MsRCI2A、MsRCI2B、MsRCI2C基因超量表达对苜蓿耐碱性的影响
发布时间：2021-07-18 16:47
紫花苜蓿是我国重要的多年生的豆科植物,其具有高产、营养成分多样化及抗逆性强的特点,但恶化的土地条件仍限制了苜蓿的产量。多个研究表明RCI2/PMP3类基因作为多基因家族普遍存在于植物中,可响应多种非生物胁迫,包括低温、干旱、盐,且被激素诱导。且多个研究表明RCI2/PMP3基因在植物中的超量表达可通过提高膜的稳定性及保持细胞内的离子平衡来增加抗多种非生物胁迫的耐力。关于RCI2类基因在苜蓿中的超量表达是否可以提高苜蓿抗非生物胁迫的能力仍是未知的。本研究从紫花苜蓿中克隆了MsRCI2A,MsRCI2B和MsRCI2C基因,构建了三个植物表达载体以连接目的基因。通过根癌农杆菌介导的遗传转化方法转化紫花苜蓿子叶节,并通过分子生物学技术对所筛选的抗性植株进行检测。分析了MsRCI2A、MsRCI2B、MsRCI2C基因超量表达对苜蓿耐碱性的影响,为培育出耐逆性转基因苜蓿提供重要的理论依据以及为促进畜牧业的蓬勃发展奠定基础。本研究的主要研究结果如下:1.在紫花苜蓿中克隆了RCI2类基因家族成员MsRCI2A、MsRCI2B、MsRCI2C基因,蛋白质分子质量分别为5.931-kDa、5.946-...
【文章来源】：东北农业大学黑龙江省 211工程院校
【文章页数】：77 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
本实验技术路线图
图 2-1 蒺藜苜蓿中 RCI2 类基因在盐胁迫下的表达Fig. 2-1 Expression of RCI2 Genes in Alfalfa under Salt StresA、MsRCI2B、MsRCI2C基因在非生物胁迫下胁迫处理紫花苜蓿紫花苜蓿‘龙牧 806’种子，放在铺有湿润滤纸的平皿中，每子上方盖上湿润滤纸，将平皿放在光照培养箱中进行培养，温 16 h 光照，8 h 黑暗。每天观察，给予适当的水分，待幼芽长到，浇灌所需营养液为 1/4 Hoagland。16 天后转移至 1/4 Hoaglan更换一次营养液，温度及光照条件与上一致，待其水培适应 且长势一致的幼苗进行非生物胁迫处理。取材方法为每个时间复，分别取紫花苜蓿幼苗的根和叶片各 200 mg，标记后迅速放下：理所用浓度为 100 μM，取材时间点为处理前及胁迫处理后的 。
叶中的表达变化；图 B 为处理后各基因在根中的表ression changes of the genes in the leaves after treatmnes in the roots after treatment.NaHCO3处理下不同时间的紫花苜蓿 RCI2 基expression of the Alfalfa RCI2 genes under diff200 mM NaHCO3treatmentsRCI2B、MsRCI2C基因的克隆及sRCI2B、MsRCI2C基因的克隆结O3碱胁迫处理 48 h 时的紫花苜蓿幼苗根部的完整度，如图 3-5 显示，所提取的总 RNA 质
【参考文献】：
期刊论文
[1]黄土高原半干旱荒漠地区盐碱地优良豆科牧草适应性评价[J]. 路远,田福平,胡宇,张茜,崔光欣. 中国草食动物科学. 2017(06)
[2]盐碱地绿化技术研究[J]. 梁尧钦. 农业开发与装备. 2017(11)
[3]紫花苜蓿的营养成分分析[J]. 杨海青. 畜牧兽医科学(电子版). 2017(11)
[4]两汉魏晋南北朝时期苜蓿种植利用刍考[J]. 孙启忠,柳茜,陶雅,徐丽君. 草业学报. 2017(11)
[5]不同土壤中紫花苜蓿根瘤菌抗逆性的区别[J]. 杨淑君,何永攀,柯梅,李莉,史伟,吴枫,陈翔宇,侯钰荣. 草食家畜. 2017(05)
[6]植物干旱胁迫响应机制研究进展——从表型到分子[J]. 沈少炎,吴玉香,郑郁善. 生物技术进展. 2017(03)
[7]低温胁迫对紫花苜蓿生理指标的影响[J]. 马周文,秘一先,鲁学思,廖斌太,郭志强,师尚礼. 草原与草坪. 2016(06)
[8]汉代苜蓿传入我国的时间考述[J]. 孙启忠,柳茜,陶雅,徐丽君. 草业学报. 2016(12)
[9]植物低温胁迫响应机理的研究进展[J]. 薛爽,饶丽莎,左丹丹,汪凤林,林思祖. 安徽农业科学. 2016(33)
[10]根瘤菌在污染土壤修复中的地位和作用[J]. 黄兴如,张彩文,张晓霞. 中国土壤与肥料. 2016(05)
博士论文
[1]两种典型盐生植物耐盐机理及应用耐盐植物改良盐渍土研究[D]. 李瑞利.南开大学 2010
本文编号：3289969
【文章来源】：东北农业大学黑龙江省 211工程院校
【文章页数】：77 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
本实验技术路线图
图 2-1 蒺藜苜蓿中 RCI2 类基因在盐胁迫下的表达Fig. 2-1 Expression of RCI2 Genes in Alfalfa under Salt StresA、MsRCI2B、MsRCI2C基因在非生物胁迫下胁迫处理紫花苜蓿紫花苜蓿‘龙牧 806’种子，放在铺有湿润滤纸的平皿中，每子上方盖上湿润滤纸，将平皿放在光照培养箱中进行培养，温 16 h 光照，8 h 黑暗。每天观察，给予适当的水分，待幼芽长到，浇灌所需营养液为 1/4 Hoagland。16 天后转移至 1/4 Hoaglan更换一次营养液，温度及光照条件与上一致，待其水培适应 且长势一致的幼苗进行非生物胁迫处理。取材方法为每个时间复，分别取紫花苜蓿幼苗的根和叶片各 200 mg，标记后迅速放下：理所用浓度为 100 μM，取材时间点为处理前及胁迫处理后的 。
叶中的表达变化；图 B 为处理后各基因在根中的表ression changes of the genes in the leaves after treatmnes in the roots after treatment.NaHCO3处理下不同时间的紫花苜蓿 RCI2 基expression of the Alfalfa RCI2 genes under diff200 mM NaHCO3treatmentsRCI2B、MsRCI2C基因的克隆及sRCI2B、MsRCI2C基因的克隆结O3碱胁迫处理 48 h 时的紫花苜蓿幼苗根部的完整度，如图 3-5 显示，所提取的总 RNA 质
【参考文献】：
期刊论文
[1]黄土高原半干旱荒漠地区盐碱地优良豆科牧草适应性评价[J]. 路远,田福平,胡宇,张茜,崔光欣. 中国草食动物科学. 2017(06)
[2]盐碱地绿化技术研究[J]. 梁尧钦. 农业开发与装备. 2017(11)
[3]紫花苜蓿的营养成分分析[J]. 杨海青. 畜牧兽医科学(电子版). 2017(11)
[4]两汉魏晋南北朝时期苜蓿种植利用刍考[J]. 孙启忠,柳茜,陶雅,徐丽君. 草业学报. 2017(11)
[5]不同土壤中紫花苜蓿根瘤菌抗逆性的区别[J]. 杨淑君,何永攀,柯梅,李莉,史伟,吴枫,陈翔宇,侯钰荣. 草食家畜. 2017(05)
[6]植物干旱胁迫响应机制研究进展——从表型到分子[J]. 沈少炎,吴玉香,郑郁善. 生物技术进展. 2017(03)
[7]低温胁迫对紫花苜蓿生理指标的影响[J]. 马周文,秘一先,鲁学思,廖斌太,郭志强,师尚礼. 草原与草坪. 2016(06)
[8]汉代苜蓿传入我国的时间考述[J]. 孙启忠,柳茜,陶雅,徐丽君. 草业学报. 2016(12)
[9]植物低温胁迫响应机理的研究进展[J]. 薛爽,饶丽莎,左丹丹,汪凤林,林思祖. 安徽农业科学. 2016(33)
[10]根瘤菌在污染土壤修复中的地位和作用[J]. 黄兴如,张彩文,张晓霞. 中国土壤与肥料. 2016(05)
博士论文
[1]两种典型盐生植物耐盐机理及应用耐盐植物改良盐渍土研究[D]. 李瑞利.南开大学 2010
本文编号：3289969
本文链接：https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/3289969.html
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