日本结缕草ABA途径对盐胁迫响应分子机制
发布时间:2020-12-08 10:27
土壤盐碱化是草坪草常遇到的自然逆境之一,结缕草(Zoysia)是一种耐盐碱能力较强的暖季型草坪草,本研究从分析结缕草盐胁迫转录组入手,筛选鉴定其盐胁迫应答相关基因,从转录组水平揭示日本结缕草(Zoysiajaponica Steud.)适应盐胁迫环境的分子机制,为植物耐盐性分子育种提供一定的理论基础。诸多研究表明,ABA途径与植物的抗盐性密切相关,本研究针对结缕草盐胁迫转录组分析ABA生物合成途径中及其信号转导路径的基因,共有1455条Unigenes可以比对上GO数据库,建立了 73条ABA合成和调控的对应关系,其中有798个上调和647条下调Unigenes。响应于ABA的GO注释一共有65条Unigenes,充分验证了 ABA在结缕草应答盐胁迫下有着重要调节作用。进一步通过KEGG注释分析将ABA合成追溯到植物基础代谢糖酵解、萜类化合物生物合成和类胡萝卜素合成的主线路上的各个基因,在糖酵解合成的50个pathway中,本研究追溯到有421个Unigenes富集在24个pathway中;萜类化合物合成途径的47个pathway中追溯到106个Unigenes富集在24个pathwa...
【文章来源】:北京林业大学北京市 211工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:48 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图3-1?POD酶活性变化??-
?T5??测定时间??图3-1?POD酶活性变化??Fig.3-1?The?activity?change?of?peroxidase??SOD活性的变化趋势大体跟POD相似,先上升后下降。根部活性在T3时达到??高峰,高于对照280%,之后活性逐渐降低。叶片的活性相对于根部小,根酶活性最??高点在T4,高于对照158%。叶片与根部变化在T3时期变化差异最大,其中根部活性??达到了叶片活性的两倍以上。??盐胁迫下根与叶片的SOD酶活性??900?r??_?800?-?論??^?700?-?S?疆根部??^?600?-?;?士?□叶片??B?500?-?■?■?丁??S?400?-?園?_?PH?_?TO:对照组??W?300?-?S?r^1?W?T3:盐胁迫?2h??S?9nn?命?,‘:?;,?T4:叶片发黄时??lioofl^?I?5!?TS ̄??TO?T3?T4?T5??测定时间??图3-2?SOD酶活性变化??Fig.3-2?The?activity?change?of?superoxide?dismutase??3.1.2细胞膜透性的测定??当植物受到各种逆境胁迫时,最先受损的组织为细胞膜,其功能和结构的损坏会??使膜透性增大。因此
细胞膜受害程度与其成正比。细胞膜透性的大小可间接的用组织的相对电导率??衡量。组织相对电导率越高,说明细胞膜完整性受损的程度就越大。??因此,通过图3-3可以看出,结缕草受到盐胁迫后其细胞膜透性随胁迫时间显著??升高,盐胁迫2h时显著高于对照(P<0.05),说明盐胁迫前期对日本结缕草的膜透性??的影响较大,从检测结果来看膜透性从盐处理开始两个小时内迅速增大,受到破坏程??度较严重,2h之后呈现缓慢上升趋势,T4和T5时期变化不显著,虽略微变动基本维??持在一个相对稳定的状态,说明膜透性在长期盐胁迫下慢慢适应了环境并达到了最大??透性其至是极限程度,叶片与根部呈现相同变化。??受到盐胁迫后日本结缕草的叶片和根部的电导率变化趋势如图3-3。??^70?f?^?70「??5;::?63,5?5?1?:?63'2??韋[40?_?/?起?40?_??i3〇?-?/?i?30?-?r32-6??蜜?1?26.2?骛??晷?20?_?§?20?-??■Sit?居??戈?10???I?10?-??^?〇??1?1?1?1??Q??I?|?|?|???TO?T3?T4?T5?TO?T3?T4?T5??测定时间?测定时间??TO:对照组?T3:盐胁迫2h?T4:叶片发黄时?T5:植株萎蔫时??图3-3细胞膜透性变化??Fig.3-3?The?Changes?in?cell?membrane?permeability??3.1.3?ABA含量分析??研究ABA信号转导途径的关键是测定其积累量和调控基因的表达量
【参考文献】:
期刊论文
[1]日本结缕草感染立枯丝核菌初期NCED基因的表达及响应分析[J]. 李麟坤,何旭升,曾会明. 河北农业大学学报. 2017(03)
[2]偏头痛相关酶和KEGG通路分析[J]. 黄瑞,郑珩. 生物信息学. 2014(03)
[3]外源脱落酸对盐胁迫下灰毡毛忍冬幼苗生理特性的影响[J]. 朱菲菲,刘奕清,陈泽雄,兰建彬. 中药材. 2013(07)
[4]ABA与植物耐盐信号转导途径的研究进展[J]. 毕影东,刘清醒,郭长虹,郭东林. 中国农学通报. 2013(09)
[5]裸大麦PKABA1基因实时荧光定量PCR方法的建立[J]. 吴昆仑,邓晓青,姚晓华. 江苏农业科学. 2012(12)
[6]高通量转录组测序的数据分析与基因发掘[J]. 周华,张新,刘腾云,余发新. 江西科学. 2012(05)
[7]NAC转录因子在植物抗病和抗非生物胁迫反应中的作用[J]. 孙利军,李大勇,张慧娟,宋凤鸣. 遗传. 2012(08)
[8]PYR/PYL/RCAR蛋白介导植物ABA的信号转导[J]. 胡帅,王芳展,刘振宁,刘亚培,余小林. 遗传. 2012(05)
[9]ABA和SA对于提高植物抗旱及抗盐性的研究进展[J]. 任菲,张荣佳,陈强,白艳波,黄菲,李雪梅. 生物技术通报. 2012(03)
[10]盐胁迫对高羊茅生长及抗氧化系统的影响[J]. 樊瑞苹,周琴,周波,江海东. 草业学报. 2012(01)
博士论文
[1]小麦抗逆相关转录因子bZIP和NAC基因的功能研究[D]. 张丽娜.中国农业科学院 2014
硕士论文
[1]日本结缕草在机械损伤胁迫下的转录组测序及分析[D]. 李亚超.北京林业大学 2015
[2]大豆DREB/CBF转录因子GmDREB1A的克隆及功能鉴定[D]. 李艳杰.吉林大学 2014
[3]大豆bZIP转录因子GmbZIP-32的克隆与功能鉴定[D]. 雷婷婷.吉林大学 2013
[4]棉花GhWRKY17转录因子参与ABA信号途径及干旱、高盐胁迫反应[D]. 闫慧茹.山东农业大学 2013
[5]基于RNA-Seq技术的人转录组分析研究[D]. 陈超.中南大学 2011
本文编号:2904938
【文章来源】:北京林业大学北京市 211工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:48 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图3-1?POD酶活性变化??-
?T5??测定时间??图3-1?POD酶活性变化??Fig.3-1?The?activity?change?of?peroxidase??SOD活性的变化趋势大体跟POD相似,先上升后下降。根部活性在T3时达到??高峰,高于对照280%,之后活性逐渐降低。叶片的活性相对于根部小,根酶活性最??高点在T4,高于对照158%。叶片与根部变化在T3时期变化差异最大,其中根部活性??达到了叶片活性的两倍以上。??盐胁迫下根与叶片的SOD酶活性??900?r??_?800?-?論??^?700?-?S?疆根部??^?600?-?;?士?□叶片??B?500?-?■?■?丁??S?400?-?園?_?PH?_?TO:对照组??W?300?-?S?r^1?W?T3:盐胁迫?2h??S?9nn?命?,‘:?;,?T4:叶片发黄时??lioofl^?I?5!?TS ̄??TO?T3?T4?T5??测定时间??图3-2?SOD酶活性变化??Fig.3-2?The?activity?change?of?superoxide?dismutase??3.1.2细胞膜透性的测定??当植物受到各种逆境胁迫时,最先受损的组织为细胞膜,其功能和结构的损坏会??使膜透性增大。因此
细胞膜受害程度与其成正比。细胞膜透性的大小可间接的用组织的相对电导率??衡量。组织相对电导率越高,说明细胞膜完整性受损的程度就越大。??因此,通过图3-3可以看出,结缕草受到盐胁迫后其细胞膜透性随胁迫时间显著??升高,盐胁迫2h时显著高于对照(P<0.05),说明盐胁迫前期对日本结缕草的膜透性??的影响较大,从检测结果来看膜透性从盐处理开始两个小时内迅速增大,受到破坏程??度较严重,2h之后呈现缓慢上升趋势,T4和T5时期变化不显著,虽略微变动基本维??持在一个相对稳定的状态,说明膜透性在长期盐胁迫下慢慢适应了环境并达到了最大??透性其至是极限程度,叶片与根部呈现相同变化。??受到盐胁迫后日本结缕草的叶片和根部的电导率变化趋势如图3-3。??^70?f?^?70「??5;::?63,5?5?1?:?63'2??韋[40?_?/?起?40?_??i3〇?-?/?i?30?-?r32-6??蜜?1?26.2?骛??晷?20?_?§?20?-??■Sit?居??戈?10???I?10?-??^?〇??1?1?1?1??Q??I?|?|?|???TO?T3?T4?T5?TO?T3?T4?T5??测定时间?测定时间??TO:对照组?T3:盐胁迫2h?T4:叶片发黄时?T5:植株萎蔫时??图3-3细胞膜透性变化??Fig.3-3?The?Changes?in?cell?membrane?permeability??3.1.3?ABA含量分析??研究ABA信号转导途径的关键是测定其积累量和调控基因的表达量
【参考文献】:
期刊论文
[1]日本结缕草感染立枯丝核菌初期NCED基因的表达及响应分析[J]. 李麟坤,何旭升,曾会明. 河北农业大学学报. 2017(03)
[2]偏头痛相关酶和KEGG通路分析[J]. 黄瑞,郑珩. 生物信息学. 2014(03)
[3]外源脱落酸对盐胁迫下灰毡毛忍冬幼苗生理特性的影响[J]. 朱菲菲,刘奕清,陈泽雄,兰建彬. 中药材. 2013(07)
[4]ABA与植物耐盐信号转导途径的研究进展[J]. 毕影东,刘清醒,郭长虹,郭东林. 中国农学通报. 2013(09)
[5]裸大麦PKABA1基因实时荧光定量PCR方法的建立[J]. 吴昆仑,邓晓青,姚晓华. 江苏农业科学. 2012(12)
[6]高通量转录组测序的数据分析与基因发掘[J]. 周华,张新,刘腾云,余发新. 江西科学. 2012(05)
[7]NAC转录因子在植物抗病和抗非生物胁迫反应中的作用[J]. 孙利军,李大勇,张慧娟,宋凤鸣. 遗传. 2012(08)
[8]PYR/PYL/RCAR蛋白介导植物ABA的信号转导[J]. 胡帅,王芳展,刘振宁,刘亚培,余小林. 遗传. 2012(05)
[9]ABA和SA对于提高植物抗旱及抗盐性的研究进展[J]. 任菲,张荣佳,陈强,白艳波,黄菲,李雪梅. 生物技术通报. 2012(03)
[10]盐胁迫对高羊茅生长及抗氧化系统的影响[J]. 樊瑞苹,周琴,周波,江海东. 草业学报. 2012(01)
博士论文
[1]小麦抗逆相关转录因子bZIP和NAC基因的功能研究[D]. 张丽娜.中国农业科学院 2014
硕士论文
[1]日本结缕草在机械损伤胁迫下的转录组测序及分析[D]. 李亚超.北京林业大学 2015
[2]大豆DREB/CBF转录因子GmDREB1A的克隆及功能鉴定[D]. 李艳杰.吉林大学 2014
[3]大豆bZIP转录因子GmbZIP-32的克隆与功能鉴定[D]. 雷婷婷.吉林大学 2013
[4]棉花GhWRKY17转录因子参与ABA信号途径及干旱、高盐胁迫反应[D]. 闫慧茹.山东农业大学 2013
[5]基于RNA-Seq技术的人转录组分析研究[D]. 陈超.中南大学 2011
本文编号:2904938
本文链接:https://www.wllwen.com/nykjlw/yylw/2904938.html
最近更新
教材专著