提高体外成熟卵母细胞质量研究:抑制GVBD的后作用及体外成熟系统优化

发布时间:2017-03-25 20:03

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【摘要】:PARTI:通过抑制卵母细胞GVBD,增加胞质成熟时间来提高体外成熟卵母细胞质量的方法很少有成功的,主要由于缺乏对GVBD抑制期间发生分子事件了解。这方面的报道对研究卵母细胞GV期间基因表达调控也有重要借鉴意义。我们研究了不同物种间GVBD抑制对减数分裂进程后作用,以及涉及信号通路。我们证明,ROS抑制以后,小鼠卵母细胞减数分裂进程变慢,猪卵母细胞减数分裂进程变快。抑制期间,猪卵母细胞Cyclin B量逐渐增加,而小鼠卵母细胞Cyclin B量先降低后缓慢升高。在小鼠和猪上,(a)有活性CDC2A变化和Cyclin B变化类似,无活性CDC2A都是逐渐减少;(b)抑制期间添加CHX后,Cyclin B和有活性CDC2A都降低到最低,卵母细胞减数分裂进程显著变慢;(c)抑制期间添加钒酸钠使卵母细胞减数分裂进程变慢,添加EGF使进程加快,但都不影响Cyclin B变化。因此,ROS抑制卵母细胞3VBD期间,EGF能促进前MPF向MPF转化,加速减数分裂进程。小鼠和猪卵母细胞抑制后减数分裂进程不同主要由于Cyclin B变化不同造成的,在前MPF向MPF转化和EGF信号通路方面没有差异。PART II:大鼠卵母细胞具有自发激活的特性,使大鼠体细胞核移植克隆非常困难,体外成熟卵母细胞自发激活比例显著低于体内成熟卵母细胞。关于大鼠卵母细胞研究主要集中在体内,不管是孤雌激活后发育还是体外受精后发育,关于体外成熟卵母细胞的研究很少,受精后有活体出生的报道更少。我们以成熟199为培养液,添加胱氨酸半胱胺,并且与卵丘共培养后显著改善体外成熟卵母细胞质量。卵母细胞孤雌激活和体外受精后发育能力都达到体内成熟卵母细胞水平,将得到2-Cell胚胎移植后,胎儿出生率与体内组无显著差异。改善体外培养条件后,卵母细胞核进程和皮质颗粒分布变化与体内组更相近;卵母细胞抵抗氧化应激能力提高,ROS水平降低,GSH含量提高;促进发育相关基因表达,最终显著改善卵母细胞胞质成熟质量。因此,我们建立一个比较好的大鼠体外成熟系统,为将来进一步研究大鼠体外成熟卵母细胞特性及应用奠定了很好基础。
【关键词】:卵母细胞 GVBD 后作用 MPF 体外成熟 氧化应激
【学位授予单位】:山东农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:Q492
【目录】:
  • 中文摘要10-11
  • Abstract11-13
  • PARTⅠ 卵母细胞GVBD抑制对减数分裂进程后作用13-39
  • 1 前言13-25
  • 1.1 减数分裂恢复调控13-17
  • 1.1.1 MPF与减数分裂13-15
  • 1.1.2 MAPK与减数分裂15-17
  • 1.2 不同抑制剂抑制减数分裂恢复17-20
  • 1.2.1 蛋白磷酸化抑制剂17-18
  • 1.2.2 蛋白质合成抑制剂CHX18-19
  • 1.2.3 提高卵母细胞内cAMP水平19-20
  • 1.3 抑制减数分裂恢复对卵母细胞影响20-23
  • 1.3.1 核进程变化20-21
  • 1.3.2 蛋白和mRNA变化21-23
  • 1.4 EGF对减数分裂作用23
  • 1.5 本文主要研究内容23-25
  • 2 材料与方法25-28
  • 2.1 主要试剂及配制25-26
  • 2.2 实验动物饲养及处理26
  • 2.3 小鼠和猪卵母细胞收集26
  • 2.4 卵母细胞体外培养26
  • 2.5 减数分裂进程观察26-27
  • 2.6 Western杂交27
  • 2.7 抗体选择27
  • 2.8 数据分析27-28
  • 3 结果28-35
  • 3.1 ROS抑制后,加速猪卵母细胞减数分裂进程,减缓小鼠卵母细胞减数分裂进程28-29
  • 3.2 Western blot分析小鼠和猪卵母细胞抑制后cyclin B,总CDC2A,无活性和有活性P-CDC2A变化】29-30
  • 3.3 抑制期间MPF组分变化与减数分裂进程的关系30-31
  • 3.4 抑制过程中添加钒酸钠减慢小鼠和猪卵母细胞减数分裂进程31-33
  • 3.5 抑制期间通过添加EGF促进前MPF向MPF转化加速小鼠和猪卵母细胞减数分裂进程33
  • 3.6 抑制期间EGF对小鼠和猪卵母细胞cyclin B,无活性和有活性P-CDC2A影响33-35
  • 4 讨论35-38
  • 4.1 抑制过程中cyclin B蛋白变化35
  • 4.2 抑制过程中前MPF向MPF转化35-36
  • 4.3 抑制过程中添加EGF作用36-38
  • 5 结论38-39
  • PARTⅡ大鼠卵母细胞体外成熟系统优化39-71
  • 1 前言39-54
  • 1.1 大鼠卵母细胞自发激活39-41
  • 1.1.1 自发激活的影响因素40
  • 1.1.2 自发激活的判定标准40-41
  • 1.1.3 抑制大鼠卵母细胞自发激活的方法41
  • 1.1.4 自发激活对胚胎发育及核移植克隆的影响41
  • 1.2 卵母细胞体外成熟41-43
  • 1.2.1 细胞质成熟和核成熟42
  • 1.2.2 卵母细胞体外成熟42-43
  • 1.3 影响体外培养成熟的因素43-46
  • 1.3.1 体外成熟的培养液43
  • 1.3.2 卵丘细胞的影响43-44
  • 1.3.3 氧化应激对卵母细胞体外成熟的影响44
  • 1.3.4 卵泡直径与卵母细胞直径对卵母细胞体外成熟的影响44-45
  • 1.3.5 动物年龄的影响45-46
  • 1.4 提高体外成熟的卵母细胞的质量方法46-49
  • 1.4.1 抑制体外自发成熟46-47
  • 1.4.2 卵丘共培养47-48
  • 1.4.3 添加胱氨酸/半胱胺48-49
  • 1.4.4 添加外源性卵分泌生长因子49
  • 1.5 卵母细胞体外成熟质量的检测指标49-53
  • 1.5.1 卵母细胞的形态学检测49-50
  • 1.5.2 减数分裂进程与卵母细胞体外成熟50
  • 1.5.3 卵母细胞内细胞器检测50-51
  • 1.5.4 体外胚胎发育51-52
  • 1.5.5 卵母细胞胞质中谷胱甘肽(glutathione,GSH)水平52
  • 1.5.6 发育相关基因检测52-53
  • 1.6 本文主要研究内容53-54
  • 2 材料与方法54-59
  • 2.1 主要试剂及配制54
  • 2.2 实验动物及卵母细胞获取54-55
  • 2.3 卵母细胞体外成熟培养55
  • 2.4 卵母细胞孤雌激活及胚胎培养55
  • 2.5 卵母细胞体外受精55-56
  • 2.6 卵母细胞自发激活判定56
  • 2.7 胚胎移植56
  • 2.7.1 制作不育雄鼠的输精管切除术56
  • 2.7.2 受体母鼠准备及胚胎移植56
  • 2.8 核进程观察56-57
  • 2.9 皮质颗粒染色57
  • 2.10 卵母细胞内ROS水平的检测57
  • 2.11 GSH水平检测57-58
  • 2.12 发育相关基因检测58
  • 2.13 数据分析58-59
  • 3 结果59-67
  • 3.1 不同成熟条件对卵母细胞核进程影响59
  • 3.2 不同成熟条件对卵母细胞自发激活影响59-60
  • 3.3 不同成熟条件对卵母细胞孤雌激活后胚胎发育影响60-61
  • 3.4 不同成熟条件对卵母细胞体外受精后胚胎发育影响61-62
  • 3.4.1 体外受精时获能液摸索61
  • 3.4.2 体外受精时获能时间确定61-62
  • 3.4.3 不同成熟条件对大鼠体外受精后胚胎发育能力影响62
  • 3.5 不同成熟条件对胚胎着床后发育影响62-63
  • 3.6 不同成熟条件对卵母细胞ROS水平影响63
  • 3.7 不同成熟条件对卵母细胞谷胱甘肽水平影响63-64
  • 3.8 不同成熟条件对卵母细胞成熟过程中皮质颗粒分布影响64-65
  • 3.9 不同成熟条件对发育相关基因表达的影响65-67
  • 4 讨论67-70
  • 4.1 添加胱氨酸、半胱胺及卵丘共培养对胞质成熟影响67
  • 4.2 大鼠卵母细胞体外成熟后胚胎移植67-68
  • 4.3 胞质成熟相关指标68-69
  • 4.4 大鼠体外受精条件优化69-70
  • 5 结论70-71
  • References of part Ⅰ71-82
  • References of part Ⅱ82-96
  • 致谢96-97
  • Publication List97

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  本文关键词:提高体外成熟卵母细胞质量研究:抑制GVBD的后作用及体外成熟系统优化,,由笔耕文化传播整理发布。



本文编号:267684

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