尖顶羊肚菌多糖提
发布时间:2020-12-03 23:38
羊肚菌是一种营养价值丰富,珍贵稀少,医用价值高的食用菌和药用菌。具有独特的风味和形态,在功能性食品,中药,保健品等领域备受关注。羊肚菌中含有很多生物活性物质,包括多糖,蛋白质,脂肪,矿物元素,膳食纤维等。其中,羊肚菌中多糖是含量最多并且具有多种生物活性的营养成分,其生物活性包括抗氧化特性,免疫调节活性,保肝活性和抗肿瘤活性等。羊肚菌多糖多由传统提取方法进行提取,比如,热水浸提法。但热水浸提法具有温度高,提取时间长,消耗更多能源的缺点,需要新型提取方法进行替代,本文采用超声微波协同提取法(UMSE)对羊肚菌多糖进行提取。此外,虽然有研究表明羊肚菌粗多糖的抗氧化性,但是对纯化后的羊肚菌多糖的抗氧化性和抑制氧化应激损伤的作用很少进行深入研究。本文对尖顶羊肚菌子实体纯多糖的分子结构和抗氧化活性进行了系统研究,主要研究的内容和结论如下:(1)尖顶羊肚菌多糖超声微波协同提取法工艺条件的优化和其他提取方法的比较。经过单因素试验,响应面Box-Behnken设计对试验进行优化,羊肚菌粗多糖(MCP)提取过程条件优化的最佳工艺条件如下:微波功率为211 w,液料比为41:1,提取时间为127 s。由UM...
【文章来源】:吉林大学吉林省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:112 页
【学位级别】:博士
【文章目录】:
摘要
abstract
英文缩写词表
第1章 绪论
1.1 研究目的和意义
1.2 文献综述
1.2.1 羊肚菌的分类及分布
1.2.2 羊肚菌的营养成分
1.2.3 羊肚菌多糖的生物活性
1.2.4 抗氧化剂的研究进展
1.2.5 氧化应激和细胞凋亡的研究进展
1.2.6 羊肚菌多糖结构表征
1.3 本文研究内容
第2章 超声微波协同提取尖顶羊肚菌多糖工艺及其提取物特征
2.1 引言
2.2 材料与方法
2.2.1 试验材料与试剂
2.2.2 主要仪器设备
2.3 试验方法
2.3.1 尖顶羊肚菌粉末的粒径分析
2.3.2 尖顶羊肚菌预处理方法
2.3.3 超声微波协同提取方法
2.3.4 对比提取方法
2.3.5 提取物和残渣的分析
2.3.6 数据分析
2.4 结果与分析
2.4.1 尖顶羊肚菌粉末的粒径分析
2.4.2 单因素试验
2.4.3 超声微波提取法的工艺优化分析
2.4.4 提取液的分析
2.4.5 残渣的分析
2.5 本章小结
第3章 尖顶羊肚菌多糖的纯化和抗氧化性的研究
3.1 引言
3.2 试验材料与设备
3.2.1 试剂
3.2.2 设备
3.3 试验方法
3.3.1 多糖含量的测定
3.3.2 大孔吸附树脂层析
3.3.3 多糖的分离纯化
3.3.4 化学方法评价的抗氧化性
3.3.5 体外细胞抑制氧化应激的初步测定
3.3.6 数据分析
3.4 结果与分析
3.4.1 大孔吸附树脂层析
3.4.2 纤维素DEAE-52 离子交换层析
3.4.3 Sephadex G-100 凝胶柱层析
3.4.4 化学分析评价体外抗氧化活性
3.4.5 羊肚菌粗多糖对HEK-293T细胞氧化损伤的保护作用的研究
3.5 本章小结
2O2 诱导HEK-293T细胞氧化应激的保护作用">第4章 NMCP-2对H2O2 诱导HEK-293T细胞氧化应激的保护作用
4.1 引言
4.2 试验材料和设备
4.2.1 试验试剂
4.2.2 试验设备
4.3 试验方法
4.3.1 细胞活力的测定
4.3.2 细胞内ROS产生的测量
4.3.3 线粒体膜电位(MMP)的测定
4.3.4 荧光显微镜
4.3.5 透射电子显微镜(TEM)分析
4.3.6 real time q-PCR
4.3.7 Western blot分析
4.3.8 统计与分析
4.4 结果与分析
4.4.1 NMCP-2对HEK-293T细胞的毒性作用
4.4.2 NMCP-2对HEK-293T细胞的保护作用
4.4.3 NMCP-2 对氧化损伤细胞内ROS水平的影响
4.4.4 NMCP-2 对氧化损伤细胞线粒体膜电位的影响
4.4.5 NMCP-2对H2O2 诱导的HEK-293T细胞形态的变化
4.4.6 NMCP-2对H2O2 诱导的HEK-293T细胞凋亡相关基因的m RNA表达水平影响
4.4.7 NMCP-2对H2O2 诱导的HEK-293T细胞凋亡相关基因的蛋白表达水平影响
4.5 本章小结
第5章 尖顶羊肚菌多糖分子结构的研究
5.1 引言
5.2 材料与设备
5.2.1 试剂
5.2.2 仪器
5.3 试验方法
5.3.1 分子量的测定
5.3.2 单糖组成测定
5.3.3 紫外光谱扫描
5.3.4 红外光谱分析
5.3.5 核磁共振分析
5.4 结果与分析
5.4.1 分子量测定
5.4.2 单糖组成分析
5.4.3 紫外光谱扫描
5.4.4 红外光谱分析
5.4.5 核磁共振分析
5.5 本章小结
第6章 结论
6.1 结论
6.2 展望
6.3 创新点
附录
参考文献
作者简介及在学期间所取得的科研成果
致谢
本文编号:2896652
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【文章页数】:112 页
【学位级别】:博士
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摘要
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第1章 绪论
1.1 研究目的和意义
1.2 文献综述
1.2.1 羊肚菌的分类及分布
1.2.2 羊肚菌的营养成分
1.2.3 羊肚菌多糖的生物活性
1.2.4 抗氧化剂的研究进展
1.2.5 氧化应激和细胞凋亡的研究进展
1.2.6 羊肚菌多糖结构表征
1.3 本文研究内容
第2章 超声微波协同提取尖顶羊肚菌多糖工艺及其提取物特征
2.1 引言
2.2 材料与方法
2.2.1 试验材料与试剂
2.2.2 主要仪器设备
2.3 试验方法
2.3.1 尖顶羊肚菌粉末的粒径分析
2.3.2 尖顶羊肚菌预处理方法
2.3.3 超声微波协同提取方法
2.3.4 对比提取方法
2.3.5 提取物和残渣的分析
2.3.6 数据分析
2.4 结果与分析
2.4.1 尖顶羊肚菌粉末的粒径分析
2.4.2 单因素试验
2.4.3 超声微波提取法的工艺优化分析
2.4.4 提取液的分析
2.4.5 残渣的分析
2.5 本章小结
第3章 尖顶羊肚菌多糖的纯化和抗氧化性的研究
3.1 引言
3.2 试验材料与设备
3.2.1 试剂
3.2.2 设备
3.3 试验方法
3.3.1 多糖含量的测定
3.3.2 大孔吸附树脂层析
3.3.3 多糖的分离纯化
3.3.4 化学方法评价的抗氧化性
3.3.5 体外细胞抑制氧化应激的初步测定
3.3.6 数据分析
3.4 结果与分析
3.4.1 大孔吸附树脂层析
3.4.2 纤维素DEAE-52 离子交换层析
3.4.3 Sephadex G-100 凝胶柱层析
3.4.4 化学分析评价体外抗氧化活性
3.4.5 羊肚菌粗多糖对HEK-293T细胞氧化损伤的保护作用的研究
3.5 本章小结
2O2 诱导HEK-293T细胞氧化应激的保护作用">第4章 NMCP-2对H2O2 诱导HEK-293T细胞氧化应激的保护作用
4.1 引言
4.2 试验材料和设备
4.2.1 试验试剂
4.2.2 试验设备
4.3 试验方法
4.3.1 细胞活力的测定
4.3.2 细胞内ROS产生的测量
4.3.3 线粒体膜电位(MMP)的测定
4.3.4 荧光显微镜
4.3.5 透射电子显微镜(TEM)分析
4.3.6 real time q-PCR
4.3.7 Western blot分析
4.3.8 统计与分析
4.4 结果与分析
4.4.1 NMCP-2对HEK-293T细胞的毒性作用
4.4.2 NMCP-2对HEK-293T细胞的保护作用
4.4.3 NMCP-2 对氧化损伤细胞内ROS水平的影响
4.4.4 NMCP-2 对氧化损伤细胞线粒体膜电位的影响
4.4.5 NMCP-2对H2O2 诱导的HEK-293T细胞形态的变化
4.4.6 NMCP-2对H2O2 诱导的HEK-293T细胞凋亡相关基因的m RNA表达水平影响
4.4.7 NMCP-2对H2O2 诱导的HEK-293T细胞凋亡相关基因的蛋白表达水平影响
4.5 本章小结
第5章 尖顶羊肚菌多糖分子结构的研究
5.1 引言
5.2 材料与设备
5.2.1 试剂
5.2.2 仪器
5.3 试验方法
5.3.1 分子量的测定
5.3.2 单糖组成测定
5.3.3 紫外光谱扫描
5.3.4 红外光谱分析
5.3.5 核磁共振分析
5.4 结果与分析
5.4.1 分子量测定
5.4.2 单糖组成分析
5.4.3 紫外光谱扫描
5.4.4 红外光谱分析
5.4.5 核磁共振分析
5.5 本章小结
第6章 结论
6.1 结论
6.2 展望
6.3 创新点
附录
参考文献
作者简介及在学期间所取得的科研成果
致谢
本文编号:2896652
本文链接:https://www.wllwen.com/projectlw/hxgylw/2896652.html
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