2016年11期
8 岳锋;周娟娟;朱艳平;李鹏;孙国鹏;王选年;;猪PD-1及其配体PD-L1和PD-L2 SYBR Green Ⅰ Real-time PCR检测方法的建立及应用[J];中国畜牧兽医;2016年11期
9 彭泽琴;张小苗;阿瑶;;云南省临沧地区猪圆环病毒2型血清学调查[J];黑龙江畜牧兽医;2016年18期
10 李海花;张蕾;杨春蕾;赵向华;乔家运;王文杰;;PCV2通过NF-κB/NLRP3信号通路调控体外培养PAMs分泌IL-1β[J];中国畜牧兽医;2016年09期
相关博士学位论文 前5条
1 董林;猪圆环病毒2型诊断试剂盒的研制与应用[D];吉林大学;2014年
2 张建远;猪圆环病毒pVAX1-ORF2-ISS核酸疫苗及与猪细胞因子联合免疫研究[D];四川农业大学;2009年
3 祝卫国;猪圆环病毒2型(PCV2)的研究[D];西北农林科技大学;2008年
4 杨增岐;断奶仔猪多系统衰竭综合征的研究[D];西北农林科技大学;2007年
5 冯志新;猪圆环病毒2型致病机理和重组腺病毒介导shRNA抑制PCV2在体内外复制的研究[D];南京农业大学;2007年
相关硕士学位论文 前4条
1 关男;猪繁殖障碍疫病4种病毒多重PCR方法的建立及初步应用[D];锦州医科大学;2016年
2 常晓霞;猪伪狂犬病毒、猪细小病毒和猪圆环病毒2型联合共检可视化基因芯片检测技术研究[D];四川农业大学;2015年
3 杨莹莹;猪圆环病毒2型Cap蛋白原核表达及间接ELISA方法的建立[D];东北林业大学;2015年
4 王丽敏;猪圆环病毒2型Cap蛋白阻断ELISA抗体检测试剂盒的标准化研究[D];南京农业大学;2014年
【二级参考文献】
相关期刊论文 前10条
1 李海花;李秀丽;张莉;孙英峰;任卫科;路超;田向学;;猪圆环病毒2型天津株的全基因组克隆与序列分析[J];动物医学进展;2014年01期
2 杨芳;陈立功;李艳琴;宋勤叶;赵丹萍;李潭清;;猪圆环病毒2型SD/2008株对仔猪的致病性[J];中国兽医学报;2013年04期
3 刘健;张维谊;鞠厚斌;杨德全;王建;刘佩红;周锦萍;;猪圆环病毒2a/2b亚型病毒株毒力分析[J];中国畜牧兽医;2013年02期
4 薛云;赵战勤;王清义;龙塔;庞有志;董发明;;河南省猪圆环病毒2型感染的病原流行病学研究[J];河南农业科学;2012年08期
5 黄新;康立超;韩猛立;何延华;钟发刚;;猪圆环病毒2型XJ-SW株全基因组的克隆与序列分析[J];中国兽医科学;2012年05期
6 李玲;李国新;周艳君;童武;王礞礞;童光志;;2008~2011年中国部分地区猪圆环病毒2型的分子流行病学调查[J];中国动物传染病学报;2012年02期
7 王贵华;陈义锋;汤波;刘明明;陈翠云;赵亚荣;;猪圆环病毒2型毒株分离鉴定和体外增殖特性研究[J];中国畜牧兽医;2012年01期
8 车勇良;庄向生;石运通;王隆柏;魏宏;陈如敬;吴学敏;周伦江;;猪圆环病毒2型间接ELISA方法的建立[J];中国农学通报;2011年07期
9 王宪文;姚四新;刘兴友;刘丽艳;杭柏林;;猪圆环病毒2型复制及其影响因素[J];中国畜牧兽医;2011年03期
10 郭抗抗;张彦明;张红;刘华科;宁蓬勃;王晶钰;;猪圆环病毒2型分离株优势基因型分析与检测[J];中国预防兽医学报;2010年10期
相关硕士学位论文 前3条
1 丁献红;禽流感病毒抗原纯化方法的建立及纯化抗原对鸡体免疫效果研究[D];河南农业大学;2009年
2 李益飞;猪圆环病毒Rep蛋白在大肠杆菌中的表达及其单克隆抗体的研制[D];浙江大学;2007年
3 施旅娟;PCV-2感染仔猪的病理学变化及淋巴结细胞凋亡的研究[D];南京农业大学;2006年
,本文编号:1812818
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/1812818.html