基于转录组技术发掘红肉软枣猕猴桃果实花色苷合成关键结构基因

发布时间：2022-01-16 00:48

　　本研究以红肉软枣猕猴桃‘天源红’为试材,绿肉软枣猕猴桃‘永丰一号’为对照品种,测定盛花后8个时期果肉样品的色差指标值a、b;采用高效液相色谱法,对盛花后8个时期果肉样品的花色苷含量进行半定量分析,以探究不同发育时期果实中花色苷含量的差异;通过转录组测序,筛选果肉花色苷生物合成途径中起关键作用的结构基因。依据以上结果,综合分析猕猴桃果肉红色性状形成的分子机制,以期为猕猴桃果肉色泽性状遗传改良奠定基础。同时,对‘天源红’果实进行套袋处理,探讨套袋对其果实着色的影响,为解析光照对花色苷合成分子机制的影响提供依据。本研究的主要结果如下:随着果实生长发育,绿色逐渐变浅,红色逐渐加深,至盛花后120d红色最深;盛花后90d初次检测到花色苷,之后花色苷含量逐渐增加,至盛花后120d达到最大。套袋显著降低‘天源红’果实外果皮的色度角,对果肉（中果皮和内果皮）和果心无显著影响。一直套袋阻碍花色苷在外果皮、果肉、果心中的积累。套袋果实解袋之后,外果皮、果肉、果心花色苷的积累量明显升高,在花后110 d达到最大。通过转录组测序,获得329,189条转录本,总长度为252,165,247,其中N50和N90长... 

【文章来源】：中国农业科学院北京市

【文章页数】：59 页

【学位级别】：硕士

【部分图文】：

花色素的骨架结构以及常OHOCOCOC

图 1. 2 花色苷生物合成途径（孙磊，2016）Fig. 1.2 The biosynthesis of anthocyanin (Sun L,2016)3 花色苷生物合成的结构基因在花色苷生物合成的途径中，直接编码的关键酶类分别有：查尔酮合成酶、查尔酮异构酶、酮 3-羟化酶、二羟基黄酮醇还原酶、花色素苷合成酶以及类黄酮 3-O-糖基转移酶等，（候夫，2009），编码这些酶的基因为结构基因。在拟南芥、矮牵牛、金鱼草以及玉米结构基因相究的基础上，果树上花色苷生物合成的分子水平上的相关研究在近几年来取得了很大的进展，

状的形成与花色苷含量的高低具有直接联系。本研究永丰一号’为对照，通过测定不同发育时期果肉花色筛选与猕猴桃花色苷生物合成途径相关的结构基因，基因，探讨猕猴桃果实着色分子机制，为猕猴桃果肉路线如下图所示：不同发育时期‘天源红’果肉样品 花色苷半定量分析提取果肉RNA-Seq 平差定关键时期筛选差荧光定量分析 聚类分析

【参考文献】：
期刊论文
[1]利用葡萄氮代谢基因的表达评价不同氮肥肥效[J]. 王剑,李炳锐,李晓鹏,朱旭东,朱传根,贾海锋.  园艺学报. 2016(01)
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[3]‘红阳’猕猴桃全基因组NBS-LRR类基因家族的生物信息学分析[J]. 文欢,刘永立.  果树学报. 2015(03)
[4]猕猴桃CHS基因RNA干涉载体在果实中的瞬时表达可以有效影响花青素积累（英文）[J]. 孙家旗,唐维,刘永胜.  应用与环境生物学报. 2014(05)
[5]‘红阳’猕猴桃中花青素转录调控因子AdGL3的克隆及表达分析[J]. 李文彬,刘义飞,彭明.  热带作物学报. 2014(09)
[6]套袋对‘美人指’葡萄花色苷组分及合成相关基因表达的影响[J]. 张雷,贾玥,王继源,陶建敏.  果树学报. 2014(06)
[7]不同类型猕猴桃果实发育过程中内果皮色泽的动态变化[J]. 黄春辉,葛翠莲,高洁,张晓慧,曲雪艳,徐小彪.  江西农业大学学报. 2014(03)
[8]‘红阳’猕猴桃突变体果实花青苷合成相关结构基因的表达分析[J]. 黄春辉,葛翠莲,张晓慧,吴寒,曲雪艳,徐小彪.  果树学报. 2014(02)
[9]花青苷生物合成转录调控研究进展[J]. 刘晓芬,李方,殷学仁,徐昌杰,陈昆松.  园艺学报. 2013(11)
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硕士论文
[1]基于转录组测序对刺葡萄果皮花色苷积累相关基因的表达分析[D]. 孙磊.中国农业科学院 2016
[2]红阳猕猴桃果实色素变化规律和影响因素的研究[D]. 杨刚.四川农业大学 2011



本文编号：3591606