工程乙酰辅酶A通路构建酿酒酵母高效合成平台

发布时间:2017-11-05 21:31

  本文关键词:工程乙酰辅酶A通路构建酿酒酵母高效合成平台


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【摘要】:乙酰辅酶A (acetyl-CoA)是微生物细胞内重要的前体分子,直接参与了包括三羧酸循环、脂类代谢、氨基酸代谢、萜类代谢在内的近200个生化反应。采用代谢工程和合成生物学策略改造乙酰辅酶A代谢通路合成不同的精细化学品是目前研究的热点。本文以3羟基丙酸、脂肪酸和beta-胡萝卜素为靶向产品,通过工程不同的代谢途径建立酿酒酵母平台细胞工厂用于生产乙酰辅酶A衍生的产品。3羟基丙酸在化工行业中是一种非常重要的化合物,该产品被美国能源部评定为12种平台化合物之一。由于3羟基丙酸具有一个羟基基团和一个羧基基团,使其成为一个非常优秀的化合物,可作为化工材料的建造基石。3羟基丙酸在化工行业有着巨大的市场需求,通过改造微生物高效合成3羟基丙酸近年来备受关注。到目前为止,通过工程改造不同的代谢途径均已成功合成3羟基丙酸,主要集中于甘油途径和丙二酰辅酶A途径,且以甘油途径研究最为广泛。而相对于甘油途径,丙二酰辅酶A途径有其独特的优势:(1)由于不同的C5和C6糖代谢均可合成中间代谢分子乙酰辅酶A,因此这些廉价且来源广泛的碳源可作为3羟基丙酸合成的原料;(2)从葡萄糖代谢合成3羟基丙酸在碳源利用和能量代谢上实现了很好的平衡,理论上可以实现很高的转化率。本文首次引入来源于Metallosphaera sedula的醇脱氢酶MCR和醛脱氢酶MSR用于合成3羟基丙酸。为了研究3羟基丙酸合成系统的基本生化反应,我们在体外建立了以乙酰辅酶A为底物合成3羟基丙酸的反应。通过滴定不同浓度的ACC, MCR和MSR,我们发现ACC和MCR对3羟基丙酸的合成速率影响较大,而MSR对3羟基丙酸的合成速率影响较小。另外,我们在体外分析了3羟基丙酸和脂肪酸合成的竞争关系。在体内,我们首先评估了大肠杆菌和三个酵母菌株合成3羟基丙酸的能力。随后我们在大肠杆菌中通过启动子文库调节了MCR蛋白的表达。最后我们通过不同的代谢工程策略进一步提高了菌株合成3羟基丙酸的能力。我们相信本文所述的工作对进一步研究乙酰辅酶A途径合成3羟基丙酸产品将会提供重要的参考价值。脂肪酸是生物燃料分子(如脂肪酸酯、脂肪烷烃和脂肪醇)的重要前体。在之前的研究中,本实验室已经建立了大肠杆菌脂肪酸体外合成体系。基于该体系,脂肪酸合成的限速步骤和基本生化性质被挖掘。随后我们将该工作拓展到更有工业应用价值的酿酒酵母中去,以期搭建更面向产业化的“细胞工厂”。酿酒酵母中的脂肪酸合成系统和大肠杆菌略存在些差异。细胞质中生成乙酰辅酶A的途径要略微繁杂。脂肪酸合成酶属于类型Ⅰ脂肪酸合成酶,是一个12聚体的大型复合物。最后的产物以脂酰-CoA形式释放,而不是类型Ⅱ中的脂酰-ACP。途径中的ACS和ACC受到转录调控和翻译后修饰。在酵母中,脂肪酸激活为脂酰辅酶A后可进行beta氧化。为了阻止该反应的进行,FAA1, FAA4和POX1基因被敲除。在三个基因同时被敲除后,脂肪酸的产量可以由出发菌株的48 mg/L提高到106 mg/L。在大肠杆菌的代谢工程改造中,硫酯酶被证明是至关重要的。因此来源于大肠杆菌、植物和酿酒酵母本身的硫酯酶被超表达,结果表明只有超表达酿酒酵母本身的硫酯酶后脂肪酸产量有明显提高,为115 mg/L。平行的,超表达前体乙酰辅酶A的供应可以提高脂肪酸产量至124 mg/L,而超表达脂肪酸合成的起始步骤(ACC1蛋白催化)并没有提高目标产物的产量。为了分析酿酒酵母中脂肪酸合成体系的主要限速步骤,酿酒酵母无细胞合成体系(cell-free)被成功建立。在酿酒酵母细胞萃取物中添加从酿酒酵母中纯化的ACC,底物乙酰辅酶A和反应需要的各种辅因子,没有脂肪酸产物被检测到。而在酿酒酵母细胞萃取物中滴定从大肠杆菌中纯化的ACC,脂肪酸产物可以被检测到。该实验结果说明在酿酒酵母中脂肪酸合成的第一步反应是该系统的主要限制性步骤。由于ACC的活性和磷酸化修饰有密切的联系,因此为了为之后研究提供理论基础,我们进一步鉴定了该蛋白磷酸化位点的修饰。使用的质谱仪主要是LTQOrbitrap XL和Triple TOFTM 5600+。通过和数据库比对,55个磷酸化位点被鉴定。之后通过MIDAS方法进行人工校对。最后14个磷酸化位点被鉴定。主要分布为:5个位于BC(生物素羧化酶)区,BCCP(生物素羧基载体蛋白)和CT(羧基转移酶)区各一个。其他7个位于连接区,且全部位于非活性位点。其影响机制虽然不是很清楚,但该工作为进一步研究奠定了很好的基础。beta-胡萝卜素是类胡萝卜素(Carotenoids)的一种,具有非常强的抗氧化性,可以预防、延缓和治疗某些疾病,尤其是癌症,同时也能提高机体的免疫功能。目前被广泛应用于食品、药品、化妆品和保健品行业,具有广阔的市场前景。天然提取的beta-胡萝卜素产率较低且纯化工艺复杂,需要花费大量的人力和物力。通过化学合成beta-胡萝卜素虽然成本较低,但是产生的毒副产物较多,难以达到食品级要求。因此通过微生物合成beta-胡萝卜素受到研究者广泛的青睐。我们首先特征性比较了酿酒酵母中半乳糖诱导相关启动子的表达强度,选取较强的诱导型启动子pGAL1, pGAL7, pGAL10和pGAL2用于控制beta-胡萝卜素合成相关基因的表达。随后通过敲除调控半乳糖相关的基因GAL80,实现诱导型启动子的组成型表达,使得构建的菌株无需添加诱导剂半乳糖可以合成beta-胡萝卜素产物。同时我们通过密码子优化合成来源于三孢布拉霉中beta-胡萝卜素合成相关的基因,成功实现了在异源真核宿主内进行表达。超表达了甲羟戊酸途径中的基因以提高前体异戊烯焦磷酸和二甲基烯丙基焦磷酸的合成。通过这些技术,在摇瓶发酵中,构建的工程菌种能够合成45 mg/L的beta-胡萝卜素,同时产生29 mg/L的番茄红素。随后经过碳源的优化,工程菌株可以产生149 mg/L的总胡萝卜素(64 mg/L的beta-胡萝卜素和85 mg/L的番茄红素)。为了进一步提高产物beta-胡萝卜素的积累,我们建立了中间产物的绝对定量方法,并通过中间产物的积累为下一步代谢工程改造提供靶标。
【学位授予单位】:武汉大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:Q936

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本文编号:1145998

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