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野生二粒小麦盐胁迫相关miRNA的鉴定及其叶绿体基因RNA编辑位点的预测与分析

发布时间:2017-08-07 14:33

  本文关键词:野生二粒小麦盐胁迫相关miRNA的鉴定及其叶绿体基因RNA编辑位点的预测与分析


  更多相关文章: 野生二粒小麦 mi RNA测序 qRT-PCR RNA编辑 RT-PCR


【摘要】:野生二粒小麦是现代四倍体及六倍体栽培小麦的野生祖先,因其带有很多重要的农艺特性,被认为是小麦育种实践中重要的种质资源库。微小RNA(即microRNA,简称miRNA)是一类广泛存在于生物体内的非编码单链小RNA,通过碱基的互补配对与靶基因结合达到调控植物细胞内相应的生理生化反应的作用效果。RNA编辑通过在mRNA水平上进行一系列的碱基插入、删除或者碱基的修饰等遗传信息加工过程使RNA成熟,是高等植物叶绿体基因转录后表达调控的一种重要方式。本研究将植物材料的RNA样品送公司,对植物miRNA进行高通量测序,对测得的结果加以整合分析,在测定mi RNA的同时,本研究还利用生物信息学工具预测法以及与RT-PCR结合的方法,对野生二粒小麦叶绿体基因的RNA编辑位点进行了预测和鉴定。得到如下结果:1.共得到保守的190条前体mi RNA、161条成熟mi RNA以及223条前体novel mi RNA,140条成熟novel miRNA。2.后续的qRT-PCR结果显示mi RNA166b,miRNA171a,miRNA393a,miRNA N25,miRNA N38,miRNA N41和mi RNA N92等七个miRNA在受到盐胁迫时,表达量有明显变化,这说明在野生二粒小麦小麦应对环境盐胁迫时,这七个miRNA可能与盐胁迫相关。3.利用生物信息学工具对野生二粒小麦叶绿体基因组序列进行预测,结果共发现了分布于15个基因上的35个编辑位点,且都是C到U的转换形式,在这些预测结果中ndhB包含的编辑位点数量最多,达9个。4.在此基础上,随机选取5个基因对其编辑位点进行了测序验证;进一步对编辑后编码蛋白的二级结构和跨膜结构域进行了预测,发现编辑后所有基因均发生了二级结构的改变,但只有ndhB的跨膜结构域因为碱基的改变而发生了变化。5.最后,将预测到的野生二粒小麦叶绿体基因RNA编辑位点与其他7种禾本科物种的RNA编辑位点进行比较后,共发现17个编辑位点在这些种间具有保守性,相比于其他物种,野生二粒小麦与普通小麦和粗山羊草在很多编辑位点上保持很高的一致度。通过本研究,我们在miRNA及叶绿体基因的RNA编辑方面分别对野生二粒小麦响应盐胁迫机制进行了研究,qRT-PCR和RT-PCR依次对miRNA的高通量测序结果及叶绿体基因RNA编辑的准确性进行了验证。这不仅为野生二粒小麦抗盐机制的研究提供了相关的研究依据,还在一定程度上对普通小麦的育种实践起到一定的指导作用。
【关键词】:野生二粒小麦 mi RNA测序 qRT-PCR RNA编辑 RT-PCR
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S512.1
【目录】:
  • 摘要6-8
  • abstract8-12
  • 第一章 文献综述12-26
  • 1.1 小麦与盐胁迫12-14
  • 1.1.1 小麦的形态及意义12
  • 1.1.2 野生二粒小麦是重要的种质资源12-13
  • 1.1.3 盐对小麦的影响13-14
  • 1.2 mi RNA简介14-20
  • 1.2.1 miRNA的生物起源14
  • 1.2.2 miRNA的发现及研究发展过程14-15
  • 1.2.3 miRNA的合成及成熟过程15
  • 1.2.4 miRNA调节机制15-16
  • 1.2.5 动物中mi RNA功能16-17
  • 1.2.6 植物中mi RNA17-18
  • 1.2.7 植物mi RNA研究技术概述18
  • 1.2.8 miRNA测序18-19
  • 1.2.9 植物mi RNA生物信息学分析工具19-20
  • 1.3 叶绿体基因RNA编辑20-24
  • 1.3.1 RNA editing的发现20-21
  • 1.3.2 RNA editing的研究进展21-22
  • 1.3.3 RNA编辑效应因子22-23
  • 1.3.4 RNA编辑的预测23-24
  • 1.4 本研究的目的意义及研究内容24-26
  • 1.4.1 研究目的及意义24-25
  • 1.4.2 研究内容25-26
  • 第二章 盐胁迫相关MICRORNA的鉴定26-45
  • 2.1 试验材料26
  • 2.2 试验方法26-31
  • 2.2.1 植物总RNA的提取26-27
  • 2.2.2 RNA样品的纯化27
  • 2.2.3 microRNA的测定27-29
  • 2.2.4 qRT-PCR验证法29-31
  • 2.3 结果与分析31-44
  • 2.3.1 样品RNA提取的初级检测31-32
  • 2.3.2 送测样品的质检结果32
  • 2.3.3 测序结果的整理32-34
  • 2.3.4 保守mi RNA的鉴定34-35
  • 2.3.5 Novel mi RNA的鉴定35-36
  • 2.3.6 二级结构的预测36
  • 2.3.7 野生二粒小麦在盐处理及未处理条件下的表达谱分析36-37
  • 2.3.8 靶基因的预测37-38
  • 2.3.9 qRT-PCR法验证结果分析38-44
  • 2.4 讨论44-45
  • 第三章 叶绿体基因RNA编辑的鉴定45-60
  • 3.1 植物材料45
  • 3.2 试验方法45-51
  • 3.2.1 常用试剂配制45-46
  • 3.2.2 样品总RNA的提取46
  • 3.2.3 样品DNA的提取46-47
  • 3.2.4 反转录合成cDNA47
  • 3.2.5 目的基因的获取、预测及验证47-51
  • 3.3 结果与分析51-58
  • 3.3.1 叶绿体基因RNA编辑位点的预测51-53
  • 3.3.2 总DNA及总RNA的提取53
  • 3.3.3 叶绿体基因RNA编辑位点的PCR验证53
  • 3.3.4 叶绿体基因RNA编辑位点的生物信息学分析53-55
  • 3.3.5 禾本科作物叶绿体基因RNA编辑位点间的比较55-58
  • 3.4 讨论58-60
  • 第四章 结论与展望60-61
  • 参考文献61-71
  • 致谢71-72
  • 作者简介72

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本文编号:635205

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