桦褐孔菌纤维素酶基因的原核表达与纯化
[Abstract]:Betula obliquus Inonotus obliquus (Ach.exPers.) Pilat, is one of the most precious medicinal bacteria. Sclerotia is the main medicinal value. It has remarkable effect in anti-tumor, anti-hypertension, hypoglycemia and improving immunity, and has been loved by people all the time. However, the wild resources of Betula platyphylla are very rare, and the wild Betula platyphylla has a good medicinal value in birch trees after 10-15 years, so it is urgent to explore the artificial cultivation of Betula platyphylla. At present, the sclerotia of Betula platyphylla has been successfully cultivated, but the yield is relatively low. It is proved that the change of extracellular enzyme activity is closely related to the growth of sclerotia, and the JL01 of Betula platyphylla is used as the test material in this experiment. To continue to study on the molecular level of cellulase, an extracellular enzyme related to sclerotia development, in order to further understand the changes of protein function and secretion expression of extracellular enzymes, and to establish efficient exogenous expression vectors. The experimental results are as follows: 1. The ORF sequences of endoglucanase (endoglucanase,IO-EG) and 尾 -glucosidase (beta-glucosidase,IO-BGL) in JL01 strain of Betula obliquus were cloned and obtained. The ORF sequence of 尾 -glucosidase was in good agreement with the ORF sequence published in Gen bank. However, the ORF sequence of endoglucanase was aligned with the ORF sequence published in Gen bank, and 1092 base T deletions were found, which led to the change of ORF sequence, resulting in a new ORF sequence of endoglucanase. The total length of the ORF sequence named eg Igneg I is 382 amino acids, and the deduced molecular weight of the protein is 40.1 kDa, the theoretical isoelectric point is 4.78. After sequence alignment and functional analysis, it is identified as the fifth family of cellulase glycoside hydrolase; 2. The prokaryotic expression vectors of (eg I) and 尾 -glucosidase (bgl) were constructed and named as pET-30a-eg I, pET-30a-bgl;3.IO-EG and IO-BGL prokaryotic expression vectors pET-30a-eg I and pET-30a-bgl into E. coli BL21. The stable expression protein was obtained. The SDS results showed that the proteins existed in the form of inclusion bodies. The molecular weight of IO-EG and IO-BGL recombinant proteins were about 40 kDa and 90 kDa;4., respectively. Ni-IDA protein purification kit was used to purify the target protein under denaturation conditions. The purity of purified IO-EG protein was 88% and the purity of IO-BGL protein was 75.The concentration of IO-EG and IO-BGL protein after dialysis was 0.5 mg L-1 and 0.65 mg mL-1, respectively, and the protein contents were 3.0 mg and 3.6 mg.5., respectively. The purified protein was analyzed by Western Blotting. The band of IO-EG protein was single, which was consistent with the theoretical molecular weight, and the band of IO-BGL protein was consistent with the theoretical molecular weight, but the heterocyclic bands appeared near 35 KDa, presumably due to the degradation of IO-BGL protein.
【学位授予单位】:延边大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:S567.3
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 梁丽雅;张泽生;杨海延;;桦褐孔菌的生物活性研究及应用现状[J];食品科技;2008年07期
2 杜文婧;王琦;;桦褐孔菌资源分布及药理活性研究进展[J];菌物研究;2013年01期
3 陈艳秋,李玉;桦褐孔菌的研究进展[J];微生物学通报;2005年02期
4 回晶;宋雅娜;孙秀娟;邹志远;刘宏生;;桦褐孔菌多糖的体外抗氧化作用研究[J];食用菌学报;2006年02期
5 季峰;郑维发;魏贤勇;宗志敏;;桦褐孔菌挥发油的气相色谱-质谱联用分析[J];时珍国医国药;2007年10期
6 李佳佳;鞠玉琳;李杨;;桦褐孔菌多糖的提取及含量测定方法的研究[J];湖北农业科学;2009年12期
7 张梅梅;魏志文;刘玉冰;赵艳霞;郑维发;;Folin-Ciocalteu比色法测定桦褐孔菌多酚的条件优化[J];菌物学报;2011年02期
8 高娃;于德水;刘佳宁;戴肖东;韩增华;;桦褐孔菌子实体多糖提取研究[J];生物技术;2012年02期
9 杜秀菊;徐伟;穆红梅;彭向前;冯玮;;桦褐孔菌多糖的药理活性与化学结构研究进展[J];食用菌学报;2012年01期
10 闫可;尹勇刚;傅常娥;陈艳秋;冉丽萍;;桦褐孔菌ISSR-PCR反应体系优化与建立[J];中国食用菌;2012年02期
相关会议论文 前10条
1 李雪;王金玲;潘景芝;陈丽;王琦;;桦褐孔菌胞外多糖抗肿瘤作用研究[A];中国菌物学会2009学术年会论文摘要集[C];2009年
2 宋爱荣;苏艳;;桦褐孔菌不同发酵液提取物体外对癌细胞抑制作用的研究[A];中国菌物学会2009学术年会论文摘要集[C];2009年
3 母海钵;段金友;;桦褐孔菌粗多糖抗氧化活性研究[A];中国活性氧生物学效应学术会议论文集(第一册)[C];2011年
4 张振宇;田雪梅;卜祥辉;宋爱荣;;桦褐孔菌提取物体外抗肿瘤作用研究[A];中国菌物学会第五届会员代表大会暨2011年学术年会论文摘要集[C];2011年
5 郑维发;刘玉冰;赵艳霞;张梅梅;;一氧化氮介导的桦褐孔菌多酚生物合成的作用机制[A];中国菌物学会第五届会员代表大会暨2011年学术年会论文摘要集[C];2011年
6 崔基成;崔永;;桦褐孔菌抗氧化作用的研究[A];首届药用真菌产业发展暨学术研讨会论文集[C];2005年
7 潘鸿辉;余雄涛;李婷;吴红玲;焦春伟;蔡勉华;李向敏;谢意珍;王弋;彭涛;;桦褐孔菌水提物通过抑制病毒介导的膜融合过程阻止单纯疱疹病毒的入侵[A];2012年鄂粤微生物学学术年会——湖北省暨武汉微生物学会成立六十年庆祝大会论文集[C];2012年
8 刘玉冰;郑维发;;激发子诱导的桦褐孔菌酚类化合物合成的作用机制[A];2010年中国菌物学会学术年会论文摘要集[C];2010年
9 杜文婧;才媛;王琦;;桦褐孔菌发酵浸膏多糖抗炎作用研究[A];2012年中国菌物学会学术年会会议摘要[C];2012年
10 郑维发;;桦褐孔菌深层发酵的研究进展—问题、对策和展望[A];中国菌物学会2009学术年会论文摘要集[C];2009年
相关博士学位论文 前6条
1 刘超;桦褐孔菌化学成分与生物活性的研究[D];北京协和医学院;2017年
2 张丽霞;桦褐孔菌多糖结构及生物活性研究[D];东北师范大学;2011年
3 陈义勇;桦褐孔菌多糖纯化、结构及其抗肿瘤机制研究[D];江南大学;2010年
4 崔彦如;桦褐孔菌有效成分的PEF提取、化学修饰和抗癌活性的研究[D];吉林大学;2008年
5 季峰;桦褐孔菌化学成分及药理活性研究[D];中国矿业大学;2008年
6 何坚;多孔菌科粉肉层孔菌、桦褐孔菌和云杉针层孔菌三种真菌的化学成分研究[D];中国协和医科大学;2000年
相关硕士学位论文 前10条
1 朴春杰;桦褐孔菌多糖对DSS诱导的急性炎症性肠病小鼠的影晌[D];延边大学;2015年
2 王清洁;桦褐孔菌多糖类化合物的结构及其生物活性的初步研究[D];西北农林科技大学;2015年
3 朱晓丽;桦褐孔菌多糖的分离纯化及抗氧化活性研究[D];聊城大学;2015年
4 颜正飞;外源因子对桦褐孔菌法呢基焦磷酸合酶合成三萜的影响[D];吉林农业大学;2015年
5 李广林;桦褐孔菌三萜提取分离、结构鉴定及生物活性研究[D];浙江工业大学;2014年
6 王鸿艳;桦褐孔菌深层液体发酵及菌粉降血糖药效的初步研究[D];浙江大学;2013年
7 魏娟娟;桦褐孔菌去亚硝基酶基因的克隆与表达[D];江苏师范大学;2014年
8 黄铃;桦褐孔菌液体发酵工艺及其多糖抗疲劳的研究[D];福建农林大学;2011年
9 孟繁龙;桦褐孔菌发酵工艺优化及胞内多糖降血糖活性研究[D];吉林大学;2016年
10 吴昆;桦褐孔菌抗肿瘤活性部位筛选及其化学成分的研究[D];安徽医科大学;2016年
,本文编号:2266034
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/2266034.html