MicroRNA-373通过负向调控Ⅰ型干扰素促进猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)复制的机制研究
[Abstract]:Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) is a highly contagious disease caused by porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) caused by the reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) and the dyspnea of piglets. At present, PRRS is a global epidemic, which not only causes huge economic losses to the pig industry, but also seriously endangering pigs. The healthy development of.PRRSV is capable of successfully infecting the host and forming persistent infection, because PRRSV can inhibit or escape from the host's innate and acquired immune systems, especially the PRRSV that inhibits the production of Type I IFNs, IFN-I, and therefore studies the mechanism of PRRSV immunosuppression and persistent infection. It will provide a theoretical basis for PRRS prevention and control..MicroRNAs (miRNAs) is a non coding small RNA of a class of post transcriptional gene expression. A large number of studies have shown that miRNA affects virus replication by targeting the virus genome or regulating the host virus response, which has shown that the imbalance of the host miRNA expression spectrum may be immune to the immunity caused by PRRSV. Inhibition is associated with persistent infection, however, it is not clear how PRRSV regulates the host miRNA expression and the mechanism of host miRNA to help virus replication. Therefore, this study first uses RNA high throughput sequencing technology (RNA-Seq) to find that PRRSV infection significantly changes the miRNA expression profile of MARC-145 cells, in which the expression of miR-373 is measured. The further fluorescence quantitative PCR (Q RT-PCR) method confirms that PRRSV infection obviously up-regulated the expression of miR-373 in MARC-145 cells. Then, how does PRRSV increase the expression of miR-373 and what is the effect of miR-373 on PRRSV replication and what is its mechanism? This article has carried out a detailed study of the above scientific problems. The results are as follows: PRRSV promotes miR-373 transcriptional.MiR-373 promoter truncation by up regulation of the expression of Sp1. Bioinformatics analysis and mutation experiments of promoter sequences show that Sp1 (specificity protein 1, Sp1) is an important transcription factor of the miR-373 gene, and EMSA and Ch Ip confirm that it can be directly associated with the promoter. It was found that after PRRSV infection of MARC-145 cells, Sp1 was obviously up-regulated, while Sp1 Si RNA could obviously inhibit the up-regulated expression of PRRSV to miR-373. On the contrary, the overexpression of Sp1 contributed to the up regulation of miR-373 expression by PRRSV, which indicates that PRRSV can promote the transcription by up regulation of the expression. It is found that the non structural protein Nsp9 and structural protein N of PRRSV can obviously increase the activity and expression of miR-373 promoter, and Nsp9 and N protein can also promote the expression of Sp1, which indicates that PRRSV increases Sp1 expression through Nsp9 and N proteins and promotes the replication of miR-373 transcriptional transcription through negative regulation of the signaling pathway. 3 simulants and inhibitor transfection experiments showed that the PRRSV load of MARC-145 cells and PAMs transfected with miR-373 mimics increased significantly, while miR-373 inhibitors significantly inhibited PRRSV replication, which indicated that miR-373 could promote PRRSV replication. Further studies found that Sp1 could significantly promote PRRSV replication, and this promotion is dependent on miR-37. The results of the screening and identification of the target gene for the expression of.MiR-373 show that NFIA, NFIB, IRAK1, IRAK4, IRF1 and IRF9 are the target genes of miR-373, and as IRAK1, IRAK4, and IRF1 are the essential signaling proteins involved in the production of IFN-I, and further research shows that it can inhibit the production of the beta. Key molecules NFIA, NFIB, IRAK1, IRAK4, IRF1 and IRF9 inhibit the IFN-I signal transduction pathway, thus promoting PRRSV replication.NFIA and NFIB to promote IFN-I production and inhibition of PRRSV replication. Level, which indicates that NFIA and NFIB may regulate the activity and expression of IFN- beta promoter. Subsequent EMSA and Ch IP results indicate that NFIA/NFIB can be combined with IFN- beta promoter. The above results suggest that NFIA and NFIB may be the transcription factors of IFN- beta which can regulate the transcriptional expression of IFN- beta. The downregulation of NFIA and NFIB can promote the replication of PRRSV, which indicates that NFIA and NFIB are antiviral proteins that can inhibit PRRSV replication. This study first found that NFIA and NFIB can inhibit the replication of RNA virus (PRRSV). And NFIB can regulate the production of IFN-I and antagonize the replication of PRRSV. The results of this study have important reference significance for elucidating the mechanism of PRRSV induced immunosuppression and persistent infection, and also provide new targets for the prevention and control of PRRS.
【学位授予单位】:吉林大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S852.65
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 游志勇;;对病毒的再认识[J];医学与哲学;1988年01期
2 ;病毒“抱团”侵袭机体效率高[J];中华中医药学刊;2010年03期
3 丁铲;;病毒的进化与传播[J];中国动物传染病学报;2010年04期
4 顾葆良;;病毒基因及其应用[J];国外医学(微生物学分册);1981年02期
5 马亚敏;;病毒基因能够保护植物免遭病害[J];生物技术通报;1986年05期
6 Andrew Scott;史久华;;改善病毒的印象[J];世界科学;1989年09期
7 向近敏;;关于病毒生态的几个问题[J];中国微生态学杂志;1990年01期
8 石无鱼;;病毒是我们的“助产婆”[J];大科技(科学之谜);2011年04期
9 纪昕,翁梁,曹淑桂,冯雁;非病毒基因治疗的研究进展[J];生物学杂志;2002年02期
10 刘铭;;病毒帮助人类进化[J];环境;2002年04期
相关会议论文 前10条
1 丁铲;;病毒的进化与传播[A];中国畜牧兽医学会兽医公共卫生学分会第二次学术研讨会论文集[C];2010年
2 纪昕;翁梁;曹淑桂;冯雁;;非病毒基因治疗的研究进展[A];“加入WTO和科学技术与吉林经济发展——机遇·挑战·责任”吉林省第二届科学技术学术年会论文集(下)[C];2002年
3 陈柳;云涛;余斌;倪征;华炯钢;李双茂;;禽病毒免疫逃避的机制[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会第十五次学术研讨会论文集[C];2010年
4 李洋;金宁一;韩松;鲁会军;;猪繁殖与呼吸综合征病毒分子生物学研究进展[A];中国畜牧兽医学会动物传染病学分会第十二次学术研讨会论文集[C];2007年
5 吴建国;;病毒与致病、致癌因子的相互作用及功能研究[A];湖北省生物工程学会2004年年会学术报告及论文摘要汇编[C];2004年
6 黄娟;姜平;张常印;唐泰山;李永东;张治涛;;猪繁殖与呼吸综合征病毒实时PCR检测方法的建立[A];第六届全国会员代表大学暨第11次学术研讨会论文集(上)[C];2005年
7 黄娟;姜平;张常印;唐泰山;李永东;张治涛;;猪繁殖与呼吸综合征病毒实时PCR检测方法的建立[A];中国畜牧兽医学会家畜传染病学分会第六届全国会员代表大会暨第11次学术研讨会论文集[C];2005年
8 张航;刘梁;孟祥高;刘长林;;多苯并咪唑金属配合物—一类新型非病毒基因释放的载体[A];第六届全国化学生物学学术会议论文摘要集[C];2009年
9 李俊;王金宝;张祯涛;周顺;;猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)分子生物学研究进展[A];山东畜牧兽医学会养猪专业委员会第一届学术研讨会论文集[C];2007年
10 万遂如;;当前我国猪群中新出现的病毒感染[A];中国畜牧兽医学会动物传染病学分会第十二次人兽共患病学术研讨会暨第六届第十四次教学专业委员会论文集[C];2012年
相关重要报纸文章 前10条
1 本报记者 张梦然;病毒预警 未雨绸缪[N];科技日报;2010年
2 肖园;病毒与人体的较量 是杀死还是共存?[N];北京科技报;2012年
3 胡轩逸;病毒,与生命如影随形[N];光明日报;2014年
4 张田勘;病毒可能帮助人类进化[N];健康报;2001年
5 晓 阳;高科技验血病毒旋即现形[N];大众科技报;2004年
6 林子;人类与病毒之战永无宁日?[N];中国商报;2003年
7 奇云;如果没有病毒 世界会怎样[N];大众科技报;2003年
8 本报记者 王丹 谭嘉;病毒跨种传播研究需要“剥洋葱”[N];健康报;2013年
9 李文;病毒致癌机制研究最新进展[N];中国医药报;2008年
10 记者 刘海英;病毒会利用微RNA对人体实施攻击[N];科技日报;2010年
相关博士学位论文 前10条
1 李丽薇;细胞miRNA抑制猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)复制的相关研究[D];中国农业科学院;2015年
2 缪佶;禽网状内皮组织增生病病毒转录组学及免疫抑制机理的研究[D];扬州大学;2016年
3 王赛赛;基于DIP病毒的肿瘤相关γ疱疹病毒—宿主拮抗机制研究[D];浙江大学;2016年
4 李伟阳;肝癌与宫颈癌中病毒整合研究[D];华南理工大学;2016年
5 王延群;严重急性呼吸道感染儿童呼吸道样品病毒组学研究[D];中国疾病预防控制中心;2016年
6 陈静;MicroRNA-373通过负向调控Ⅰ型干扰素促进猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)复制的机制研究[D];吉林大学;2016年
7 刘长龙;猪繁殖与呼吸综合征病毒3’非编码区对病毒复制调控作用解析[D];中国农业科学院;2010年
8 高飞;猪繁殖与呼吸综合征病毒5'非编码区顺式作用元件的解析[D];南京农业大学;2012年
9 谭菲菲;猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白在病毒复制过程中的作用研究[D];中国农业科学院;2010年
10 贺云霞;应用RNAi技术抑制猪繁殖与呼吸综合征病毒复制的研究[D];中国农业科学院;2006年
相关硕士学位论文 前10条
1 霍鹏;利用多重荧光定量PCR鉴定番木瓜病毒及番木瓜eIF4E家族基因干扰效应研究[D];海南大学;2015年
2 白云;猪繁殖与呼吸综合征病毒ORF5a功能的研究[D];中国农业科学院;2015年
3 黄豆豆;2010-2011北京冬春季成人急性腹泻相关病毒及新发病原体分子流行病学研究[D];安徽医科大学;2015年
4 夏燕平;EV71感染相关miRNA筛选及FNC抗EV71活性研究[D];河南中医学院;2015年
5 罗欣;检测五种腹泻相关病毒多重RT-PCR方法的建立和2013年9月~2014年10月广州地区腹泻病原谱调查[D];南方医科大学;2015年
6 寻添荣;HIV-1进入视网膜色素上皮细胞及其传播的研究[D];南方医科大学;2015年
7 张少波;病毒传染性疾病中miRNA的调控功能及诊断效能的研究[D];南方医科大学;2015年
8 郭年梅;利用RNAi策略阻断水稻齿矮病毒在褐飞虱体内的侵染[D];福建农林大学;2013年
9 朱克森;鸭坦布苏病毒的分离、鉴定[D];四川农业大学;2015年
10 吕晓玲;miR-21a-5p对PHEV复制的影响及其作用机制研究[D];吉林大学;2016年
,本文编号:2147686
本文链接:https://www.wllwen.com/shoufeilunwen/nykjbs/2147686.html