菊芋悬浮细胞响应盐胁迫的蛋白质组学研究

发布时间：2021-07-29 16:55

　　菊芋（Helianthus tuberosus）是菊科向日葵属草本植物,生态适应性强,具有喜温耐寒、喜湿耐旱、喜肥耐贫瘠以及耐盐碱等特点,可在中度盐碱草地上自然生长。有关菊芋耐盐生理的研究工作主要是以叶片、块茎等为研究对象,对菊芋悬浮细胞的生理学研究较少。本研究测定了菊芋块茎悬浮细胞在0、50、100、150、200 mmol·L-1NaCl处理下的一些生理指标,包括生物量、细胞活力、丙二醛含量、过氧化氢含量、脯氨酸含量、可溶性蛋白含量、可溶性糖含量、酚类物质含量、抗氧化酶活性。在此基础上,以150 mmol·L-1NaCl溶液处理菊芋悬浮细胞为研究材料,利用TMT定量蛋白质组学技术分析了盐胁迫下菊芋悬浮细胞的蛋白质组变化。结果显示,盐胁迫抑制了菊芋悬浮细胞生长活力,使过氧化氢和丙二醛含量显著增加,脯氨酸、可溶性糖和可溶性蛋白等渗透调节物质含量受盐胁迫诱导上调,抗坏血酸过氧化物酶和过氧化物酶活性显著增强、酚类物质含量明显增加,以应对氧化胁迫。共鉴定并分析了 6231个蛋白质,以差异倍数变化2倍为准,筛选得到上调差异丰度蛋白313个、下调差异丰度蛋白365个。通过Uniprot、Gene... 

【文章来源】：东北林业大学黑龙江省 211工程院校 教育部直属院校

【文章页数】：78 页

【学位级别】：硕士

【部分图文】：

图３－１菊芋悬浮细胞的生长曲线（Ａ、Ｂ），盐胁迫下生物量（Ｃ、Ｄ）的变化??Ｆｉｇ．?３－１?Ｈ．?ｔｕｂ?

３．１．２菊芋悬浮细胞响应ＪＶａＣｌ胁迫的渗透调节??ＮａＣｌ胁迫下，甜土植物的蛋白质合成受到抑制，而盐生植物细胞可通过主动提高??胞质中可溶性蛋白含量来提高其渗透压，避免细胞液流失造成的失水。图３－５中，５０??ｍｍｏｈｌ／１和１００?ｍｍｏｒｉ＾ＮａＣｌ处理下的菊芋悬浮细胞中可溶性蛋白的含量均高于同期对??照。１５０?ｍｍｏｂｌ／１盐处理后１天，可溶性蛋白含量低于对照组，第３天高于对照组为??３．６９ｍｇ－ｇ－１，第?５?天达到最大为?６．１５ｍｇ－ｇ－１，第?７?天为?４．３７ｍｇ．ｇ－１。２００ｍｍｏｌ．Ｌ－１?处理的??细胞中，可溶性蛋白含量均低于同期对照组，这意味着菊芋悬浮细胞中复杂的酶系统对??于盐胁迫可能有一个从响应到适应的复杂调控过程。??８??ｍ?｜?ｄ?３?ｄ?ｍ?５?ｄ?＊?Ｔｄ：??！?ｔｉｌｌ?ｉｉ?Ｈｉ??ｉｉ?ＳＯ?励?１５０?２ｍ??Ｃ?ｏｎｃｓｆＪｉｔｉａｔｉｏｉｓ?ｏｆＮａＣ＇ｌ?Ｌ?？＞??图３－５盐胁迫下菊芋悬浮细胞可溶性蛋白含量的变化??Ｆｉｇ．?３－５?Ｃｈａｎｇｅ?ｏｆ?ｓｏｌｕｂｌｅ?ｐｒｏｔｅｉｎ?ｃｏｎｔｅｎｔ?ｉｎ?Ｈ．?ｔｕｂｅｒｏｓｕｓ?ｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎ?ｃｅｌｌ?ｕｎｄｅｒ?ｓａｌｔ?ｓｔｒｅｓｓ??１７??

?脯氨酸是一种重要的有机渗透调节物质，具有降低细胞渗透势，稳定细胞蛋白质结??构，防止酶变性失活，同时参与氮代谢和能量代谢。从图３－６Ａ中可以看出，在盐胁迫??下，菊芋悬浮细胞的脯氨酸含量始终高于同期的对照，且随着处理时间的延长，脯氨酸??积累增加。２００?ｒｎｍｏｌｌ－１处理的细胞在第７天脯氨酸含量増加至７１７．３７?ｐｇｆ１，为同期??对照的１６．３７倍。??ｆ?．（ｄ?－３ｄ?－＇ｒｔ?１３?？?「?＿?３ｄ?８＆ｄ?＾??９００?－?＾?４０?ｆ；??？動?４ａ?ｉ．３５??５?７Ｓ〇?５?Ｉ?３０?Ｉ－?＃?ａ?ａｆｃｈｌ?ｌ４??１?ｉｓｍ?ｌ｜??３１?－?ｉ?ｂ?＿?：?ｉｉ?：?，??Ｊ?Ｉ?卜?Ｉ??！?ＫＫ）１?鴻?｜?ｔ：?１?｜?Ｓ?－?ＩＩ??〇?騷＊?置—ｌｌ臟．．里—墨屋－疆＿＿＾１?麗？？．ｉ?．．．．?Ｊ?ｑ?￣Ｈ—ｉ?—ｉｉｔａ?．?ｉ．．．．．—总亂．．．＊?—Ｅ．Ｉ??０?！＿?１５０?２ｍ?〇?ｍ?ｉｏｄ?ｉｓｏ?？ｍ??献?１；峨?电??游?ｃ？ｆＮｓＣｌ?ｏｆ?Ｘ＇ａＣｌ?（ｉｍｕａ＾Ｌ?）??图３－６ＮａＣｌ下菊芋悬浮细胞腩氨酸（Ａ）和可溶性糖（Ｂ）含量的变化??Ｆｉｇ．?３－６?Ｃｈａｎｇｅ?ｏｆ?ｐｒｏｌｉｎｅ?（Ａ）?ａｎｄ?ｓｏｌｕｂｌｅ?ｓｕｇａｒ?（Ｂ）?ｃｏｎｔｅｎｔ?ｉｎ?Ｈ．?ｔｕｂｅｒｏｓｕｓ?ｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎ?ｃｅｌｌ?ｕｎｄｅｒ?ｓａｌｔ??ｓｔｒｅｓｓ??可溶性糖是植物受胁迫后的主要渗透调节物质之一，也是合成有机溶质的碳骨架和??能源物质。在盐处理后的第１天和第３天

【参考文献】：
期刊论文
[1]盐胁迫下德景天叶片超微弱发光与光合作用的关系[J]. 白杨,闫宇彤,梁爽,任鹏达,郭金丽.  安徽农业大学学报. 2018(03)
[2]不同基因型菊芋耐盐生理及其生态适应性研究[J]. 朱菊华,孙星,许斌,梁婷,刘明,缪建,赵耕毛.  草业学报. 2018(06)
[3]基于质谱的定量蛋白质组学技术发展现状[J]. 牟永莹,顾培明,马博,闫文秀,王道平,潘映红.  生物技术通报. 2017(09)
[4]红树植物秋茄类黄酮代谢及其抗氧化活性对高盐胁迫的响应[J]. 宋晓敏,吕晓杰,邱智敏,邢建宏,陈世品,谭芳林,陈伟.  西北植物学报. 2016(12)
[5]外源茉莉酸甲酯对盐胁迫下黄芩种子萌发及幼苗生理特性的影响[J]. 李小玲,华智锐.  山西农业科学. 2016(11)
[6]南方型紫花苜蓿苗期叶片盐胁迫差异蛋白分析[J]. 裴翠明,张振亚,马进.  农业生物技术学报. 2016(11)
[7]芥子酸及其生物活性研究进展[J]. 马丛丛,许继取,韩领,田光晶,黄凤洪.  中国油脂. 2016(05)
[8]低温胁迫对新疆紫草悬浮细胞次生代谢物的影响[J]. 谢腾,王升,张山山,刘谈,郭兰萍.  中草药. 2015(10)
[9]唐古特白刺悬浮细胞对盐胁迫的生长与生理响应[J]. 倪建伟,杨秀艳,张华新,武海雯,许秀玉,刘涛.  林业科学研究. 2015(02)
[10]药用红花幼苗对盐胁迫的生理响应机制[J]. 韩宇,生艳菲,罗茜,孙希超,王长海,赵耕毛.  生态学杂志. 2014(07)

博士论文
[1]基于悬浮细胞培养的大麦耐镉性基因型差异及大小麦耐渗透胁迫差异的机理研究[D]. 董静.浙江大学 2009
[2]苹果属植物抗盐机理的研究[D]. 杨洪兵.中国农业大学 2004
[3]植物对离子毒害的适应机理及调节[D]. 章文华.南京农业大学 2001

硕士论文
[1]苦荞ABC转运蛋白基因的克隆与功能初步分析[D]. 李洁.西北农林科技大学 2018



本文编号：3309702