土壤中干巴菌菌丝体测定及分析
【学位单位】:云南大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:S646
【部分图文】:
2.1.3琼脂糖凝胶电泳及测序??取2^LPCR产物在2%琼脂糖凝胶上电泳,GeneFinderTM染色,紫外透??射仪检测见图2。将有单一条带的PCR产物送到昆明硕擎生物科技有限公司测??序,测序均未获得有效序列,见图2。??应用上述物种的单拷贝基因引物,均未成功扩增出干巴菌的相应基因片段。??15??
Figure?4?Sequencing?map?of?partial?primer?amplification?results?of?single?copy?gene?of??Thelephora?ganbajun?Zang??2.2.3干巴菌单拷贝基因的验证??割胶回收:准备A6、A14、A28、A45、A50和A51这6对引物扩增的PCR产??物,取25卟PCR扩增产物和5卟Unloading?buffer混匀,2%的琼脂糖凝胶电??泳,PCR产物回收时做割胶回收。具体回收具体步骤按照从云南晨绿生物科技??有限公司购买的天根DNA纯化回收试剂盒(货号为:DP214)操作,把回收的??DNA放到-20°C保存备用。??DNA片段两端连接腺嘌呤:由于PCR试剂金牌MIX扩增的基因片段两端没有??连接腺嘌呤,回收的DNA片段两端需要加入腺嘌呤。反应体系为:回收产物??22??
?云南大学硕士毕业论文???的甘油溶液(按照1:?5的比例加入),固定在摇床上180转37°C培养1?h,然??后放置于-20"C的冰箱中保存。??测序结果用seqMan和BioEdit软件进行比对,30个插入载体中单克隆的序??列进行比对并与之前PCR扩增序列及从基因组中挑选出来的原单拷贝基因序??列比对,序列完全相同的有:引物A6、A28、A50和引物A51扩增的基因片段,??分别见图5、图6、图7和图8。因此引物A6、A28、A50和引物A51均为干??巴菌单拷贝基因特异性引物。??*e-1?G:::.?:?:?:?rarC/^.--GrA?■?:GG^r3*CGA:?;?.?:?rTCC:C.?;?.?T?:?A?久;《〇〇:.二〇;:-.|1*!:广----:s:?/GG:1:??A4-2?a.-.?C?.3.?;;G5-..-3;.t5C;.??-?.:?G?:.?:?.?::■:.?.?.-3;.?.?.?S33;.?ACC?.?J--?CA?;?:r〇.?.?C?.?3?.?.Ci.:??--***-'?■ ̄-'
【参考文献】
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本文编号:2874996
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