肺脏特异性表达Cre重组酶转基因小型猪的建立
本文关键词:肺脏特异性表达Cre重组酶转基因小型猪的建立,由笔耕文化传播整理发布。
《吉林大学》 2014年
肺脏特异性表达Cre重组酶转基因小型猪的建立
雒伟伟
【摘要】:利用Cre/loxP系统制备条件性基因敲除小鼠动物模型是活体内研究基因功能的有效策略。然而,在某些方面,小鼠、大鼠等啮齿类动物并不适合于人类疾病模型。猪作为哺乳动物,在基因组水平、器官结构大小、生理特征等方面都与人类更接近。因此,人类疾病的猪动物模型能够更好地反应疾病的发生、发展过程和病理特征。在本实验中,利用猪体细胞核移植技术(somatic cell nuclear transfer,SCNT)构建组织特异性表达Cre重组酶转基因小型猪,为进行组织特异性基因敲除小型猪动物模型构建提供Cre重组酶表达工具猪。 为了获得肾脏特异性表达Cre重组酶的转基因小型猪,我们选择猪源AQP2基因启动子区序列来驱动Cre重组酶表达。AQP2(Aquaporin2)属于水通道蛋白家族,主要表达于哺乳动物肾脏集合管细胞。基于小型猪体内AQP2表达分析结果与AQP2基因启动子区序列多重比对分析结果,选择猪源AQP2转录起始位点上游3,090bp序列来驱动Cre重组酶表达。构建的Cre表达载体命名为AQP2-Cre,全长11,045bp。载体瞬时转染五种细胞系:PK15、Hela、A549、HepG-2、LLC-PK1,并分析Cre重组酶表达情况。检测结果表明,AQP2-Cre在LLC-PK1细胞中表达,其它细胞系中不表达。 AQP2-Cre载体线性化后,转染中国实验小型猪胎儿成纤维细胞。利用含G418(450μg/ml)的选择性DMEM培养基筛选14天左右,获得具有neo抗性的细胞克隆。提取细胞克隆基因组DNA,利用跨Cre表达序列与AQP2基因启动子区序列的跨区检测引物进行PCR鉴定,并测序鉴定。选取三株细胞状态良好的阳性AQP2-Cre转基因细胞克隆作为核供体细胞,共制备1427枚重构胚,分别输入到5头待孕母猪输卵管。结果,3头受孕母猪顺利分娩,共获得12头克隆小型猪(均来自同一细胞克隆)。利用AQP2-Cre跨区检测引物鉴定新生克隆小型猪,结果表明12头全部为阳性。测序结果表明转基因小型猪基因组整合了完整的Cre表达序列。 利用RT-PCR与western blotting分析转基因小型猪Cre表达情况。检测结果显示,Cre重组酶表达于AQP2-Cre转基因小型猪肺脏组织,其它组织中不表达。免疫组化分析结果表明,Cre重组酶表达于肺泡上皮细胞,且细胞质与细胞核均有表达。 利用反向PCR (Inverse PCR)分析外源基因在AQP2-Cre转基因小型猪基因组上的整合位点,利用绝对定量PCR (Absolutly qRT-PCR)分析各转基因小型猪基因组的Cre拷贝数。共检测到4个AQP2-Cre整合位点,Cre拷贝数为8-12。不同转基因小型猪,或同一转基因小型猪各组织基因组样本中,Cre拷贝数差异均不明显(P0.5)。随后,检测了5头不同月龄(新生、1月龄、5月龄、10月龄、15月龄)转基因小型猪肺组织基因组中AQP2-Cre整合情况,并利用相对定量PCR (Relative qRT-PCR)分析了Cre重组酶的表达变化。分析结果表明,不同月龄AQP2-Cre转基因小型猪,Cre拷贝数无明显变化(P0.5),且Cre重组酶能够稳定表达(P0.5)。 为进一步分析Cre重组酶在传代过程中的表达变化,我们选择5月龄转基因小型猪与正常非转基因小型猪杂交,获得3头为阳性AQP2-Cre转基因小型猪。分析结果表明F1代阳性转基因小型猪同样为肺泡上皮细胞特异性表达Cre重组酶。AQP2-Cre整合情况分析结果表明,F1代转基因小型猪基因组样本中Cre拷贝数为5-6。相比较于F0代转基因小型猪,Cre拷贝数明显减少(P0.05),且其中一头转基因小型猪基因组中只检测到3个整合位点。利用相对定量PCR方法分析转基因小型猪传代过程中Cre重组酶表达水平变化。结果显示,,传代后Cre重组酶表达量无明显变化(P0.05)。 在本实验中,虽然没有明确导致AQP2-Cre转基因猪肺脏特异性表达Cre重组酶的原因。但分析结果表明,本实验所制备AQP2-Cre转基因小型猪能够稳定表达Cre重组酶。结合实验室之前进行的Cre重组酶活性研究结果,认为该AQP2-Cre转基因小型猪能够应用于肺脏特异性基因敲除猪模型的构建。
【关键词】:
【学位授予单位】:吉林大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2014
【分类号】:Q789
【目录】:
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