红掌离体化学诱变技术的研究
发布时间：2021-07-16 10:24
红掌（Anthurium andraeaum）为天南星科花烛属多年生草本花卉,因其花色丰富、花叶形态独特、花期持久,被广泛应用于切花材料与盆栽观赏,具有极高的观赏价值和商业价值。近年来,随着红掌产业的快速发展,人们对红掌品种的多样化需求日趋明显。为了创新红掌种质、丰富育种素材,本研究以秋水仙素和甲基磺酸乙酯（EMS）为诱变剂,以红掌愈伤组织为材料,探讨了2种诱变剂对红掌愈伤组织生长分化的影响及其诱变效应,并对诱变材料进行了鉴定与分析,取得的主要结果如下。1、红掌多倍体离体诱导。分别以添加0.2、0.3、0.45 g/L（W/V）秋水仙素的液体培养基诱变处理红掌愈伤组织3、6、9、14 d,以获得多倍体植株。秋水仙素诱导多倍体的最佳处理组合为浓度0.3 g/L、处理时间9 d,再生苗变异率可达60%。在获得的再生苗群体中发现了9种不同类型的形态变异,其中加倍植株具有株型矮小、茎秆粗壮、叶片小而厚实、叶色浓绿、生长缓慢等特征。2、红掌多倍体植株的倍性鉴定。采用压片法对根尖进行染色体计数鉴定,从变异植株中检测到了四倍体细胞,其染色体数为2n=4x=60;而对照植株为二倍体,染色体数为2n=2...
【文章来源】：苏州大学江苏省 211工程院校
【文章页数】：73 页
【学位级别】：硕士
【文章目录】：
中文摘要
Abstract
引言
第一章 文献综述
1.1 植物化学诱变育种概述
1.1.1 化学诱变育种的发展历程
1.1.2 化学诱变剂种类
1.1.3 化学诱变育种的特点
1.1.4 植物离体化学诱变技术
1.2 秋水仙素诱变技术及其育种研究进展
1.2.1 多倍体植株的特点
1.2.2 染色体多倍化诱变剂
1.2.3 秋水仙素的诱变机理
1.2.4 多倍体鉴定方法
1.2.5 秋水仙素诱变育种的研究进展
1.3 EMS诱变技术及其育种研究进展
1.3.1 点突变化学诱变剂EMS
1.3.2 EMS的诱变机理
1.3.3 EMS诱导突变体的筛选与鉴定
1.3.4 EMS诱变育种的研究进展
1.4 红掌化学诱变育种的研究进展
1.4.1 红掌离体化学诱变的基础品种
1.4.2 红掌秋水仙素诱变方法
1.4.3 红掌多倍体鉴定方法
1.4.4 红掌EMS诱变及突变体鉴定
1.5 本研究的目的和意义
第二章 秋水仙素对红掌愈伤组织诱变效应的研究
2.1 材料与方法
2.1.1 植物材料
2.1.2 试剂与仪器
2.1.3 秋水仙素诱变处理方法
2.1.4 愈伤组织生长和不定芽分化的调查
2.1.5 再生苗的形态学观察
2.1.6 染色体观察
2.1.7 流式细胞仪分析
2.2 结果与分析
2.2.1 秋水仙素处理对愈伤组织不定芽分化的影响
2.2.2 秋水仙素处理对再生苗多倍体的诱导
2.2.3 红掌诱变再生苗倍性的染色体鉴定结果
2.2.4 红掌诱变再生苗倍性的流式细胞仪鉴定结果
2.3 讨论
2.3.1 红掌多倍体诱变材料和方法的选择
2.3.2 秋水仙素对红掌愈伤组织增殖分化及多倍化效应的影响
2.3.3 红掌多倍体鉴定方法的比较分析
2.3.4 红掌离体诱变再生苗中混倍体的分离
第三章 EMS对红掌愈伤组织诱变效应的研究
3.1 材料与方法
3.1.1 植物材料
3.1.2 试剂与仪器
3.1.3 EMS诱变处理方法
3.1.4 愈伤组织生长和不定芽诱导的调查
3.1.5 再生苗的形态学观察
3.1.6 数据处理
3.2 结果与分析
3.2.1 EMS处理对红掌愈伤组织生长的影响
3.2.2 EMS处理对红掌愈伤组织存活的影响
3.2.3 EMS处理对愈伤组织不定芽分化的影响
3.2.4 EMS处理对再生苗生长的影响
3.3 讨论
3.3.1 红掌EMS诱变适用材料的选择
3.3.2 EMS与红掌愈伤组织增殖和分化的关系
3.3.3 EMS与红掌再生苗形态变异的关系
3.3.4 EMS离体诱变处理技术的优化
第四章 红掌EMS诱变植株的RAPD检测
4.1 材料与方法
4.1.1 植物材料
4.1.2 试剂与仪器
4.1.3 叶片基因组DNA的提取
4.1.4 随机引物及筛选
4.1.5 RAPD反应与电泳检测
4.1.6 数据处理
4.2 结果与分析
4.2.1 红掌再生苗基因组DNA的提取及质量分析
4.2.2 EMS离体诱变再生苗的RAPD分析
4.2.3 EMS离体诱变再生苗与对照之间的相似性分析
4.3 讨论
4.3.1 影响红掌EMS离体诱变效应的因素分析
4.3.2 EMS诱变的形态变异与RAPD差异性的关系
4.3.3 红掌EMS诱变植株RAPD检测效果
第五章 结论
5.1 全文结论
5.2 特色与创新点
5.3 存在问题及今后课题
参考文献
攻读硕士学位期间发表的论文
附录
致谢
【参考文献】：
期刊论文
[1]红掌组培苗的移栽及养护管理关键技术[J]. 陈彦霖. 现代园艺. 2015(13)
[2]植物组培褐化发生机制的研究进展[J]. 冯代弟,王燕,陈剑平. 浙江农业学报. 2015(06)
[3]红掌主要病虫害及防治技术[J]. 白晓琦,单会霖,苏庆,罗玲. 现代农业科技. 2015(09)
[4]切花红掌不同品种组培快繁试验[J]. 党春娇,周志强,刘春,詹虹. 农业科学研究. 2015(01)
[5]流式细胞仪检测高等植物细胞核DNA含量的方法[J]. 汪艳,肖媛,刘伟,李婷婷,胡锐,乔志仙. 植物科学学报. 2015(01)
[6]红掌育种方法研究进展[J]. 易懋升,谢利,郭和蓉,曾瑞珍,黎扬辉,张志胜. 中国农学通报. 2015(04)
[7]甜叶菊甲基磺酸乙酯离体诱变及耐盐变异体的SRAP检测[J]. 周玉丽,崔广荣,胡能兵,何克勤,林平,舒英杰. 中草药. 2014(24)
[8]红掌杂交、诱变及倍性育种研究进展与评析[J]. 牛俊海,冷青云,林兴娥,黄明忠,杨光穗,尹俊梅. 热带农业科学. 2014(11)
[9]兰属杂交兰绿翡翠组培变异的RAPD检测与鉴定[J]. 肖文芳,李佐,尤毅,陈和明,吕复兵. 广东农业科学. 2014(21)
[10]红掌组培苗生根培养基的优化[J]. 牛瑞鹤,王晶,郑必平,祁伟,陈驰,谈建中. 安徽农业科学. 2014(29)
硕士论文
[1]秋水仙素诱导茉莉多倍体的研究[D]. 阮玉娟.西南大学 2014
[2]EMS诱变头花蓼（Polygonum capitatum Buch.-Ham.ex D. Don.）的初步研究[D]. 张凯.西南大学 2014
[3]腋花杜鹃再生体系建立和多倍体诱导及鉴定[D]. 陶俊锋.云南农业大学 2014
[4]红掌组培苗优质高效繁殖技术的研究[D]. 王晶.苏州大学 2014
[5]EMS诱导菊花突变体库的构建和光周期不敏感突变体的分子鉴定[D]. 蔡海燕.山东农业大学 2013
[6]EMS诱导黄瓜突变体的初步研究[D]. 张兵.山东农业大学 2012
[7]紫薇无性系建立及多倍体诱导技术研究[D]. 陈磊.天津大学 2011
[8]百合离体条件下的耐盐性评价和EMS诱变育种初步研究[D]. 高胡静.华中农业大学 2010
[9]EMS诱变越橘（Vaccinium L.）茎尖抗旱突变体的研究[D]. 陈凌.西南大学 2010
[10]丽格海棠抗茎腐病的生物学研究及EMS诱导的突变体筛选[D]. 张应红.四川农业大学 2009
本文编号：3286823
【文章来源】：苏州大学江苏省 211工程院校
【文章页数】：73 页
【学位级别】：硕士
【文章目录】：
中文摘要
Abstract
引言
第一章 文献综述
1.1 植物化学诱变育种概述
1.1.1 化学诱变育种的发展历程
1.1.2 化学诱变剂种类
1.1.3 化学诱变育种的特点
1.1.4 植物离体化学诱变技术
1.2 秋水仙素诱变技术及其育种研究进展
1.2.1 多倍体植株的特点
1.2.2 染色体多倍化诱变剂
1.2.3 秋水仙素的诱变机理
1.2.4 多倍体鉴定方法
1.2.5 秋水仙素诱变育种的研究进展
1.3 EMS诱变技术及其育种研究进展
1.3.1 点突变化学诱变剂EMS
1.3.2 EMS的诱变机理
1.3.3 EMS诱导突变体的筛选与鉴定
1.3.4 EMS诱变育种的研究进展
1.4 红掌化学诱变育种的研究进展
1.4.1 红掌离体化学诱变的基础品种
1.4.2 红掌秋水仙素诱变方法
1.4.3 红掌多倍体鉴定方法
1.4.4 红掌EMS诱变及突变体鉴定
1.5 本研究的目的和意义
第二章 秋水仙素对红掌愈伤组织诱变效应的研究
2.1 材料与方法
2.1.1 植物材料
2.1.2 试剂与仪器
2.1.3 秋水仙素诱变处理方法
2.1.4 愈伤组织生长和不定芽分化的调查
2.1.5 再生苗的形态学观察
2.1.6 染色体观察
2.1.7 流式细胞仪分析
2.2 结果与分析
2.2.1 秋水仙素处理对愈伤组织不定芽分化的影响
2.2.2 秋水仙素处理对再生苗多倍体的诱导
2.2.3 红掌诱变再生苗倍性的染色体鉴定结果
2.2.4 红掌诱变再生苗倍性的流式细胞仪鉴定结果
2.3 讨论
2.3.1 红掌多倍体诱变材料和方法的选择
2.3.2 秋水仙素对红掌愈伤组织增殖分化及多倍化效应的影响
2.3.3 红掌多倍体鉴定方法的比较分析
2.3.4 红掌离体诱变再生苗中混倍体的分离
第三章 EMS对红掌愈伤组织诱变效应的研究
3.1 材料与方法
3.1.1 植物材料
3.1.2 试剂与仪器
3.1.3 EMS诱变处理方法
3.1.4 愈伤组织生长和不定芽诱导的调查
3.1.5 再生苗的形态学观察
3.1.6 数据处理
3.2 结果与分析
3.2.1 EMS处理对红掌愈伤组织生长的影响
3.2.2 EMS处理对红掌愈伤组织存活的影响
3.2.3 EMS处理对愈伤组织不定芽分化的影响
3.2.4 EMS处理对再生苗生长的影响
3.3 讨论
3.3.1 红掌EMS诱变适用材料的选择
3.3.2 EMS与红掌愈伤组织增殖和分化的关系
3.3.3 EMS与红掌再生苗形态变异的关系
3.3.4 EMS离体诱变处理技术的优化
第四章 红掌EMS诱变植株的RAPD检测
4.1 材料与方法
4.1.1 植物材料
4.1.2 试剂与仪器
4.1.3 叶片基因组DNA的提取
4.1.4 随机引物及筛选
4.1.5 RAPD反应与电泳检测
4.1.6 数据处理
4.2 结果与分析
4.2.1 红掌再生苗基因组DNA的提取及质量分析
4.2.2 EMS离体诱变再生苗的RAPD分析
4.2.3 EMS离体诱变再生苗与对照之间的相似性分析
4.3 讨论
4.3.1 影响红掌EMS离体诱变效应的因素分析
4.3.2 EMS诱变的形态变异与RAPD差异性的关系
4.3.3 红掌EMS诱变植株RAPD检测效果
第五章 结论
5.1 全文结论
5.2 特色与创新点
5.3 存在问题及今后课题
参考文献
攻读硕士学位期间发表的论文
附录
致谢
【参考文献】：
期刊论文
[1]红掌组培苗的移栽及养护管理关键技术[J]. 陈彦霖. 现代园艺. 2015(13)
[2]植物组培褐化发生机制的研究进展[J]. 冯代弟,王燕,陈剑平. 浙江农业学报. 2015(06)
[3]红掌主要病虫害及防治技术[J]. 白晓琦,单会霖,苏庆,罗玲. 现代农业科技. 2015(09)
[4]切花红掌不同品种组培快繁试验[J]. 党春娇,周志强,刘春,詹虹. 农业科学研究. 2015(01)
[5]流式细胞仪检测高等植物细胞核DNA含量的方法[J]. 汪艳,肖媛,刘伟,李婷婷,胡锐,乔志仙. 植物科学学报. 2015(01)
[6]红掌育种方法研究进展[J]. 易懋升,谢利,郭和蓉,曾瑞珍,黎扬辉,张志胜. 中国农学通报. 2015(04)
[7]甜叶菊甲基磺酸乙酯离体诱变及耐盐变异体的SRAP检测[J]. 周玉丽,崔广荣,胡能兵,何克勤,林平,舒英杰. 中草药. 2014(24)
[8]红掌杂交、诱变及倍性育种研究进展与评析[J]. 牛俊海,冷青云,林兴娥,黄明忠,杨光穗,尹俊梅. 热带农业科学. 2014(11)
[9]兰属杂交兰绿翡翠组培变异的RAPD检测与鉴定[J]. 肖文芳,李佐,尤毅,陈和明,吕复兵. 广东农业科学. 2014(21)
[10]红掌组培苗生根培养基的优化[J]. 牛瑞鹤,王晶,郑必平,祁伟,陈驰,谈建中. 安徽农业科学. 2014(29)
硕士论文
[1]秋水仙素诱导茉莉多倍体的研究[D]. 阮玉娟.西南大学 2014
[2]EMS诱变头花蓼（Polygonum capitatum Buch.-Ham.ex D. Don.）的初步研究[D]. 张凯.西南大学 2014
[3]腋花杜鹃再生体系建立和多倍体诱导及鉴定[D]. 陶俊锋.云南农业大学 2014
[4]红掌组培苗优质高效繁殖技术的研究[D]. 王晶.苏州大学 2014
[5]EMS诱导菊花突变体库的构建和光周期不敏感突变体的分子鉴定[D]. 蔡海燕.山东农业大学 2013
[6]EMS诱导黄瓜突变体的初步研究[D]. 张兵.山东农业大学 2012
[7]紫薇无性系建立及多倍体诱导技术研究[D]. 陈磊.天津大学 2011
[8]百合离体条件下的耐盐性评价和EMS诱变育种初步研究[D]. 高胡静.华中农业大学 2010
[9]EMS诱变越橘（Vaccinium L.）茎尖抗旱突变体的研究[D]. 陈凌.西南大学 2010
[10]丽格海棠抗茎腐病的生物学研究及EMS诱导的突变体筛选[D]. 张应红.四川农业大学 2009
本文编号：3286823
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