DACT1基因不同区域异常甲基化对食管鳞癌患者预后的影响
【图文】:
异常甲基化对食管癌患者预后的影响岛旁区域,即位于CpG岛边缘CpG位点密度相对较低的区域(region1:-540~-419bp)和环绕转录起始点TSS区域(region2:-16~105bp)(图1)甲基化。MSP引物序列及PCR条件见表1。MSP法检测ESCC及癌旁组织和食管癌细胞株的DACT1基因甲基化状态。SssI处理基因组DNA作为甲基化阳性对照(M-PC)组,无消化系统及其他系统肿瘤的正常人外周血DNA作为非甲基化阳性对照(N-PC)组,,灭菌双蒸水取代DNA模板进行PCR作为阴性对照(NC)组。随机选取10%标本进行重复实验。+1:Thetranscriptionstartpoint图1DACT1基因启动子区CpG岛分布图Fig.1DistributionoftheCpGislandsinpromoterofDACT1gene1.5RT-PCR方法检测DACT1mRNA表达按TRIzol试剂盒说明书提取组织及细胞株总RNA,参照逆转录试剂盒说明书将RNA逆转录成cDNA,用于检测DACT1mRNA的表达。GAPDH作为内参照,所用引物及退火温度见表1。PCR产物进行2%琼脂糖凝胶电泳,利用图像分析系统Gelwork-2ID对mRNA进行定量。1.6免疫组织化学(immunohistochemistry,IHC)方法检测DACT1蛋白表达应用常规SP法。石蜡切片常规脱蜡,梯度乙醇水化。3%甲醇过氧化氢封闭后用EDTA高压修复2~5min,血清封闭,DACT1抗体孵育过夜,再依次加入生物素化二抗及辣根过氧化物酶标记的三抗,DAB显色,苏木精复染。以PBS代替一抗做空白对照。以胞浆内出现均匀一致的棕黄色颗粒视为阳性表达,并依据传统的染色评分方法[7]对结果进行判定。1.7统计学处理数据统计分析采用SPSS19.0统计学软件。各组间甲基化频率差异分析用χ2检验;mRNA表达数据用表示,差异比较用t检验;用Log-rank检验分析DACT1基因CpG岛旁区域和TSS区域甲基化状态对ESCC患者生存期的影响。P<0.05或P<0.01表示差?
异常甲基化对食管癌患者预后的影响岛旁区域,即位于CpG岛边缘CpG位点密度相对较低的区域(region1:-540~-419bp)和环绕转录起始点TSS区域(region2:-16~105bp)(图1)甲基化。MSP引物序列及PCR条件见表1。MSP法检测ESCC及癌旁组织和食管癌细胞株的DACT1基因甲基化状态。SssI处理基因组DNA作为甲基化阳性对照(M-PC)组,无消化系统及其他系统肿瘤的正常人外周血DNA作为非甲基化阳性对照(N-PC)组,灭菌双蒸水取代DNA模板进行PCR作为阴性对照(NC)组。随机选取10%标本进行重复实验。+1:Thetranscriptionstartpoint图1DACT1基因启动子区CpG岛分布图Fig.1DistributionoftheCpGislandsinpromoterofDACT1gene1.5RT-PCR方法检测DACT1mRNA表达按TRIzol试剂盒说明书提取组织及细胞株总RNA,参照逆转录试剂盒说明书将RNA逆转录成cDNA,用于检测DACT1mRNA的表达。GAPDH作为内参照,所用引物及退火温度见表1。PCR产物进行2%琼脂糖凝胶电泳,利用图像分析系统Gelwork-2ID对mRNA进行定量。1.6免疫组织化学(immunohistochemistry,IHC)方法检测DACT1蛋白表达应用常规SP法。石蜡切片常规脱蜡,梯度乙醇水化。3%甲醇过氧化氢封闭后用EDTA高压修复2~5min,血清封闭,DACT1抗体孵育过夜,再依次加入生物素化二抗及辣根过氧化物酶标记的三抗,DAB显色,苏木精复染。以PBS代替一抗做空白对照。以胞浆内出现均匀一致的棕黄色颗粒视为阳性表达,并依据传统的染色评分方法[7]对结果进行判定。1.7统计学处理数据统计分析采用SPSS19.0统计学软件。各组间甲基化频率差异分析用χ2检验;mRNA表达数据用表示,差异比较用t检验;用Log-rank检验分析DACT1基因CpG岛旁区域和TSS区域甲基化状态对ESCC患者生存期的影响。P<0.05或P<0.01表示差?
【作者单位】: 河北医科大学第四医院河北省肿瘤研究所病理研究室;
【基金】:国家自然科学基金资助项目(No.81472335,No.81572441) 河北省自然科学基金资助项目(No.H2013206315)~~
【分类号】:R735.1
【参考文献】
相关期刊论文 前2条
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【共引文献】
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【二级参考文献】
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本文编号:2543332
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