两个水稻叶形材料的遗传分析与精细定位
发布时间：2022-01-09 23:49
水稻（Oryza sativa L.）是世界上重要的粮食作物,培育历史悠久。叶片作为光合和呼吸作用的主要营养器官,其形态结构的建成影响着植株一系列的生长发育。筛选和鉴定新的叶形突变材料,可为研究叶发育调控机制和塑造叶片理想形态打下基础,对株型育种中提高产量和改善米质有着重要的理论意义和应用价值。利用EMS（ethyl methane sulphonate）诱变粳稻品种武运粳31号（W31）获得一份水稻窄叶突变体nal12（narrow leaf 12）;测量各项表型数据,并开展组织切片和显微观察;将突变体nal12与籼稻品种台中本地1号（TN1）杂交,在F2代分离群体中选取了1709个具窄叶突变表型的单株,通过已有的SSR、STS和新开发的分子标记进行精细定位。nal12在幼苗期就表现出了窄叶性状,在成熟期植株较野生型矮小,分蘖增多,茎秆变细,叶片直立;经组织切片观察分析,nal12叶片变窄是由于大脉和小脉数量减少造成的;遗传分析表明该窄叶表型受单一隐性核基因调控;该基因最终被定位在第10染色体上LC2-RF37与LC4R-RF39标记之间约64.7 kb的范围,...
【文章来源】：浙江师范大学浙江省
【文章页数】：105 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
SAM中叶极性的建立与叶原基的起始[11]
以达到控制 SAM 中干细胞数目的目的[19]。值得一提的是，CLV2 在这个反应中为 CLV3-CLV1 受体复合物的积累起到了维持稳定性的作用。反过来，当 SAM 内干细胞数目不够时，CLV3 的含量会减少，WUS 基因的表达也能提高。WUS-CLV 两者相互作用以保持干细胞特异性[20,21,22]。此类反馈调控机制，能够确保 SAM 茎顶端分生组织在分化时干细胞数目的减少和分裂制造新的干细胞两者间保持良好的平衡（图 1.2）[23,24]。综上，CLV1~3 三者都是在 SAM 的中心区域表达且能抑制干细胞增殖的基因。
图 1.3 叶原基的起始[25]Figure 1.3 Initiation of leaf primordium[25]除了以上三类激素，ARP 家族基因也涉及调控 KNOX 的表达，包括 A（ASYMMETRIC LEAVES1）、RS2（ROUGH SHEATH2）和 PHAN（PHANTASTICA）, 者分别来源于拟南芥、玉米和金鱼草[50,51,52]。三种基因都编码一类 MYB 结构域转因子。在叶原基的起始上中，ARP 家族基因与 KNOX 基因呈对抗作用。KNOX 基的 STM 可负向调节 AS1，以保证分生组织的统一性。反过来，干细胞需要继续分化下调的 AS1 信号又可抑制 BP、KNAT2 和 KNAT6 这三类基因的表达[53]。A（ASYMMETRIC LEAVES2）编码 LOB （LATERAL ORGAN BOUNDARIES）植物定结构域蛋白，AS1 和 AS2 在分子结构和遗传功能上相似，但表达模式不一致。两形成的蛋白阻遏复合体可直接与 KNOX 启动子特定区域结合，进而阻碍 DNA 链与合酶的结合来抑制 KNOX 基因在叶片中的的表达[54,55]。因此，AS1 与 KNOX 基因
【参考文献】：
期刊论文
[1]运用SLAF-seq技术构建水稻高密度遗传图谱[J]. 彭强,叶生鑫,黄龙,张大双,刘颖,吴健强,张玉珊,朱速松. 分子植物育种. 2016(08)
[2]水稻窄叶突变体nal10的鉴定与基因精细定位[J]. 方云霞,朱丽,潘江杰,余海平,薛大伟,饶玉春,王小虎,石珍源,张栋,祝阳舟,董国军,曾大力,张光恒,郭龙彪,胡江,钱前. 中国水稻科学. 2015(06)
[3]利用高密度SNP标记定位水稻粒形相关QTL[J]. 胡苗,孙志忠,孙学武,谭炎宁,余东,刘瑞芬,袁贵龙,丁佳,袁定阳,段美娟. 杂交水稻. 2015(05)
[4]水稻叶片形态建成分子调控机制研究进展[J]. 徐静,王莉,钱前,张光恒. 作物学报. 2013(05)
[5]水稻叶脉发育的研究进展[J]. 邹良平,彭明. 中国农业科技导报. 2013(01)
[6]水稻窄叶白化突变体nul1的鉴定与基因定位[J]. 王峰,唐彦强,苗润隆,徐芳芳,林婷婷,何光华,桑贤春. 科学通报. 2012(22)
[7]利用重测序的水稻染色体片段代换系群体定位剑叶形态QTL[J]. 徐建军,赵强,赵元凤,朱磊,徐辰武,顾铭洪,韩斌,梁国华. 中国水稻科学. 2011(05)
[8]水稻细卷叶突变体nrl2t的遗传分析和基因定位[J]. 王德仲,桑贤春,游小庆,王增,王秋实,赵芳明,凌英华,李云峰,何光华. 作物学报. 2011(07)
[9]植物叶发育的分子机理[J]. 严松,严长杰,顾铭洪. 遗传. 2008(09)
[10]杂交水稻超高产育种[J]. 袁隆平. 杂交水稻. 1997(06)
硕士论文
[1]水稻圆粒突变体T135和窄叶突变体T88的鉴定与基因定位[D]. 韩思迪.南京农业大学 2016
[2]水稻窄叶白化突变体nul1（t）的鉴定与基因定位[D]. 林婷婷.西南大学 2015
本文编号：3579668
【文章来源】：浙江师范大学浙江省
【文章页数】：105 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
SAM中叶极性的建立与叶原基的起始[11]
以达到控制 SAM 中干细胞数目的目的[19]。值得一提的是，CLV2 在这个反应中为 CLV3-CLV1 受体复合物的积累起到了维持稳定性的作用。反过来，当 SAM 内干细胞数目不够时，CLV3 的含量会减少，WUS 基因的表达也能提高。WUS-CLV 两者相互作用以保持干细胞特异性[20,21,22]。此类反馈调控机制，能够确保 SAM 茎顶端分生组织在分化时干细胞数目的减少和分裂制造新的干细胞两者间保持良好的平衡（图 1.2）[23,24]。综上，CLV1~3 三者都是在 SAM 的中心区域表达且能抑制干细胞增殖的基因。
图 1.3 叶原基的起始[25]Figure 1.3 Initiation of leaf primordium[25]除了以上三类激素，ARP 家族基因也涉及调控 KNOX 的表达，包括 A（ASYMMETRIC LEAVES1）、RS2（ROUGH SHEATH2）和 PHAN（PHANTASTICA）, 者分别来源于拟南芥、玉米和金鱼草[50,51,52]。三种基因都编码一类 MYB 结构域转因子。在叶原基的起始上中，ARP 家族基因与 KNOX 基因呈对抗作用。KNOX 基的 STM 可负向调节 AS1，以保证分生组织的统一性。反过来，干细胞需要继续分化下调的 AS1 信号又可抑制 BP、KNAT2 和 KNAT6 这三类基因的表达[53]。A（ASYMMETRIC LEAVES2）编码 LOB （LATERAL ORGAN BOUNDARIES）植物定结构域蛋白，AS1 和 AS2 在分子结构和遗传功能上相似，但表达模式不一致。两形成的蛋白阻遏复合体可直接与 KNOX 启动子特定区域结合，进而阻碍 DNA 链与合酶的结合来抑制 KNOX 基因在叶片中的的表达[54,55]。因此，AS1 与 KNOX 基因
【参考文献】：
期刊论文
[1]运用SLAF-seq技术构建水稻高密度遗传图谱[J]. 彭强,叶生鑫,黄龙,张大双,刘颖,吴健强,张玉珊,朱速松. 分子植物育种. 2016(08)
[2]水稻窄叶突变体nal10的鉴定与基因精细定位[J]. 方云霞,朱丽,潘江杰,余海平,薛大伟,饶玉春,王小虎,石珍源,张栋,祝阳舟,董国军,曾大力,张光恒,郭龙彪,胡江,钱前. 中国水稻科学. 2015(06)
[3]利用高密度SNP标记定位水稻粒形相关QTL[J]. 胡苗,孙志忠,孙学武,谭炎宁,余东,刘瑞芬,袁贵龙,丁佳,袁定阳,段美娟. 杂交水稻. 2015(05)
[4]水稻叶片形态建成分子调控机制研究进展[J]. 徐静,王莉,钱前,张光恒. 作物学报. 2013(05)
[5]水稻叶脉发育的研究进展[J]. 邹良平,彭明. 中国农业科技导报. 2013(01)
[6]水稻窄叶白化突变体nul1的鉴定与基因定位[J]. 王峰,唐彦强,苗润隆,徐芳芳,林婷婷,何光华,桑贤春. 科学通报. 2012(22)
[7]利用重测序的水稻染色体片段代换系群体定位剑叶形态QTL[J]. 徐建军,赵强,赵元凤,朱磊,徐辰武,顾铭洪,韩斌,梁国华. 中国水稻科学. 2011(05)
[8]水稻细卷叶突变体nrl2t的遗传分析和基因定位[J]. 王德仲,桑贤春,游小庆,王增,王秋实,赵芳明,凌英华,李云峰,何光华. 作物学报. 2011(07)
[9]植物叶发育的分子机理[J]. 严松,严长杰,顾铭洪. 遗传. 2008(09)
[10]杂交水稻超高产育种[J]. 袁隆平. 杂交水稻. 1997(06)
硕士论文
[1]水稻圆粒突变体T135和窄叶突变体T88的鉴定与基因定位[D]. 韩思迪.南京农业大学 2016
[2]水稻窄叶白化突变体nul1（t）的鉴定与基因定位[D]. 林婷婷.西南大学 2015
本文编号：3579668
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